Sejtkultúra előállítása, steril munka feltételei Immunsejtek izolálása és funkcionális vizsgálata április 15. Kremlitzka Mariann, PhD

Hasonló dokumentumok
Lukácsi Szilvia

Sejtbiológia gyakorlati szempontból. Alapfogalmak, tematika

Áramlási citometria, sejtszeparációs technikák. Immunológiai és Biotechnológiai Intézet ÁOK, PTE

5/1/14. I. Mononukleáris sejtek izolálása és tenyésztése. II. Limfociták ak=vációjának, proliferációjának kimutatása

Az immunrendszer működésében résztvevő sejtek Erdei Anna Immunológiai Tanszék ELTE

Immunológia I. 4. előadás. Kacskovics Imre

Immunológiai módszerek a klinikai kutatásban

Immunológia II GY. 1. Bevezetés febr. 16. Bajtay Zsuzsa

Sejttenyésztési alapismeretek

Az adaptív immunválasz kialakulása. Erdei Anna Immunológiai Tanszék ELTE

Sejtfeldolgozás Felhasználás

Immunológia. Hogyan működik az immunrendszer? password: immun

Immunológiai módszerek

Az immunrendszer sejtjei, differenciálódási antigének

Leucosep-csövek LTK.615 KEZELÉSI ÚTMUTATÓ. In vitro diagnosztikai célra PI-LT.615-HU-V3

Állatkísérletek Elmélete és Gyakorlata B kurzus

Áramlási citométerek klinikai alkalmazása

Immunológia Alapjai. 13. előadás. Elsődleges T sejt érés és differenciálódás

Áramlási citometria / 4. Immunológiai és Biotechnológiai Intézet PTE KK

A vér alakos elemei és azok funkciói

Antigén, Antigén prezentáció

Az ellenanyagok orvosbiológiai. PhD kurzus 2011/2012 II. félév

Virológia gyakorlatok

Rövid és hosszútávú sejtkultúrák, funkcionális tesztek. Immunológiai és Biotechnológiai Intézet Pécsi Tudományegyetem

Az áramlási citométer és sejtszorter felépítése és működése, diagnosztikai alkalmazásai

Immunológia I. 2. előadás. Kacskovics Imre

Doktori értekezés tézisei. Az FcRn transzgén állatok humorális immunválaszát befolyásoló T sejtek és antigén bemutató sejtek funkcionális vizsgálata

Tisztított limfociták preparálásához és izolálásához közvetlenül teljes vérből TERMÉKISMERTETŐ. In vitro diagnosztikai alkalmazásra PI-TT.

Immunológiai módszerek a klinikai kutatásban

Az immunrendszer sejtjei, differenciálódási antigének

BD Vacutainer Molekuláris Diagnosztikai termékei

Áramlási citométerek: klinikai és kutatási alkalmazás

Immunológia Világnapja

FEHÉRJE VAKCINÁK BIOTECHNOLÓGIAI ELŐÁLLÍTÁSA III.

Az omnipotens kutatónak, Dr. Apáti Ágotának ajánlva, egy hálás ex-őssejtje

Az ellenanyagok szerkezete és funkciója. Erdei Anna Immunológiai Tanszék ELTE

Ajánlott tankönyvek: Gergely János, Erdei Anna: Immunbiológia. Falus András: Az immunológia élettani és molekuláris alapjai

orvostudományban nyban- In vitro Tuboly Eszter Tanársegéd Sebészeti Műtéttani Intézet

LTK.615 KEZELÉSI ÚTMUTATÓ


Az orvosi biotechnológiai mesterképzés megfeleltetése az Európai Unió új társadalmi kihívásainak a Pécsi Tudományegyetemen és a Debreceni Egyetemen

Dr. Kelemen Péter György. Ph.D. Tézis

A lézer-szkenning citometria lehetőségei. Laser-scanning cytometer (LSC) Pásztázó citométer. Az áramlási citometria fő korlátai

Biofizika szeminárium. Diffúzió, ozmózis

Vérsejtszámlálás. 1. Az emberi vér alakos elemei. Vörösvértestek

TUMORSEJTEK FENOTÍPUS-VÁLTOZÁSA TUMOR-SZTRÓMA SEJTFÚZIÓ HATÁSÁRA. Dr. Kurgyis Zsuzsanna

Lymphoma sejtvonalak és gyerekkori leukémia (ALL) sejtek mikro RNS (mir) profiljának vizsgálata

Az immunrendszer ontogenezise, sejtjei, differenciálódási antigének és az immunszervek

Tóth Mónika Ágnes PTE ÁOK Biofizikai Intézet Kereskedelmi forgalomban kapható készülékek

Az immunrendszer ontogenezise, sejtjei, differenciálódási antigének és az immunszervek

ANTICANCER RESEARCH [Rákkutatás]

Retinoid X Receptor, egy A-vitamin szenzor a tüdőmetasztázis kontrolljában. Kiss Máté!

A szervezet védekezik a belső környezet állandóságát veszélyeztető, úgynevezett testidegen anyagokkal szemben. A szervezet számára idegen anyag lehet

1. előadás Immunológiai alapfogalmak. Immunrendszer felépítése

Immunológia alapjai 5-6. előadás MHC szerkezete és genetikája, és az immunológiai felismerésben játszott szerepe. Antigén bemutatás.

Vérsejtszámlálás. Bürker kamra

Monoklonális antitestek előállítása, jellemzői

Lentivírus termelése HEK293FT sejtekben és sejtek virális transzdukciója

Immunológiai módszerek a klinikai kutatásban

Immunológia alapjai. 10. előadás. Komplement rendszer

Royal Jelly (Méhanya-pempő) Első Magyar Apiterápia Konferencia Budapest. Medicus curat, natura sanat.

Neuronok előkészítése funkcionális vizsgálatokra. Az alkalmazható technikák előnyei és hátrányai. Neuronok izolálása I

orvostudományban nyban- In vitro Tuboly Eszter Sebészeti Műtéttani Intézet

Az orvosi biotechnológiai mesterképzés megfeleltetése az Európai Unió új társadalmi kihívásainak a Pécsi Tudományegyetemen és a Debreceni Egyetemen

Dendritikus sejtek differenciálódásának szabályozása hormonreceptorok által című OTKA pályázat záró jelentése.

A csodálatos Immunrendszer Lányi Árpád, DE, Immunológiai Intézet

Immunológia alapjai előadás. A humorális immunválasz formái és lefolyása: extrafollikuláris reakció és

Molekuláris Medicina

TÚLÉRZÉKENYSÉGI I. TÍPUSÚ TÚLÉRZÉKENYSÉGI REAKCIÓ A szenzitizáció folyamata TÚLÉRZÉKENYSÉGI REAKCIÓK ÁTTEKINTÉSE TÚLÉRZÉKENYSÉGI REAKCIÓK

INTRACELLULÁRIS PATOGÉNEK

Őssejtek és hemopoiézis 1/23

Emlıs sejtek tenyésztése

Ellenanyag reagensek előállítása II Sándor Noémi

Az áramlási citométer és sejtszorter felépítése és működése, diagnosztikai alkalmazásai

OTKA ZÁRÓJELENTÉS

elasztikus rostok: hajlékonyság sejtközötti állomány mukopoliszacharidjai

A Flowcytometriás. en. Sinkovichné Bak Erzsébet,

Az áramlási citometria gyakorlati alkalmazása az ondó rutin analízisben. Hajnal Ágnes, Dr Mikus Endre, Dr Venekeiné Losonczi Olga

Az ABCG2 multidrog transzporter fehérje szerkezetének és működésének vizsgálata

Immunológia alapjai. 16. előadás. Komplement rendszer

Immunológia alapjai előadás MHC. szerkezete és genetikája, és az immunológiai felismerésben játszott szerepe. Antigén bemutatás.

IQ TM 200 vizeletüledék vizsgáló automata

Tüdő adenocarcinomásbetegek agyi áttéteiben jelenlévő immunsejtek, valamint a PD-L1 és PD-1 fehérjék túlélésre gyakorolt hatása

Autoimmun vizsgálatok (ML AU)

SEJT- ÉS SZÖVETTENYÉSZTÉS Állati sejtek tenyésztése. Bevezetés. Történeti áttekintés. A tenyésztés alapjai. Tenyészetek növekedése

Biológiai módszerek alkalmazása környezeti hatások okozta terhelések kimutatására

Doktori értekezés tézisei

Jelátviteli folyamatok vizsgálata neutrofil granulocitákban és az autoimmun ízületi gyulladás kialakulásában

TestLine - PappNora Immunrendszer Minta feladatsor

A vérünk az ereinkben folyik, a szívtől a test irányába artériákban (verőerek), a szív felé pedig vénákban (gyűjtőerek).

Immunológia alapjai előadás. Az immunológiai felismerés molekuláris összetevői.

Komplementrendszer, fagociták, opszonizáció

Az örökítőanyag. Az élőlények örökítőanyaga minden esetben nukleinsav (DNS,RNS) (1)Griffith, (2)Avery, MacLeod and McCarty (3)Hershey and Chase

Immunkomplexek kialakulása, immunkomplexek által okozott patológiás folyamatok

Modern Biofizikai Kutatási Módszerek Kereskedelmi forgalomban kapható készülékek. Áramlási citometria (flow cytometry)

Állatkísérletek Elmélete és Gyakorlata- B szint

KLINIKAI IMMUNOLÓGIA I.

ELMÉLETI ÖSSZEFOGLALÓ

Környezetegészségtan 2016/2017. Immunológia 1.

BIOLÓGIAI HATÓANYAGOK TESZTELÉSE BIOTECHNOLÓGIAI MÓDSZEREKKEL

Átírás:

Sejtkultúra előállítása, steril munka feltételei Immunsejtek izolálása és funkcionális vizsgálata 2019. április 15. Kremlitzka Mariann, PhD

Miért tartunk fenn sejtkultúrákat? Egy sejt vizsgálat Kontrollált körülmények Hatóanyagok környezettől független vizsgálata Hátrány: nem komplex, in vitro evolúció primér (elsődleges) ill. szekunder (másodlagos) kultúra: az eredeti szervből, szövetből frissen eltávolított sejtekből illetve azok egyszeri átoltása (passzálása) révén készült kultúra; sejttörzs: a primer kultúrából néhány passzálás után kialakult, véges élettartamu (kb. 40-50 passzálás) sejtkultúra; sejtvonal: genetikailag viszonylag homogén, megfelelo körülmények között korlátlan ideig fenntarthato sejtkultúra. A legtöbb esetben vagy normál sejtek in vitro (kultúrában történo ) transzformációjával (retrovirális transzdukciós onkogéntranszfekcio révén) vagy tumor sejtek felhasználásával nyerik a sejtvonalakat.

Sejtkultúrák fenntartása Szuszpenzióban növő sejtek: centrifugálás vagy egyszerű higítás Pl. Limfoid sejtek: T-sejt és B-sejt kultúrák Letapadó sejtek: EDTA-s vagy tripszines emésztés, centrifugálás Pl. Epitél és fibroblaszt sejtek, makrofágok, dendritikus sejtek Letapadó sejtek (kontakt gátlás) Szuszpenzióban növő sejtek

Sejtkultúra készítés és fenntartás: STERILEN, csíramentesen = fülke alatt Pipetták Steril tenyésztőedények CO 2 termosztát/inkubátor Steril fülke Steril tápfolyadék (savó (KHS,FCS),antibiotikum stb.)

Tápfolyadék (médium) Feladata: biztosítja a növekedéshez szükséges tápanyagokat Többféle (RPMI, DMEM, IMDM, stb.), sejttípustól függ (ATCC honlap) Összetétel: sóóldat glükóz esszenciális aminosavak: pl. hisztidin, leucin, izoleucin, stb. vitminok: pl. folsav, nikotinamid, kolin, pantoténsav, stb. Pufferrendszer: ph fenntartásához, általában CO 2 /bikarbonát (HEPES, 25mM) Fenolvörös: ph indikátor savas: sejtek túlnőttek CO 2 konc. növekedés, sárga a médium lúgos: sejtek nem nőnek, lila a médium Szérum: általában FCS (magzati borjú szérum/fetal calf serum), 5-20% mennyiségben, olyan faktorokat tartalmaz, mely nélkülözhetetlen a növekedéshez

Steril munkavégzés szabályai A sejtlaboratóriumi munkavégzés során mindig viseljünk lehetőleg erre a célra rendszeresített köpenyt. A munka megkezdése előtt és befejezése után mindig alaposan mossunk kezet. Az egészségre veszélyes sejtkultúrák esetén viseljünk kesztyűt. Használat előtt és után illetve különböző fajtájú sejtek kezelése között a munkafelületet mossuk le 70 %-os alkohollal. A felület lemosása a fülke belsejéből kifelé történjen. A médiumot illetve a különböző oldatokat tartalmazó üvegeket mossuk le alkohollal, mielőtt a fülkébe tesszük őket. Vigyázzunk arra, hogy a nyitott edények felett ne nyúljunk át, hogy se az edények szája, sem az alkalmazott egyéb eszközök (pl. pipetták) ne érjenek hozzá semmihez. Mycoplasma teszt!!!

Immunkompetens sejtek izolálása Primer sejtek (állati, emberi): lép tímusz csontvelő nyirokcsomó, mandula hasüreg, tüdő, bélrendszer VÉR Vér Vérplazma (60%) + alakos elemek (40%) - eritrociták (4000-5000*10 6 /ml) - trombociták (150-400*10 6 /ml) - leukociták (5-10*10 6 /ml) Granulociták (neutr, bas, eos.) 65% Limfociták 30% monociták -5% Sejtvonalak: Korlátlanul osztódó állati és humán eredetű sejtek immortalizált sejtvonalak előny: könnyű fenntarthatóság

Immunsejtek aránya a különböző immun-szervekeben Fontos, hogy mit akarunk izolálni és mennyire könnyen hozzáférhető a forrás!!! B-sejt: csontvelő (m), mandula (h), lép(m), nyirokcsomók (m) T-sejt: tímusz (m), vér (h), lép (m), nyirokcsomók (m) NK sejt: vér (h) Monocita/Mf: vér (h), hasüreg (m) Dendritikus sejtek: alacsony sejtszám, izolálás lépből vagy differenciáció csontvelői sejtekből (m), vér-eredetű monocitákból (h, m) Neutrofilek: vér (h), csontvelő (m), tüdő (m) Tüdő, hasüreg, GALT, stb m: mouse, h: human

Sejtek izolálása egérből tímusz lép csontvelő 1. vvs mentesítés - ACK 2. szervek dezintegrálása, szűrés 3. sejtek festése, számolása: tripán kék életképesség Elpusztult sejt élő sejtek

Sejt koncentráció beállítás sejtszámláló kamrák Típusok: Bürker kamra Neubauer kamra Thoma Bürker-Türk Fuchs-Rosenthal Etc. A BÜRKER kamra 0.1 mm Részecske/uL= számolt részecske / (a számolt felszín területe * a kamra mélysége * higítás)

Ember: immunsejtek fő forrása a vér!!! +mandula, szinoviális folyadék, tüdő, stb. Limfocita populációk megoszlása ember vérben

Sűrűség-grádiens centrifugálás: eltérő fajsúlyú sejtek elkülönítése cukoroldattal

Sűrűség-grádiens centrifugálás: eltérő fajsúlyú sejtek elkülönítése Centrifugálás PBMC=PMNS: Vér (alvadásgátolt) Sűrűséggradiens médium (Ficoll, Lymphoprep, density:1.077g/ml VVT + granulociták + halott sejtek perifériás mononukleáris sejtek 85% T+B 15% Mo Adherens sejtek (Mo) eltávolítása: adherencia (kitapasztás) Monociták

Sűrűség-grádiens centrifugálás: alternatív módszerek RosetteSep módszer: https://www.stemcell.com/technical-resources/educational-materials/videos-and-webinars/rosettesep-cell-isolation-directly-from-whole-blood-withoutcolumns-or-magnets.html A nemkívánt sejteket VVT-estekkel aggregáltatjuk ellenanyagok segítségével Előny: gyors, egylépéses folyamat, kis mennyiségű vér esetén is használható Hátrány: tisztaság

Sűrűség-grádiens centrifugálás: alternatív módszerek SepMate módszer (sejtizoláló csövek): https://www.stemcell.com/sepmate-hassle-free-pbmcs-in-just-15-minutes.html 10perc Előny: gyors, egylépéses folyamat, kb. 20perc Hátrány: drága

Sűrűség-grádiens centrifugálás: Vérsejtek izolálása Monociták: PBMC rétegből, kitapasztás vagy mágneses sejtszortírozás vagy szortolás áramlási citométerrel B-sejtek: PBMC rétegből mágneses sejtszortírozással vagy szortolás áramlási citométerrel Monocita-mentes réteg: birkavvt rozettaképzés T-sejtek: PBMC rétegből mágneses sejtszortírozással vagy szortolás áramlási citométerrel Monocita-mentes réteg: birkavvt rozettaképzés, majd VVT lízis Neutrofil granulociták: Vérből VVT lízis után szortolás áramlási citométerrel Ficoll alatti réteg, VVT-k lízise vagy dextrán (1%) ülepítés Bazofil és eozinofil granulociták: Vérből Percoll oldattal, illetve mágneses sejtszeparálás Vérből VVT lízis után szortolás áramlási citométerrel

Mit tegyünk, ha CSAK 1-féle sejttípusra van szükségünk: JOLLY JOKER-ekJ Mágneses sejtszeparálás Sejtszortírozás áramlási citometriás módszerrel

Mágneses sejtszeparálás MACS: magnetic associated cell sorting 1. A sejteket azok sejtfelszíni molekuláira specifikus mágneses mikorgyöngyökkel kapcsoljuk össze 2. A sejtszuszpenziót mágneses térbe helyezzük 3. Pozitív vagy negatív szelekció révén tiszta sejtpopulációt nyerünk ki https://www.youtube.com/watch?v=jqqlxl0o4uw

Mágneses sejtszeparálás MACS: magnetic associated cell sorting 1. Pozitív szelekció: a kívánt sejthez kapcsoljuk a mikrogyöngyöt 2. Negatív szelekció: a nem-kívánt sejt(ek)hez kapcsoljuk a mikrogyöngyöt 3. Depléció: az eltávolítandó sejthez kapcsoljuk a mikrogyöngyöt Pozitív szelekció Negatív szelekció Depléció

Sejtszortírozás áramlási citofluorimetriával FACS: fluorescence activated cell sorting 1. Áramlási citofluorimetrián alapszik: mágneses gyöngyök helyett fluoreszcensen jelölt ellenanyagokat alkalmazunk a sejtek jelölésére, elkülönítésére 2. Pozitív vagy negatív szelekció Előny: nagy tisztaság a többféle marker használatának közönhetően Hátrány: drága, speciális műszer

A sejtszeparálás hatékonyságának ellenőrzése Áramlási citofluorimetriás méréssel CD19, CD20: B sejt marker CD3: T sejt marker CD16 + CD56: NK sejt marker CD14 + CD16. monocita, Mf marker CD11c+, CD14-: DC marker

Köszönöm a figyelmet!!!