Alu-inszerciós polimorfizmus saját hajszálból izolált DNS mintákbon

Hasonló dokumentumok
3. gyakorlat: nukleinsav-tisztítás, polimeráz láncreakció

DNS munka a gyakorlatban Természetvédelmi genetika

In Situ Hibridizáció a pathologiai diagnosztikában és ami mögötte van.

DNS-szekvencia meghatározás

SALMONELLA SSP. GYORS, MOLEKULÁRIS BIOLÓGIAI MÓDSZEREKKEL TÖRTÉNŐ DETEKTÁLÁSA

TRIPSZIN TISZTÍTÁSA AFFINITÁS KROMATOGRÁFIA SEGÍTSÉGÉVEL

Genetikai panel kialakítása a hazai tejhasznú szarvasmarha állományok hasznos élettartamának növelésére

Molekuláris biológiai eljárások alkalmazása a GMO analitikában és az élelmiszerbiztonság területén

Engedélyszám: /2011-EAHUF Verziószám: Humángenetikai vizsgálatok követelménymodul szóbeli vizsgafeladatai

DNS molekulák elválasztása agaróz gélelektroforézissel és kapilláris elektroforézissel

GÉNTECHNOLÓGIA ÉS PROTEIN ENGINEERING GYAKORLAT

Patogén mikroorganizmusok vizsgálata molekuláris biológiai módszerekkel

mintasepcifikus mikrokapilláris elektroforézis Lab-on-Chip elektroforézis / elektrokinetikus elven DNS, RNS, mirns 12, fehérje 10, sejtes minta 6

Algaközösségek ökológiai, morfológiai és genetikai diverzitásának összehasonlítása szentély jellegű és emberi használatnak kitett élőhelykomplexekben

Molekuláris genetikai vizsgáló. módszerek az immundefektusok. diagnosztikájában

A termesztett búza diploid őseinek molekuláris citogenetikai elemzése: pachytén- és fiber-fish.

5. Molekuláris biológiai technikák

A genetikai lelet értelmezése monogénes betegségekben

Új temékek az UD- GenoMed Kft. kínálatában!

Fotoszintézis. fotoszintetikus pigmentek Fényszakasz - gránum/sztrómalamella. Sötétszakasz - sztróma

NÖVÉNYGENETIKA. Az Agrármérnöki MSc szak tananyagfejlesztése TÁMOP /1/A

GENOMIKA TÖBBFÉLE MAKROMOLEKULA VIZSGÁLATA EGYIDŐBEN

NATRII AUROTHIOMALAS. Nátrium-aurotiomalát

SZILÁRD FÁZISÚ EXTRAKCIÓ MINDIG UGYANÚGY

A bioinformatika gyökerei

Mivel korábban már végeztünk mikroszatellit elemzést (Liker et al 2009), a kiértékeléshez szükséges szoftverek és tapasztalat rendelkezésre áll.

A humán mitokondriális genom: Evolúció, mutációk, polimorfizmusok, populációs vonatkozások. Egyed Balázs ELTE Genetikai Tanszék

7. A b-galaktozidáz indukciója Escherichia coliban

Mangalica specifikus DNS alapú módszer kifejlesztés és validálása a MANGFOOD projekt keretében

I. A sejttől a génekig

Készült: Módosítva: július

4.3. Mikrofluidikai csipek analitikai alkalmazásai

cobas KRAS Mutation Test KRAS

MINTAJEGYZŐKÖNYV A VÉRALVADÁS VIZSGÁLATA BIOKÉMIA GYAKORLATHOZ

Az örökítőanyag. Az élőlények örökítőanyaga minden esetben nukleinsav (DNS,RNS) (1)Griffith, (2)Avery, MacLeod and McCarty (3)Hershey and Chase

DNS molekulák elválasztása agaróz gélelektroforézissel és kapilláris elektroforézissel

SZÉRUM KOLESZTERIN ÉS TRIGLICERID MEGHATÁROZÁS

A basidiomycota élesztőgomba, a Filobasidium capsuligenum IFM törzse egy olyan

12/4/2014. Genetika 7-8 ea. DNS szerkezete, replikáció és a rekombináció Hershey & Chase 1953!!!

COBAS TaqMan HBV Test HBV HPS

VIZSGÁLATOK IDEGEN KÓROKOZÓKRA HUMÁN ÉLŐVÍRUS-VAKCINÁKBAN

Könyvtárak, szekvenálás, mutagenezis

cobas TaqScreen MPX Test, version 2.0 for use on the cobas s 201 system

A kvantitatív PCR alkalmazhatósága a fertőző bronchitis vakcinák hatékonysági vizsgálatában. Derzsy Napok, Sárvár, 2011 Június 2-3.

Proteomikai metodikák az élelmiszervizsgálatban

cobas TaqScreen MPX Test, version 2.0 for use on the cobas s 201 system

Genetikailag módosított növények detektálása élelmiszerekben polimeráz láncreakcióval

In situ hibridizáció különböző módszereinek adaptálása és továbbfejlesztése búza genetikai alapanyagok elemzésére

Szakmai zárójelentés. 1. Strukturális genomika Az RPS13 gén szekvenciájához homológ régió deléciója M. sativa-ban

Prenatalis diagnosztika lehetőségei mikor, hogyan, miért? Dr. Almássy Zsuzsanna Heim Pál Kórház, Budapest Toxikológia és Anyagcsere Osztály

KERINGŐ EXTRACELLULÁRIS VEZIKULÁK ÁLTAL INDUKÁLT GÉNEXPRESSZIÓS MINTÁZAT VIZSGÁLATA TROPHOBLAST SEJTVONALBAN

Poligénes v. kantitatív öröklődés

Nagyhatékonyságú folyadékkromatográfia (HPLC)

ADATBÁNYÁSZAT I. ÉS OMICS

A szamóca érése során izolált Spiral és Spermidin-szintáz gén jellemzése. Kiss Erzsébet Kovács László

Diagnosztikai célú molekuláris biológiai vizsgálatok

Új temékek az UD-GenoMed Kft. kínálatában!

HAPMAP Nemzetközi HapMap Projekt. SNP GWA Haplotípus: egy kromoszóma szegmensen lévő SNP mintázat

Gyakorlati Forduló Fizika, Kémia, Biológia

Toxicological Research Center

cobas 4800 CT/NG Test

Fehérje expressziós rendszerek. Gyógyszerészi Biotechnológia

A DNS replikációban kulcsszerepet játszó PCNA fehérje variánsok előállítása és rekombináns DNS technológia segítségével való kifejezése

Magyar vakcsiga (Bythiospeum hungaricum (Soós, 1927)) egy szisztematikai probléma vizsgálata genetikai módszerekkel

TEMATIKA Biokémia és molekuláris biológia IB kurzus (bb5t1301)

POSEIDON DNS PRÓBÁK. Felhasználói Kézikönyv. Használati útmutató. Használati útmutató

Gyógyszerrezisztenciát okozó fehérjék vizsgálata

Zárójelentés. A szkizofrénia diagnosztizálására alkalmas perifériás genetikai marker azonosítása c. T számú OTKA témáról

GLUCAGONUM HUMANUM. Humán glükagon

A PTCH GÉN POLIMORFIZMUSAINAK SZEREPE A BASALIOMÁK. Semmelweis Egyetem Általános Orvos Kar Bőr-, Nemikórtani és Bőronkológiai Klinika

COBAS TaqMan CT Test, v2.0

Használati utasítás a Biofortuna SSPGoTM HLA No Template Control Kit-hez BF ( Templát nélküli kontrollkészlet 2. átdolgozás 2014.

SERTRALINI HYDROCHLORIDUM. Szertralin-hidroklorid

PLASMA HUMANUM COAGMENTATUM CONDITUMQUE AD EXSTIGUENDUM VIRUM. Humán plazma, kevert, vírus-inaktiválás céljából kezelt

NUKLEINSAV-AMPLIFIKÁCIÓS MÓDSZEREK

artus EBV RG PCR készlet kézikönyv

SZABVÁNYMŰVELETI ELŐÍRÁS

cobas TaqScreen MPX Test for use on the cobas s 201 system

AZ IBUPROFEN AEROB ÉS ANAEROB

CURCUMAE XANTHORRIZAE RHIZOMA. Jávai kurkuma gyökértörzs

SZOMATIKUS ÉS Y KROMOSZÓMÁN LOKALIZÁLÓDÓ STR MARKEREK POPULÁCIÓGENETIKAI VIZSGÁLATA

3. HPV típusok meghatározása RFLP analízissel, típus-specifikus PCR módszerrel és blot assay módszerrel.

Kromoszómák, Gének centromer

Biológus MSc. Molekuláris biológiai alapismeretek

A HLA antigének és biológiai jelentőségük.

Áramlási citometria / 4. Immunológiai és Biotechnológiai Intézet PTE KK

A DNS szerkezete. Genom kromoszóma gén DNS genotípus - allél. Pontos méretek Watson genomja. J. D. Watson F. H. C. Crick. 2 nm C G.

LINEAR ARRAY HPV Genotyping Test

Biomassza alapú bioalkohol előállítási technológia fejlesztése metagenomikai eljárással

A Hardy-Weinberg egyensúly. 2. gyakorlat

Téli kedvezményes ajánlataink

A PCR TECHNIKA ÉS ALKALMAZÁSI TERÜLETEI

TÉMAKÖRÖK. Ősi RNS világ BEVEZETÉS. RNS-ek tradicionális szerepben

Biológiai módszerek alkalmazása környezeti hatások okozta terhelések kimutatására

Többgénes jellegek. 1. Klasszikus (poligénes) mennyiségi jellegek. 2.Szinte minden jelleg több gén irányítása alatt áll

COBAS AMPLICOR IN VITRO DIAGNOSZTIKAI CÉLRA.

Klinikai Genomika Központ Biobankok

Genomika. Mutációk (SNP-k) és vizsgálatuk egyszerű módszerekkel. DNS szekvenálási eljárások. DNS ujjlenyomat (VNTR)

DNS KLÓNOZÁS: Egy DNS molekula megsokszorozása. In vivo-különféle gazdasejtekben

DNS KLÓNOZÁS: Egy DNS molekula. In vivo-különféle gazdasejtekben

Átírás:

Alu-inszerciós polimorfizmus saját hajszálból izolált DNS mintákbon A kisérlet 60 perces előkészitő fázisra + 2 gyakorlati alkalomra tervezett. Előkészités: hajhagymák kiszedése, sejtek lizise, előkészités DNS izolálásra (60 perc) 1. gyakorlat: DNS izolálás Micro-Spin genomiális DNS kit segitségével. PCR összeállitása specifikus Alu primérekkel. PCR futása a gyakorlatot követő éjjelen. 2. gyakorlat: PCR-al amplifikált DNS fragmentek agaróz gélen történő szétválasztása, a fragmentek láthatóvá tétele nem toxikus Gel-star festékkel. A fragmentumok eltérő hosszúsága alapján az Alu polimorfizmus értékelése a különböző egyedekben. Az Alu szekvenciák olyan ismétlődő (repetitiv) DNS szakaszok, amelyek nagy számban és szétszórva találhatók a genomban. A szétszórt ismétlődő szekvenciákat az ismétlődési egységek hossza alapján osztályozzák, a SINE (short interspersed nuclear element = rövid közbeiktatott szakasz) jellemzője az ismétlődési egységek igen nagy száma. A legismertebb SINE az Alu szekvencia (nevét a felderítésére használt Alu I restrikciós enzimről kapta) mely kb. 300 bázispár hosszú, de az evolució során már több mint 1 000 000 kópiában halmozódott fel a humán genomban és ezzel becslések szerint a genom közel 10%-át alkotja. A LINE (long interspersed nuclear element = hosszú közbeiktatott szakasz) 1,4-6,1 kilobázis hosszú, és sokkal kisebb a kópiaszáma. Mindkét típus áthelyeződésre képes elem, azaz olyan instabil DNS szakasz, transzpozon, amely képes a genomon belüli helyváltoztatásra. Ennek módja retrotranszpozíció, vagyis először egy RNS szintetizálódik az ugráló elemről, amelyről reverz transzkripcióval DNS készül, és ez épül be valahova a genomiális DNS-be, akár mutációt is okozva ezzel. Mind a SINE, mind a LINE általában nem kódoló DNS szakaszokban fordul elő (de nem feltétlenül), a kromoszómán belüli megoszlásuk eltérő. Az evolució során beépült Alu szekvenciák mintegy fosszilis leletet képeznek a genomban, legtöbb szekvencia megtalálható a megfelelő helyen a főemlősök genomjában is, de kb. 2000 beépült Alu szekvencia specifikus az emberre, utalva az időben közeli integrációra (1. ábra).

1. ábra: Az Alu elemek expanziója főemlősökben. A különböző Alu családok (J,Sx,Sg1,Y,Yb8,Yb9,Ya5a2,Yc1) szuperponálódnak a főemlősök evolúciója során. A fiatal (young) Alu alcsaládok az afrikai majmoktól történt elágazás után épültek be a humán genomba. Néhány Y alcsaládhoz tartozó Alu elem időben annyira közel épült be a humán genomba, hogy kétféle előfordulásuk lehetséges: vagy történt inszerció, vagy nem, ezért alkalmasak genomiális polimorfizmus vizsgálatra. Mya:million years ago. Bár az Alu elemek kópiaszáma millió felett van, ennek csak kevesebb mint 0,55%-a polimorf. Az Alu-inszerciós polimorfizmus analizis egyedülállóan alkalmas filogenetikai vizsgálatokra, a származás részleteinek tisztázására a populációgenetikában. Mivel az Alu inszerciós polimorfizmus elég ritka, az evoluciós idő hosszú, a retrotranszpozició sebessége jelenleg nagyon alacsony, igy elég nagy valószinüséggel mondható, hogy különböző egyedekben csak akkor található meg ugyanaz a közbeiktatott Alu szekvencia, ha az egyedeknek van közös ősük. Az afrikai majmoktól való szétválás óta a humán genomba beépült többezer Alu elem közül néhányról (igen kevés: 0,1%) ismert, hogy káros mutációt okoz, megváltoztatja bizonyos gének expresszióját és ezáltal öröklött megbetegedésekhez vezethet (2.ábra), mint pl. neurofibromatózis, mellrák, hemofilia, kolinészteráz deficiencia, komplement hiány. Más öröklött megbetegedéseket mint pl. az inzulin-rezisztens diabetesz, Lesch-Nyhan szindróma, komplement C3 deficiencia, familiáris hiperkoleszterinémia, az Alu szekvencia által mediált rekombinációval hoztak kapcsolatba.

2. ábra Alu-inszerció által indukált károsodási lehetőségek A sötétebb boxok exonokat jelölnek. A fekete nyilak már meglévő Alu elemeket mutatnak, amelyek különböző irányban épülhetnek be az intronokba. További Alu elem beépülését szürke vastag Alu nyilak jelzik, a genomra való lehetséges hatás a vékony szürke nyilak alatt. Szerencsére azonban a legtöbb egyedi Alu-inszerciós polimorfizmus teljesen ártalmatlan, meglétük a genetikai variancia alapját képezi, kapcsoltsági és fizikai térképek készitésére valamint populációs tanulmányokra alkalmazhatók. Gyakorlat leirása: (Termenként 3 munkacsoport) 1. DNS izolálás A gyakorlaton a DNS izolálása az E.Z.N.A micro-spin genomic kit felhasználásával (Omega- Biotek) történik. A kit genomiális DNS izolálására alkalmas, különösen abban az esetben, amikor a minta csak igen kis mennyiségben áll rendelkezésre, mint pl. hajszál, vérnyomok, cigaretta csikk, körömdarab, nyál stb. A kit fő egysége egy szilikagél alapú nukleinsav kötő oszlop (HiBind microspin-oszlop), amely specifikusan, de reverzibilisen köti a DNS-t. Továbbá tartalmaz olyan speciális reagenseket is, amelyek a mintában található sejteket lizálják, az RNS-t enzimatikusan degradálják, hogy megelőzzék a DNS RNS-el való elszennyeződését. A microspin oszlopot alkalmazó módszer előnye, hogy az oszlop nagyon hatékonyan köti a DNS-t, majd a gyors izolálási folyamat végén neutrális közegben eluálható a tiszta DNS. Ezzel szemben a szerves oldószerekkel extrahált DNS tartalmazhat szerves oldószer maradványokat amelyek igen toxikusak, továbbá gátolhatják az izolálást követő amplifikációt. A kitben rendelkezésre áll egy detergens (TL puffer), amely a mintában található kevés számu sejt hatékony lizisére szolgál, valamint egy hőstabil proteáz (OB proteáz) amely a mintában lévő fehérjéket bontja. A kit még további két puffert tartalmaz, amely egyrészt DNS szelektiv megkötéséhez szükséges sókoncentrációt biztositja (BL puffer), másrészt a DNS-en kivüli egyéb szennyeződések eltávolitására szogál (HB puffer), valamint egy DNS mosó folyadékot (DNS

wash puffer) és egy DNS eluáló puffert. 2. Polimeráz láncreakció (PCR) Az eluált tiszta DNS-ből specifikus primerek segitségével amplifikáljuk a kérdéses Alu polimorf szekvenciát tartalmazó génszakaszokat. Az AluYg6 alcsalád két tagját azonositjuk: az Yg6AH98-t és az Yg6AH133-t, PCR technikát alkalmazva. Az AluYg6 alcsaládnak 160 tagja van, kb.1,65 millió évvel ezelőtt épült be a humán genomba, Y: young. A polimorfizmus előfordulása mindkét kiválasztott elemnél közepes frekvenciáju, ami azt jelenti, hogy az Alu inszerció megjelenése változó volt legalább egy eddig mért populációban, ellentétben az alacsony frekvenciával, ahol nem volt polimorfizmus és a magas frekvenciával, ahol a polimorfizmus mindenkinél kimutataható. A PCR összeállitásához 2xtömény reakció keveréket használunk, amely 200μM dntp-t, 1.25 unit Taq polimerázt tartalmaz a megfelelő TRIS-HCl pufferben. Ehhez adjuk hozzá a specifikus forward és reverse primereket (10pM) valamint az izolált DNS templátot. Yg6AH98 5 primer szekvencia ( forward ): GCACCATCGATGAAATAAT 3 primer szekvencia ( reverse ): ATGGTCAGAGAGCAGACATT Yg6AH133 5 primer szekvenca ( forward ): GAAAGAATCGTATGCTGAGG 3 primer szekvencia ( reverse ): CAGACCCACTTGCTGTCTAT 3. Horizontális agaróz gélelektroforézis Az amplifikált DNS-t 1,5%-os agaróz gélen (a gélbe már előzőleg oldva van a Gel-Star DNS festék) DNS létra és pozitiv kontrolok jelenlétében megfuttatjuk, megállapitjuk a pozitiv kontrollok valamint a hajszálból származó amplifikált DNS termékek molekulasúlyát. Lehetséges PCR termékek hossza Yg6AH98 primert használva: 181bp (Alu inszert nélkül) 497bp (Alu inszerttel) Yg6AH133 primert használva: 229bp (Alu inszert nélkül) 553bp (Alu inszerttel)

Értékelés: Sikeres volt-e a PCR? A hajszálból származó amplifikált DNS termékek molekulasúlyanak megállapitása, összehasonlitása a pozitiv kontrollokkal. Kinél találunk Alu-inszerciót? Gyakorlat kivitelezése. Előkészités: - Csoportonként 1 kiválasztott emberből tépjen ki minimum 5 hajszálat ugy, hogy a hajhagyma ép, erős maradjon. - Vágja le a hajszálakat, és a hajhagymákat gyüjtse az előkészitett Eppendorf csőbe. - +300µl TL puffer, vortex, potterezés, homogenizálás, sejtek lizálása - +20µl OB proteáz - Inkubáció 60 o C-on minimum 60 percig, közben egy-kétszer vortexelve potterezve. - Számozott minták tárolása -20 o C-on, a mintákat a 1. gyakorlati héten kapja vissza 1. Gyakorlat: DNS izolálás az előző gyakorlaton előkészitett, proteázzal emésztett hajszál follikulus sejtekből: - minták gyors centrifugálása 13000 rpm-en 1 percig - + 320µl BL puffer, intenziv vortex 20 sec. - inkubáció 70 o C-on 20 percig, közben párszor vortex 10 sec-ig, centrifugálás 13 000. rpmen 5 percig, a maradék sejttörmelék eltávolitása, DNS kötődés megfelelő puffere. Pipettázza át a teljes felülúszót uj Eppendorf csőbe. - + 0,5ml etanol, intenziv vortexelés 20 sec-ig. - Állitsa össze a Micro-spin oszlopot egy előkészitett 2ml-es gyüjtőcsőbe. Pipettázzon át 600µl-t a DNS mintából az oszlopba. Centrifugálás 8000rpm-n 1 percig, a DNS kötődik, öntse ki a csőből a folyadékot és használja újra a csövet. - Ismét állitsa a Micro-spin oszlopot az Eppendorf csőbe (használt) és pipettázza át a maradék DNS mintát, ismét centrifugálás 8000 rpm-en 1 percig, tartsa meg az oszlopot

dobja el a csövet benne a folyadékkal. - Állitsa az oszlopot egy új gyüjtőcsőbe. - + 500µl HB puffer, a puffer biztositja a DNS-en kivüli anyagok eltávolitását az oszlopról. Centrifugálás 8000 rpm-en 1 percig, dobja el a folyadékot és a csövet. - Állitsa az oszlopot egy új 2ml-es csőbe és mossa a DNS-t 650ul DNS mosófolyadékkal. Centrifugálja 8000 rpm-en 1 percig, dobja el a folyadékot és tartsa meg a csövet. Mosás és centrifugálás még egyszer 650µl DNS mosófolyadékkal, dobja el a végén a folyadékot, a csövet használja újra. - Centrifugálja az üres csövet az oszlopon a DNS-el 13000 rpm-en 3 percig, membrán kiszáritása. - Állitsa az oszlopot egy uj 1,5 ml-es csőbe + 50µl előmelegitett (70 o C) eluáló puffer, inkubálás 70 o C-on 3 percig. DNS elúciója: centrifugálás 13000 rpm-en 2 percig, az elució megismétlése ugyanazzal az 50µl-el növeli az elució hatásfokát. Fontos! Inkubációs időket, térfogatokat, hőmérsékleteket valamint a centrifugálási lépések idejét, rpm-ét, csövek ujrahasználatát és eldobását pontosan be kell tartani, mivel az izolálandó DNS mennyisége igen kicsi! PCR összeállitása az eluált DNS mintákból (30µl-ben) 1.minta 2.minta 2x tömény PCR mix 15µl 15µl primer98 forward 5 - primer98 reverse 5 - primer133 forward - 5 primer133 reverse - 5 templát DNS 5 5 PCR kondiciók: kezdeti denaturáció 95 o C-on 5 percig

denaturáció 95 o C, 30 sec 45 ciklus összekapcsolódás 50 o C, (primer specifikus hőmérséklet) 1 perc szintézis 72 o C, 2 perc végső szintézis: 7 perc 2. Gyakorlat Amplifikált minták agaróz gélelektroforézise, átvilágitása, értékelése DNS festéket tartalmazó gél készitése (előkészitőben): 20ml agaróz készitéséhez 300mg agarózt oldunk elektroforézis pufferben 100 o C-on, 55-65 o C-ra való visszahütés után hozzáadunk 2µl Gel-Star DNS festéket. A Gel-Star egy fényérzékeny fluoreszcens festék, nem toxikus, amely már 10ng koncentrációban is láthatóvá teszi a DNS-t kék fény átvilágitással. A gelet kiöntés után a dermedésig sötétben hütőszekrényben kell tárolni. Mintakezelés (pozitiv kontrollok és a hajszálból amplifikált DNS minták): A filled (Alu inszertet tartalmazó) és az empty (inszertet nem tartalmazó) genotipusok megállapitásának megkönnyitése érdekében pozitiv kontrollokat is alkalmazhatunk, amelyek korábban izolált DNS mintákból származnak. Pozitiv kontrollok: Yg6AH98 empty Yg6AH98 filled Yg6AH133 empty Yg6AH133 filled 5μl minta+ 1μl 6x tömény orange mintakezelő festék. Mindhárom csoport együttesen 1 sorozat pozitiv kontrollt visz fel a gélre. Amplifikált DNS minták: 10µl minta+ 2µl 6x tömény orange mintakezelő festék. 5µl DNS létrát viszünk fel gelenként a DNS hosszúságának megállapitásához. 1 DNS létra/gél. Futtatás paraméterei: idő: 40 perc, 100mA. A futtatás ideje alatt a fényérzékeny festék miatt a futtatókádat le kell takarni. Értékelés: UV átvilágitás mellett.