A 3-as típusú von Willebrand kór molekuláris patogenezise Magyarországon: a magyar mutáció kialakulása és az inhibitor képződés kérdései

Hasonló dokumentumok
A genetikai lelet értelmezése monogénes betegségekben

Molekuláris genetikai vizsgáló. módszerek az immundefektusok. diagnosztikájában

Kappelmayer János. Malignus hematológiai megbetegedések molekuláris háttere. MOLSZE IX. Nagygyűlése. Bük, 2005 szeptember

Állatorvosi kórélettan Hallgatói előadások, 5. szemeszter

A 3-as típusú von Willebrand kór molekuláris patogenezise Magyarországon: a magyar mutáció kialakulása és az inhibitorképződés kérdései

Domináns-recesszív öröklődésmenet

Rh VÉRCSOPORT RENDSZER GENETIKÁJA. Rh ANTIGÉNEK ÉS ANTITESTEK. EGYÉB VÉRCSOPORTRENDSZEREK

Kutatási beszámoló ( )

2. SZ. SZAKMAI ÖSSZEFOGLALÓ PIR 2

Példák a független öröklődésre

Tudománytörténeti visszatekintés

In Situ Hibridizáció a pathologiai diagnosztikában és ami mögötte van.

Monogénes recesszív betegségek molekuláris genetikai és populációs vizsgálatai

Hátterükben egyetlen gén áll, melynek általában számottevő a viselkedésre gyakorolt hatása, öröklési mintázata jellegzetes.

HAPMAP Nemzetközi HapMap Projekt. SNP GWA Haplotípus: egy kromoszóma szegmensen lévő SNP mintázat

Többgénes jellegek. 1. Klasszikus (poligénes) mennyiségi jellegek. 2.Szinte minden jelleg több gén irányítása alatt áll

A PKU azért nem hal ki, mert gyógyítják, és ezzel növelik a mutáns allél gyakoriságát a Huntington kór pedig azért marad fenn, mert csak későn derül

Vizsgálatkérő és adatlapok a Zalaegerszegi Területi Vérellátóban Hatályos szeptember verzió

Engedélyszám: /2011-EAHUF Verziószám: Humángenetikai vizsgálatok követelménymodul szóbeli vizsgafeladatai

A harkányi gyógyvízzel végzett vizsgálataink eredményei psoriasisban között. Dr. Hortobágyi Judit

A CISZTÁS VESE ULTRAHANGMORFOLÓGIÁJA A KÓROKI GÉN FÜGGVÉNYÉBEN

DNS-szekvencia meghatározás

Diagnosztikai célú molekuláris biológiai vizsgálatok

Humán genom variációk single nucleotide polymorphism (SNP)

Populációgenetikai. alapok

Immunológia alapjai. 10. előadás. Komplement rendszer

PrenaTest Újgenerációs szekvenálást és z-score

Tüdő adenocarcinomásbetegek agyi áttéteiben jelenlévő immunsejtek, valamint a PD-L1 és PD-1 fehérjék túlélésre gyakorolt hatása

Az alvadási rendszer fehérjéi. Kappelmayer János DE OEC, KBMPI

Dr. Nemes Nagy Zsuzsa Szakképzés Karl Landsteiner Karl Landsteiner:

Recesszív öröklődés. Tájékoztató a betegek és családtagjaik számára. Fordította: Dr. Komlósi Katalin Orvosi Genetikai Intézet, Pécsi Tudományegyetem

Opponensi Vélemény Dr. Nagy Bálint A valósidejű PCR alkalmazása a klinikai genetikai gyakorlatban ' című értekezéséről

MUTÁCIÓK. A mutáció az örökítő anyag spontán, maradandó megváltozása, amelynek során új genetikai tulajdonság keletkezik.

Thrombocyta funkciós rendellenességek területén végzett vizsgálatok 1. Glanzmann thrombasthenia a) II-es típusú Glanzmann thrombasthenia Közepes

Mit tud a genetika. Génterápiás lehetőségek MPS-ben. Dr. Varga Norbert

Mangalica specifikus DNS alapú módszer kifejlesztés és validálása a MANGFOOD projekt keretében

Prenatalis diagnosztika lehetőségei mikor, hogyan, miért? Dr. Almássy Zsuzsanna Heim Pál Kórház, Budapest Toxikológia és Anyagcsere Osztály

A kromoszómák kialakulása előtt a DNS állomány megkettőződik. A két azonos információ tartalmú DNS egymás mellé rendeződik és egy kromoszómát alkot.

Két kevéssé ismert humán ABCG fehérje expressziója és funkcionális vizsgálata: ABCG1 és ABCG4 jellemzése

1. ESET DIAGNÓZIS: LYMPHADENITIS MESENTERIALIS. 16 éves nő: görcsös hasi fájdalom, hányinger, hányás, vizes hasmenés, collaptiform rosszullét

VÉRALVADÁSI ZAVAROK GYERMEKKORBAN. Dr. Csóka Monika egyetemi docens SE II.sz. Gyermekgyógyászati Klinika

Bevacizumab kombinációval elért hosszútávú remissziók metasztatikus colorectális carcinomában

Johann Gregor Mendel Az olmüci (Olomouc) és bécsi egyetem diákja Brünni ágostonrendi apát (nem szovjet tudós) Tudatos és nagyon alapos kutat

Immunológia alapjai. 16. előadás. Komplement rendszer

De novo SNC1A géndeléció terápia rezisztens Dravet szindrómában

HUMAN IMMUNDEFICIENCIA VÍRUS (HIV) ÉS AIDS

A tumor-markerek alkalmazásának irányelvei BOKOR KÁROLY klinikai biokémikus Dr. Romics László Egészségügyi Intézmény

11. Dr. House. Biokémiai és sejtbiológiai módszerek alkalmazása az orvoslásban

A domináns öröklődés. Tájékoztató a betegek és családtagjaik számára. Fordította: Dr. Komlósi Katalin Orvosi Genetikai Intézet, Pécsi Tudományegyetem

Kromoszómák, Gének centromer

GENETIKAI VIZSGÁLATOK CHRIST-SIEMENS-TOURAINE ÉS PAPILLON-LEFÈVRE SZINDRÓMÁBAN A FOGORVOS SZEMÉVEL

A keringı tumor markerek klinikai alkalmazásának aktuális kérdései és irányelvei

A Hardy-Weinberg egyensúly. 2. gyakorlat

EGYETEMI DOKTORI (Ph.D.) ÉRTEKEZÉS

Molekuláris biológiai eljárások alkalmazása a GMO analitikában és az élelmiszerbiztonság területén

Immunszerológia I. Agglutináció, Precipitáció. Immunológiai és Biotechnológiai Intézet PTE-KK

MIKROSZKÓPIKUS GOMBÁK MIKOTOXIN-BONTÓ KÉPESSÉGÉNEK. Péteri Adrienn Zsanett DOKTORI ÉRTEKEZÉS TÉZISEI

Spinalis muscularis atrophia (SMA)

Genetikai vizsgálatok amiotrófiás laterális szklerózisban szenvedő magyar betegekben

Genetika 3 ea. Bevezetés

Egyetemi doktori (PhD) értekezés tézisei A WISKOTT-ALDRICH SZINDRÓMA MOLEKULÁRIS PATOLÓGIÁJA. Dr. Gulácsy Vera

A CYTOKIN AKTIVÁCIÓ ÉS GÉN-POLIMORFIZMUSOK VIZSGÁLATA HEL1COBACTER PYLORI FERTŐZÉSBEN ÉS CROHN BETEGSÉGBEN

szerepe a gasztrointesztinális

BIOLÓGIA HÁZIVERSENY 1. FORDULÓ BIOKÉMIA, GENETIKA BIOKÉMIA, GENETIKA

A MYOZINKÖTŐ C FEHÉRJE GÉNT (MYBPC3) ÉRINTŐ MUTÁCIÓK VIZSGÁLATA HYPERTROPHIÁS CARDIOMYOPATHIÁBAN

KOAGULÁCIÓS FAKTOROK BIOTECHNOLÓGIAI ELŐÁLLÍTÁSA

Nemzeti Onkológiai Kutatás-Fejlesztési Konzorcium a daganatos halálozás csökkentésére

Rh vércsoportrendszer. dr. Fődi Éva OVSZ Szegedi Regionális Vérellátó Központ

Nemzeti Akkreditáló Testület. BŐVÍTETT RÉSZLETEZŐ OKIRAT (1) a NAT /2012 nyilvántartási számú akkreditált státuszhoz

Esettanulmányok. Dr. Toldi József OVSZ Szegedi Regionális Vérellátó Központ

11. Dr. House. Biokémiai és sejtbiológiai módszerek alkalmazása az orvoslásban

MAGYOT évi Tudományos Szimpóziuma Május 5-6, Budapest

Biológiai feladatbank 12. évfolyam

A HUMÁNGENETIKA LEGÚJABB EREDMÉNYEI Péterfy Miklós

Sodródás Evolúció neutrális elmélete

EGYETEMI DOKTORI (Ph.D.) ÉRTEKEZÉS TÉZISEI

Genetikai vizsgálat. Intergenomialis kommunikációs zavarok (mtdns depléció/deléció jelenléte esetén javasolt) Alpers syndroma (POLG1 gén analízis)

Angiológiai és immunológiai kutatások antifoszfolipid szindrómában

A multiplex endokrin neoplasia 1-es típusának klinikai és genetikai vizsgálata

Immunológia 4. A BCR diverzitás kialakulása

A 8.1-es ősi haplotípus és a PAI-1 4G/5G polimorfizmus vizsgálata pneumónia eredetű szepszises betegek körében

ADATBÁNYÁSZAT I. ÉS OMICS

Elérte hazánkat az influenzajárvány

Mikroszatellita instabilitás immunhisztokémiai kimutatása colorectális carcinomában: antitestek, módszerek, standardizálás

A Caskin1 állványfehérje vizsgálata

A véralvadás zavarai I

Katasztrófális antifoszfolipid szindróma

OPPONENSI VÉLEMÉNY. Dr. Lakatos Péter László köztestületi azonosító: az MTA Doktora cím elnyerése érdekében benyújtott,

30 év tapasztalata a TTP-HUS kezelésében

Vércsoport szerológiai kompatibilitás Választott vörösvérsejt készítmények indikációja. Dr. Csépány Norbert Transzfúziós tanfolyam Debrecen

Új temékek az UD- GenoMed Kft. kínálatában!

(McCune- Albright szindróma)

TUDOMÁNYOS ÜLÉST május 09-én (hétfôn) órakor a DAB székházban. (Debrecen, Thomas Mann u. 49.) rendez, melyre tisztelettel meghívjuk.

MUTÁCIÓK. A mutáció az örökítő anyag spontán, maradandó megváltozása, amelynek során új genetikai tulajdonság keletkezik.

Monogénes recesszív betegségek molekuláris genetikai és populációs vizsgálatai

Kontakt provokáló faktorok szerepe felnőttkori atópiás dermatitisben

VIII. Népegészségügyi Konferencia, Megnyitó 2017.

GENETIKA MEGOLDÁS EMELT SZINT 1

Doktori (Ph.D.) értekezés tézisei A HAEMOCHROMATOSIS ÉS A HAEMOPHILIA A MOLEKULÁRIS GENETIKAI DIAGNOSZTIKÁJA. dr. Andrikovics Hajnalka

I. A sejttől a génekig

Átírás:

A 3-as típusú von Willebrand kór molekuláris patogenezise Magyarországon: a magyar mutáció kialakulása és az inhibitor képződés kérdései Doktori tézisek Dr. Mohl Adrienn Semmelweis Egyetem Klinikai Orvostudományok Doktori Iskola Témavezető: Bíráló bizottság elnöke: Hivatalos bírálók: Dr. Bodó Imre, PhD Prof. Dr. Falus András, MTA doktora Dr. Hársfalvi Jolán, PhD Dr. Törőcsik Beáta, PhD Szigorlati bizottság elnöke: Prof. Dr. Machovich Raymund, MTA doktora Szigorlati bizottság tagjai: Dr. Karászi Éva, PhD Dr. Kriván Gergely, PhD Budapest 2011 1

Bevezetés A von Willebrand betegség (VWB) a leggyakoribb öröklött vérzékenység emberben, nevét a betegséget elsőként leíró Eric von Willebrand finn orvosnak köszönhetjük. A tüneteket az egyik fontos véralvadási fehérje, a von Willebrand faktor (VWF) hiánya, illetve működésének rendellenességei okozzák. A von Willebrand faktor az endothel sejtek és megakaryocyták által termelt igen nagyméretű glycoprotein, amely multimerek formájában található a plazmában. A keringő VWF két fő funkciója ismert: érsérülés esetén nélkülözhetetlen szerepet játszik a vérlemezkék subendotheliális kötőszövethez való adhéziójában, valamint stabilizálja a plazmában keringő VIII-as faktort. VWF hiányában súlyos vérzékenység léphet fel, mely a primer és secunder haemostasist egyaránt érinti. A VWB három fő típusba ismert: az 1-es típusban csökkent mennyiségű, de normális szerkezetű fehérje termelődik, míg a 2-es típusban a termelődő fehérje funkciója károsodott. Ezek a típusok döntően autoszómális domináns módon öröklődnek. A 2

legsúlyosabb forma a 3-as típus, amelyet a VWF teljes hiánya jellemez, autoszómális recesszív öröklésmenetet követ. A humán VWF gén 178 kilobázis nagyságú, a 12- es kromoszóma rövid karján található és 52 exont tartalmaz. A különböző típusú VWB-et okozó mutációk a gén teljes hosszán megtalálhatók. Célkitűzések A vizsgálatunk célja a Magyarországon élő 3-as típusú von Willebrand betegek átfogó genetikai és klinikai vizsgálata volt. Elsődleges célként az összes résztvevő beteg direkt DNS szekvenáláson alapuló genotípus meghatározását tűztük ki. A vérmintából elvégeztük a von Willebrand fehérje részletes laboratóriumi analízisét az altípusok közötti pontos besorolás céljából. A mintavétel alkalmával részletes klinikai anamnézist vettünk fel, majd a tünetek súlyosságát számszerűsítettük, amelyhez egy európai multicentrikus vizsgálat során kidolgozott pontozási rendszert alkalmaztunk. Emellett a rokoni kapcsolatok felderítésére a rendelkezésre álló információk 3

segítségével családfakutatást végeztünk. A Magyarországon, országos szinten működő és folyamatosan frissített vérzékeny betegek kataszterét használtuk a betegekkel való kapcsolatfelvételben. A hármas típusú VWB prevalenciája Magyarországon 2,6/millió (26 regisztrált beteg, 24 család Magyarországon). Módszerek A vizsgálatba huszonnégy 3-as típusú von Willebrand beteget vontunk be, akik 23 egymással rokonságban nem álló családból származtak, közülük 13 nő és 12 férfi volt. A bevonási kritériumok a következők voltak: (1) VWF:Ag 5 U/dl és (2) recesszív öröklésmenetet tükröző családi anamnézis. A vizsgálatba beválasztásra került egy 25. beteg, akinek VWF:Ag szintje 6 U/dl, volt, családi anamnézis alapján betegsége recesszív módon öröklődött. A gondozó központban 3-as típusú VWB-ként tartották nyilván. 4

Vérzésmutató, családfaelemzés: Az anamnézist felvevő orvos standardizált kérdőívet töltött ki, amelyből az irodalomnak megfelelően vérzésmutatót ( bleeding score ) számoltuk. Részletes genealógiai adatokat a betegektől és családjuktól nyertünk. VWF antigén és aktivitásmérés A VWF antigén szintjét (VWF:Ag) és kollagén kötő aktivitását (VWF:CBA) ELISA módszerrel határoztuk meg (Dako, Glostrup, Dánia; Sigma, St. Louis, MO, USA). A VIII-as faktor aktivitását (FVIII:C) egyfázisú alvadási vizsgálattal mértük (ACL-10000; Instrumentation Laboratories, MA, USA). VWF multimer analízis: A betegek EDTA-val alvadásgátolt plazmájából elektroforézist végeztünk 1,6 %-os nátrium dodecyl szulfát (SDS) agaróz gélen. Ezt követően Western blot módszerrel, elektromos transzfer segítségével nitrocellulóz membránra vittük át a fehérjéket, amelyeket tormaperoxidázzal jelzett poliklonális nyúl anti-humán VWF antitestek és chemiluminscens módszer segítségével jelenítettünk meg (Amersham Pharmacia Biotech). 5

Molekuláris vizsgálatok: A molekuláris vizsgálatokat a Hamburgi Eppendorf Egyetem Gyermekgyógyászati Hematológiai és Onkológiai Tanszékének laboratóriumában végeztük, Németországban. A betegek tisztított DNS-éből primer párok segítségével polimeráz láncreakcióval (PCR) amplifikáltuk a VWF gén 51 kódoló exonját és a szomszédos intron szakaszokat. A 23-34. exonok primerjeit úgy terveztük, hogy elkerüljük a VWF pseudogén megfelelő szakaszainak amplifikációját. A PCR termékek bázissorrendjét direkt DNS szekvenálással határoztuk meg (ABI, Foster City, CA, USA). A delexon1-3 töréspontjait standard géntérképezéssel állapítottuk meg. Töréspont-specifikus PCR reakciót dolgoztunk ki, amelyhez egy közös reverz primert és két különböző forward primert használtunk. Így a normál illetve a delexon1-3 allélok jelenlététől függően két különböző nagyságú PCR terméket kaptunk. Géndózis elemzés során multiplex PCR-t végeztünk a VWF 3-as exon és a referencia Rab27a gén 3-as és 9-es exon (15-ös kromoszóma) szekvenciájára tervezett primerpárok felhasználásával. A PCR termékeket denaturáló HPLC (high performance liquid 6

chromatography, Transgenomic, Omaha, IA, USA) segítségével elemeztük és számoltuk a két görbe (VWF/referencia) alatti terület arányát (AUC area under curve). Eredmények Klinikai jellemzők: A VWF:Ag szint 1 U/dl volt 21 betegben, míg 3 betegben 1 U/dl-nél magasabb, de 5 U/dl-nél alacsonyabb szintet mértünk. A multimer gélen 4 betegnél találtunk nyomokban kis molekulasúlyú VWF multimert (LMWM). A 4 beteg közül 3 esetében magasabb, mint 1 U/dl VWF szintet mértünk. Húsz betegnél nyomokban sem volt kimutatható a VWF, ezekben az esetekben a VWF:Ag szintje kivétel nélkül 1 U/dl volt. Részletes klinikai információ és vérzésmutató 23 betegtől állt rendelkezésre. A vérzésmutató 12-28 (átlag 17,8) volt a férfi betegekben és 10-32 (átlag 21,7) a nőbetegekben, ami annak a következménye, hogy a nőbetegek súlyosabb vérzéses tünetekben szenvedtek menorrhagia, petefészek- és posztpartum vérzések miatt. VWF ellenes allo-antitestek 7

egyetlen betegben alakultak ki; ennél a betegnél anafilaxiás reakció lépett fel a VWF koncentrátum adása után (az inhibitor kialakulás aránya 1/24, vagyis 4,2%). Molekuláris jellemzők: A magyar 3-as típusú VWB populáció genetikai analízise során 14 új mutációt azonosítottunk összesen 30 allélon. Ezek közül 5 nonsense mutáció (p.q1238x, p.q1898x, p.q1931x, p.s2505x, p.s2568x), 4 frameshift mutáció, (c.1992insc, c.3622delt, c.5315insga, 7333delG), valamint 3 missense (p.c35r, p.r81g, p.c623t) és 1 feltételezett splice site mutáció (c.1730-10c>a) volt. Emellett egy új részleges nagy deléciót (DelExon1-3) találtunk, amely a VWF gén 5 végének elvesztését okozta. További 16 allélon hat korábban közölt mutációt identifikáltunk, ezek között volt a több európai populációban ismétlődő c.2435delc, p.r1659x, valamint a p.r1853x. Ezek mellett a c2124delct c2269delct frameshift, valamint a c3379+1g>a splice site mutációkat azonosítottuk. 8

A 24 beteg 3-as típusú beteg közül 12-nek homozigóta mutációja volt, 11-nek összetett heterozigóta mutációja, míg egy betegben nem tudtuk egyértelműen azonosítani a 3-as típusú VWB fenotípus genetikai magyarázatát. DelExon1-3: Öt beteg homozigóta és két beteg heterozigóta formában hordozta a 35540 bázispár nagyságú génszakasz elvesztésével járó részleges nagy deléciót. A deléció 5 töréspontja a VWF és a CD9 gének közötti nem kódoló régióban, míg a 3 -töréspont a VWF gén hármas intronjában, a 3. és 4. exon között található, így az 1-es, 2-es és 3-as exon elvesztését eredményezi. A töréspontok elemzése AluY és AluSP repetitív szekvenciák jelenlétét igazolta, így feltételezzük, hogy a deléció a két szekvencia között létrejött homológ rekombinációs esemény eredménye. A deléciót hordozó betegek azonos SNP adatai, valamint a családfa analízis alapján a mutáció hátterében egy közös felmenőtől származó alapító hatást feltételezünk, amelynek létrejötte több száz évvel korábbra tehető. A beállított deléció specifikus PCR segítségével összesen 175 német, orosz és lengyel populációból származó von 9

Willebrand beteg mintáit szűrtük a deléció jelenlétére, akik közül egyben sem volt jelen a DelExon1-3. A deléció az összes 3-as típusú allél 25%-ban volt jelen (12/48). Egyik deléciót hordozó betegben sem alakult ki VWF ellenes inhibitor a gyakori VWF szupportáció ellenére. A frameshifttel járó mutációk közül a 18-as exonban lévő nevezetes c.2435delc volt, melyet több európai populációban is ismétlődő mutációként írtak le. A magyarországi 3-as típusú betegek közt 5 betegnél volt jelen. Négy beteg heterozigóta és egy beteg homozigóta volt erre a mutációra. A c.2435delc az összes hármas típusú allél 12,5%-át (6/48) képezte. Az egyetlen beteg, akiben VWF ellenes allo-antitest alakult ki homozigóta formában hordozta a 27-es exon c.3622delt frameshifttel járó mutációját. Három új missense mutációt találtunk a 3-as típusú VWB-ek közt, mindet összetett heterozigóta formában, valamely nonsense mutációval együtt. Valamennyi missense mutáció a propeptid kódoló régiójában található, közülük 2 cisztein gyök elvesztéséhez vezetett: 10

p.c35r, és p.c623t a 3-as és 15-ös exonokban, míg a harmadik a p.r81g a 4-es exonban hozott létre amiosav cserét. A C623T mutációt hordozó beteg multimer analízise során alacsony molekulasúlyú multimereket detektáltunk, míg a másik két mutációt hordozó betegben nyomokban sem volt VWF. További egy, a vizsgálat kezdetekor beválasztott betegben a VWF:Ag 6 U/dl volt, a multimer gélen kis molekulasúlyú multimereket detektáltunk. A VWF:Ag/VWF:CBA arány magas volt (6/1). Genetikai analízise során a p.c295s missense és a c.2435delc mutációkat azonosítottuk összetett heterozigóta formában. A laboratóriumi eredmények alapján a beteget utólag 2A típusba IIC variánsba soroltuk, amely a 2-es típusban egyedül recesszív módon öröklődik. A missense mutációt eddig nem írták le más betegben, de lokalizációja a propeptid területén, amely alterálhat a multimerizáció folyamatával, alátámaszthatja a klinikai eredményeket. 11

Következtetések Vizsgálataink során szinte a teljes 3-as típusú magyar von Willebrand beteg populáció genetikai hátterét, valamint klinikai és laboratóriumi jellemzőit feltártuk. A direkt DNS szekvenáláson alapuló genotípus meghatározás mellett a részletes klinikai, laboratóriumi és genealógiai felmérést végeztünk. Hasonlóan a korábban vizsgált populációkhoz, a magyar beteganyag is rendkívül heterogénnek bizonyult genetikai szempontból, azonban azonosítottunk egy korábban még nem észlelt, ám hazánkban gyakori részleges nagy deléciót, a 3-as típusú allélok 25%-ában. A több európai populációban gyakori c.2435delc a magyar 3-as típusú allélok 12,5%- ban volt jelen. A gyakori mutációkat összesítve a DelExon1-3 és a c.2435delc a 3-as típusú betegek alléljeinek 37,5%-áért felelős, ami akár genetikai tesztelést is lehetővé tesz ebben a betegcsoportban. Emellett 14 új mutációt azonosítottunk összesen 19 allélon. Von Willebrand faktor ellenes inhibitor kialakulását egy betegben észleltünk (incidencia: 4,2%, 1/24), aki frameshift mutációt hordozott homozigóta 12

formában. Klinikai oldalról eredményeink ellentmondanak annak a korábban dogmaként elfogadott álláspontnak, miszerint a nagy deléciók egyöntetűen hordozzák az inhibitor képződés veszélyét, hiszen a DelExon1-3-at hordozó betegeink között egynél sem jelentkezett inhibitor. Eredményeink közül több is új ablakot nyitott a VWF biológiájára. 13

Az értekezés témakörében készült saját közlemények jegyzéke 1. IF: 6,069 Mohl A, Boda Z, Jáger R, Losonczy H, Marosi A, Masszi T, Nagy E, Nemes L, Obser T, Oyen F, Radványi G, Schlammadinger Á, Szélessy Zs, Várkonyi A, Vezendy K, Vilimi B, Schneppenheim R, Bodó I Common large partial VWF gene deletion does not cause alloantobody formation in the Hungarian type 3 von Willebrand disease population. J Thromb Haemost. 2011 Mar 1. [Epub ahead of print] 2. IF: 6,291 Mohl A, Marschalek R, Masszi T, Nagy E, Obser T, Oyen F, Sallai K, Bodó I, Schneppenheim R. An Alu-mediated novel large deletion is the most frequent cause of type 3 von Willebrand disease in Hungary. J Thromb Haemost. 2008 Oct;6(10):1729-35. Epub 2008 Jul 28. 3. IF: 6,069 Gézsi A, Budde U, Deák I, Nagy E, Mohl A, Schlammadinger A, Boda Z, Masszi T, Sadler JE, Bodó I. Accelerated clearance alone explains ultra-large multimers in von Willebrand disease Vicenza. J Thromb Haemost. 2010 Jun;8(6):1273-80. Epub 2010 Jan 17. 14

Egyéb közlemények jegyzéke 1. IF: 2,640 Sallai KK, Nagy E, Bodó I, Mohl A, Gergely P. Thrombosis risk in systemic lupus erythematosus: the role of thrombophilic risk factors. Scand J Rheumatol. 2007 May-Jun;36(3):198-205. 15