Kórházi nosocomialis fertőzések és lókórházakban alkalmazott izolációs protokollok napjainkban Bakos Zoltán Béni Dániel Német Zoltán Velence, 2015. november 28.
A nosocomialis fertőzések jelentősége Megnyúlt kezelési idő Emelkedő mortalitás Emelkedő kezelési költségek Zoonotikus kórokozók Romló megítélés Jogi felelősség
Nosocomialis fertőzések lovakban Clostridium perfringens és difficile Rhodococcus equi Dermatophytosis EHV-1 és -4 EIAV (fertőző kevésvérűség) EIV (lóinfluenza) EVA (vírusarteritis) Meticillin-rezisztens Staph. aureus Multirezisztens baktériumok (Salmonella, E. coli, Klebsiella, Enterobacter, Pseudomonas, Acinetobacter) Rotavirus Salmonella enterica Streptococcus equi Vesicularis stomatitis
Nosocomialis fertőzések - előfordulás 14% 12% 10% 8% 6% 4% 2% 0% Fertőzési formák Ruple-Czerniak 2014 nyomán
Izolációs protokollok Biológiai biztonság (biobiztonság, biosecurity) Azon intézkedések együttese, amelyek az ember és a mezőgazdasági állat- és növényállományok életét vagy egészségét fenyegető biológiai veszélyek megelőzését vagy elhárítását szolgálják. (Wikipédia) A biobiztonság később került előtérbe a lópraxisban, mint máshol Mi vagyunk a felelősek mindenki egészségéért Páciens és tulajdonosa Kezelőszemélyzet Praxis/állatkórház Antibiotikum terhelés csökkentése A lovas világ speciális tulajdonságai Euthanasia, nemzetközi transzport
Izolációs protokollok A betegségek osztályozása fertőzésveszély szempontjából Betegség típusa Példák Elkülönítés Nem fertőző RAO, tágremese-obstipáció Nincs Fertőző, de nem vagy alig ragályos Fertőző, közepes fokban ragályos / rezisztens baktériumok Fertőző, kifejezetten ragályos / egyéb szempontból fontos Sinusitis, szeptikus ízületgyulladás, tetanus Vírusos légúti fertőzések, MRSA, Rhodococcus equi, dermatophytosis Mirigykór, salmonellák/clostridiumok okozta hasmenés, EHV-1, veszettség, lépfene Nincs Izoláció / barrier nursing Szigorú izoláció
Izolációs protokollok Biobiztonsági/járványvédelmi terv alapfeltételei Izolálási terv Közlekedési rend (lovak és személyek) A betegek eltérő kockázati szintje A legfontosabb fertőző betegségek A betegségek terjedésének indirekt módjai Eszközök, műszerek fertőtlenítési rendje Személyi higiénia Átfogó, rutin fertőtlenítési program, bakteriológiai vizsgálattal Rutin monitorizálási rendszer, célzott szűrés Bejelentési kötelezettség alá tartozó / egzotikus betegségek Dwyer 2009 nyomán
Izolációs protokollok Biobiztonsági terv elemei kis- és közepes méretű klinikákon Járványvédelmi felelős kijelölése Előfordulási gyakoriságok felmérése Ragályos betegségek (Salmonella, Str. equi equi, EHV- 1, EIAV, stb.) Sebfertőzések Multirezisztens baktériumok Döntés ragályos betegségek kezeléséről (infrastruktúra, személyzet) Izolációs terület kijelölése, az elkülönítés szabályai A beteganyag kockázati csoportokba sorolása, elhelyezési lehetőségek Aceto és Schaer 2008 nyomán
Izolációs protokollok Biobiztonsági terv kis- és közepes méretű klinikákon Az infrastruktúra és a közlekedési rend optimalizálása járványvédelmi szempontból Prospektív szűrési rendszer kialakítása / ennek híján akcióterv készítése Az antibiotikum-használat felmérése, átgondolt szabályok kidolgozása Takarítási, fertőtlenítési, hulladék- és trágyakezelési, rovar- és rágcsálóirtási rend készítése Járványvédelmi képzés tartása A járványvédelmi terv rendszeres felülvizsgálata az összegyűlt adatok alapján Aceto és Schaer 2008 nyomán
Salmonellosis gyanújának menedzselési algoritmusa
Kommunikáció Nosocomialis fertőzések kockázatának ismertetése felvételkor Járványvédelmi szabályok ismertetése Otthoni karantén felállítása hazaszállításkor Írásos utókezelési javaslat
Lovak Staphylococcus sp. és Salmonella sp. fertőzéseinek laboratóriumi diagnosztikája Német Zoltán SZIE-ÁOTK Haszonállat-gyógyászati Tanszék és Klinika Diagnosztikai Laboratórium 2225 Üllő Dóra major
Staphylococcus Gram-pozitív 1 µm átmérőjű coccus Aerob, fakultatív anaerob Állatok bőrén, nyálkahártyáin, környezetében Gennyes-elhalásos gyulladások Ételmérgezés
1 3 mm átmérőjű, kerek, fénylő, domború, általában sárgás karotinoid pigmentet termelő telepeket képez, amelyek körül jellegzetes kettős haemolyticus zóna látható
A telepből készített kenetben Grampozitív, szőlőfürtszerűen rendeződő coccusok láthatók
Szelektív tenyésztésre (pl. szűrővizsgálat) Baird-Parker agar használható
Járványtani jelentőségű fajok Staphylococcus aureus Staphylococcus hyicus Staphylococcus epidermidis Staphylococcus intermedius, pseudointermedius
Rezisztencia Penicillin Alexander Fleming, 1928 1942: 10 páciens Tömegtermelés: 1945 Penicillin-rezisztens (PRSA) 1947 1959-től methicillin bevezetése Methicillin-rezisztens (MRSA) 1961 Vancomycin-intermediate (VISA) 1997 Vancomycin-rezisztens (VRSA) 2002 Super Bug
MRSA típusai Hospital Acquired (HA) Community Acquired (CA) Livestock-associated (LA) Egyéb methicillin-rezisztens fajok (MRSS)
Minta Tampon (lehetőleg transzport táptalaj) Orrváladék, gyulladásos izzadmány sebből Biopszia, szervminta AZONOSÍTÁS! Hűtve tárolni és szállítani Azonnal beszállítani
Diagnózis Baktériumtenyésztés, azonosítás 24-48 h Antibiogram (korongdiffúzió) 24 h Methicillin régóta nem megbízható Oxacillin nem olyan régóta nem megbízható Jelenleg: cefoxitin PCR meca gén > PBP2a fehérje (SCCmec : staphylococcal chromosome casette mec) mecc, atipikus meca változatok
Mibe kerül mindez? Aerob baktériumtenyésztés: 3000 Ft + ÁFA Antibiogram: meca PCR: 500 Ft + ÁFA 5000 Ft + ÁFA
Salmonella sp. Enterobacteriaceae család Gram-negatív 3-4 µm hosszú csillós pálca Salmonella enterica subsp. enterica serovar typhimurium Hideg és melegvérű állatok és környezetük Főleg szisztémás és emésztőszervi megbetegedések ételmérgezések
Tenyésztés Nem igényesek Jellemzően kevert és dús Enterobacterium flóra mellett kell kimutatni Ürítése szakaszos, intracellularis túlélés > Sorozatos (3x24h) mintavétel, több lépcsős tenyésztés
Minta Tampon vagy béltartalom (friss) Jól záró edény, lekötött kesztyű 10-100 g (max 1 marék) Földről szedett trágya nem szerencsés AZONOSÍTÁS 3 egymást követő nap (~90%) Hűtve tárolás és szállítás
Standard módszer 1. dúsítás: peptonvíz (24 h) 2. szelektív tenyésztés: MSRV (24 h) (félfolyékony Rappaport-Vassiliadis) 3. azonosítás differenciáló táptalajokon (24 h) 4. rezisztencia (24 h) gyanús/negatív legkorábban 48 h diagnózis 72-96 h
Alternatív módszerek Szelektív dúsítás, tenyésztés chromogén táptalajokon PCR (12-24 h) Real-time PCR (5-10h)
Mibe kerül mindez? Salmonella dúsításos tenyésztés: Antibiogram: inva+inve PCR: 6000 Ft + ÁFA 500 Ft + ÁFA 5000 Ft + ÁFA
Köszönöm a figyelmet!