4.3. Mikrofluidikai csipek analitikai alkalmazásai

Hasonló dokumentumok
Fehérjék elválasztására alkalmazható mikrofludikai rendszerek Bioanalyzer, LabChip rendszerek. A készülékek működési elve, felépítésük, alkalmazásuk.

mintasepcifikus mikrokapilláris elektroforézis Lab-on-Chip elektroforézis / elektrokinetikus elven DNS, RNS, mirns 12, fehérje 10, sejtes minta 6

Elektroforetikus mikrochip

Kapilláris elektroforézis

10. Hét. Műszeres analitika Elektroforetikus analitikai technikák. Dr. Kállay Csilla (Dr. Andrási Melinda)

ELMÉLETI, SZÁMOLÁSI FELADATOK

Kapilláris elektroforézis lehetőségei. Szabó Zsófia Országos Gyógyintézeti Központ Immundiagnosztikai Osztály

Gyakorlati Forduló Válaszlap Fizika, Kémia, Biológia

Engedélyszám: /2011-EAHUF Verziószám: Humángenetikai vizsgálatok követelménymodul szóbeli vizsgafeladatai

AZ ELVÁLASZTÁSTECHNIKA KORSZERŰ MÓDSZEREI

DR. FEKETE JENŐ. 1. ábra: Átviteli módok HPLC, GC ill. CE technikák esetén

KAPILLÁRIS ELEKTROFORÉZIS. dolgozat az Elválasztási műveletek a biotechnológiai iparokban c. tárgyhoz

A TÖMEGSPEKTROMETRIA ALAPJAI

Szedimentáció, Biofizika szeminárium 2. szemeszter

Nagyhatékonyságú folyadékkromatográfia (HPLC)

Áttekintő tartalomjegyzék

Szedimentáció, elektroforézis. Biofizika előadás Talián Csaba Gábor

3/11/2015 SZEDIMENTÁCIÓ ELEKTROFORÉZIS. Szedimentáció, elektroforézis. Alkalmazások hematológia - vér frakcionálása

Vg = fv. = 2r2 ( ρ ρ 0 )g. v sed. 3 r3 πg = 6πη 0. V = 4 3 r3 π

Kromatográfiás módszerek

Abszorpciós fotometria

DNS molekulák elválasztása agaróz gélelektroforézissel és kapilláris elektroforézissel

Biofizika szeminárium

Abszorpciós fotometria

Ecetsav koncentrációjának meghatározása titrálással

Mikrofluidika I. - Alapok

DNS-szekvencia meghatározás

PHYWE Fizikai kémia és az anyagok tulajdonságai

ADATBÁNYÁSZAT I. ÉS OMICS

ELEKTROFORÉZIS TECHNIKÁK

Anyagszerkezet vizsgálati módszerek

Az elválasztás elméleti alapjai

(β-merkaptoetanol), a polipeptid láncok közötti diszulfid hidak (-S-S-) felbomlanak (1. ábra).

Adatgyőjtés, mérési alapok, a környezetgazdálkodás fontosabb mőszerei

E (total) = E (translational) + E (rotation) + E (vibration) + E (electronic) + E (electronic

Kromatográfia Bevezetés. Anyagszerkezet vizsgálati módszerek

Szárítás kemence Futura

DNS molekulák elválasztása agaróz gélelektroforézissel és kapilláris elektroforézissel

Hidrodinamikus kavitáción alapuló víztisztítási módszer vizsgálata

10. CSI. A molekuláris biológiai technikák alkalmazásai

Molekuláris biológiai eljárások alkalmazása a GMO analitikában és az élelmiszerbiztonság területén

Abszorpciós fotometria

Mangalica specifikus DNS alapú módszer kifejlesztés és validálása a MANGFOOD projekt keretében

Genetikai panel kialakítása a hazai tejhasznú szarvasmarha állományok hasznos élettartamának növelésére

Gyakorlati Forduló Fizika, Kémia, Biológia

Káplán Mirjana Környezettudomány MSc

A fény tulajdonságai

Az áramlási citométer és sejtszorter felépítése és működése, diagnosztikai alkalmazásai

Szedimentáció, elektroforézis

rugós erőmérő parafa dugó kapilláris csövek drótkeret cérnaszállal műanyag pohár víz, mosogatószer

Elektroforézis technikák

MŰSZAKI LEÍRÁS 1. rész

A Legionella jelenlétének kimutatása

JASCO FTIR KIEGÉSZÍTŐK - NE CSAK MÉRJ, LÁSS IS!

Elektroforetikus elválasztások kapillárisban és mikrocsipben. MTA doktori értekezés. Gáspár Attila

Viaszvesztéses technológia

Környezetvédelmi analitika II. (BMEVESAM108) Immunanalitika, Lab-on-a-chip

2011. január április 10. IPK Gatersleben (Németország) május 17. Kruppa Klaudia

USB I/O kártya. 12 relés kimeneti csatornával, 8 digitális bemenettel (TTL) és 8 választható bemenettel, mely analóg illetve TTL módban használható.

Szedimentáció, Elektroforézis. Kollár Veronika

Lakos István WESSLING Hungary Kft. Zavaró hatások kezelése a fémanalitikában

Orvosi diagnosztika tenyérnyi eszközökön

1. ábra: egészséges, normál szérumfehérje -frakciók (bal) ill.-komponensek (jobb) kapilláris elektroforézis képe

POLIMERTECHNIKA Laboratóriumi gyakorlat

Mérési feladat: Illékony szerves komponensek meghatározása GC-MS módszerrel

Élelmiszerek. mikroszennyezőinek. inek DR. EKE ZSUZSANNA. Elválasztástechnikai Kutató és Oktató Laboratórium. ALKÍMIA MA november 5.

Transzportfolyamatok. összefoglalás, általánosítás Onsager egyenlet I V J V. (m/s) áramvonal. turbulens áramlás = kaotikusan gomolygó áramlás

On-line és off-line helyszíni hibagáz analízis. Czikó Zsolt MaxiCont Kft. 2009/10/16 1

MÁGNESES TÉR, INDUKCIÓ

TABLETTÁK ÉS KAPSZULÁK SZÉTESÉSE

Abszorpciós spektroszkópia

Németh Anikó 1,2, Kosáry Judit 1, Fodor Péter 1, Dernovics Mihály 1

Dr. JUVANCZ ZOLTÁN Óbudai Egyetem Dr. FENYVESI ÉVA CycloLab Kft

1. A MÓDSZER RÖVID ÁTTEKINTÉSE

KS-407-H / KS-107-H BELSŐTÉRI KIVITELŰ, TÖBB CÉLÚ, LÉGFŰTÉSES/-HŰTÉSES SZŰRŐHÁZ, SZONDASZÁR IZOKINETIKUS AEROSZOL - PORMINTAVEVŐ MÉRŐKÖRHÖZ

Használati útmutató. A Hungary Mérleg Kft. által forgalmazott EQC típusú digitális mérleghez.

MEDINPROT Gépidő Pályázat támogatásával elért eredmények

KROMATOGRÁFIÁS VIZSGÁLATI MÓDSZEREK

Kontrol kártyák használata a laboratóriumi gyakorlatban

Minőségbiztosítás, validálás

Radionuklidok meghatározása környezeti mintákban induktív csatolású plazma tömegspektrometria segítségével lehetőségek és korlátok

Zárójelentés. ICP-OES paraméterek

Bioinformatika előadás

XXI. NEMZETKÖZI GÉPÉSZETI TALÁLKOZÓ

A jövő anyaga: a szilícium. Az atomoktól a csillagokig február 24.

Az áramlási citometria gyakorlati alkalmazása az ondó rutin analízisben. Hajnal Ágnes, Dr Mikus Endre, Dr Venekeiné Losonczi Olga

5. Laboratóriumi gyakorlat

CSEPPENÉSPONT

Indikátorok alkalmazása a labordiagnosztikai eljárások minőségbiztosításában

NE HABOZZ! KÍSÉRLETEZZ!

Az új Thermo Scientific icap TQ ICP-MS bemutatása és alkalmazási lehetőségei. Nyerges László Unicam Magyarország Kft április 27.

SZILÁRD FÁZISÚ EXTRAKCIÓ MINDIG UGYANÚGY

Igény a pontos minőségi és mennyiségi vizsgálatokra: LC-MS/MS módszerek gyakorlati alkalmazása az élelmiszer-analitikában

7. Festékelegyek elválasztása oszlopkromatográfiás módszerrel. Előkészítő előadás

Korszerű tömegspektrometria a. Szabó Pál MTA Kémiai Kutatóközpont

89. A szorpciós folyamat szerint milyen kromatográfiás módszereket ismer? Abszorpciós, adszorpció, kemiszorpció, gél

JAVÍTÁSI-ÉRTÉKELÉSI ÚTMUTATÓ. Orvosi laboratóriumi technikai asszisztens szakképesítés Műszer és méréstechnika modul. 1.

SZILÁRD FÁZISÚ EXTRAKCIÓ OFFLINE AUTOMATIZÁLÁSÁNAK LEHETŐSÉGEI BIOTAGE KÉSZÜLÉKEKKEL

Természetvédő 1., 3. csoport tervezett időbeosztás

Klórbenzol lebontásának vizsgálata termikus rádiófrekvenciás plazmában

Átírás:

367 4.3. Mikrofluidikai csipek analitikai alkalmazásai 4.3.1. DNS meghatározása A kettős szálú DNS példáján kiválóan demonstrálhatók a mikrofluidikai eszközökön (csip, lab-on-a-chip) elérhető gyors és nagyfelbontású elválasztások. A DNS meghatározás volt célja az 1999-ben a kereskedelemben először megjelent csipnek is. Mára számos csip-alapú eszközt kifejlesztettek, amikkel például PCR termékek analízisét vagy DNS ujjlenyomat vizsgálatot lehet végezni. A DNS fragmentumok elektroforetikus elválasztása az elmúlt 60 év egyik legfontosabb prioritása volt az analitikai kémiában, hiszen a DNS az a biomolekula, mely az élő szervezet valamennyi genetikai információját magában hordozza. Egy adott DNS szakasz (azonos hosszúságú és szekvenciájú) nagy mennyiségben előállítható a PCR (polimeráz-láncreakció) technika alkalmazásának köszönhetően, ezért ideális tesztkomponens gélelektroforézishez, ahol méret alapján történik az elválasztás. A fiziológiás ph-n a DNS negatív töltésű. Szabad oldatokban (nem gélben) végrehajtott elektroforézisnél a 200 bázispárnál hosszabb kettős szálú DNS molekuláknak hasonló az elektroforetikus mozgékonyságuk, így elválasztásuk nem lehetséges. Polimermátrixban (pl. kémiailag térhálósított gélekben vagy polimer oldatokban) azonban a különböző hosszúságú DNS molekulák kölcsönhatásba lépve mátrixszal az elektromos erőtérben eltérő sebességgel fognak haladni, a kisebb DNS fragmentek gyorsabban vándorolnak, mint a nagyobbak, azaz méret szerint szeparálódnak. A hatvanas évektől a (lap)gél elektroforézis volt a DNS meghatározások standard eszköze. A nyolcvanas években a kapilláris elektroforézis (CE) megjelenése tovább erősítette az elektroforetikus módszerek fontosságát a klinikai, biológiai és biotechnológiai kutatásokban, különösen a kilencvenes évektől kezdve, amikor megjelentek a nagysebességű, multi-kapillárisos gélelektroforetikus rendszerek. Ezeknek az automatizált, multi-kapillárisos rendszereknek az alkalmazása a Humán Genom Projekt befejezését több évvel előbbre hozták a tervezethez képest. A CE kvarc kapillárisok tipikusan 50-100 m belső átmérőjűek és 10-50 cm hosszúak. A DNS elválasztásoknál a kapillárisokba injektált minta hossza 1-2 mm, az elemzés időtartama pedig néhányszor tíz perc volt. Csipek alkalmazása a DNS meghatározásában tovább gyorsította a molekuláris biológiai kutatásokat. Ezekben az eszközökben a gélelektroforézist még rövidebb idő alatt, általában egy nagyságrenddel gyorsabban el lehet végezni mint kapillárisokban (emellett a tányérszám és felbontás értékek sem rosszabbak). A gyorsabb elválasztásokat elsősorban az teszi lehetővé, hogy a mikrofluidikai csipekbe sokkal keskenyebb, csupán 10-100 m hosszúságú mintazónákat tudunk beinjektálni. Az elektroforetikus elválasztásoknál az elméleti tányérszám (N) az elválasztási úthossz (L) négyzetével növekszik:

368 2 12(L / w) N ; 1 L / L 0 L 0 2 Ew (33) 24D ahol a komponens elektroforetikus mozgékonysága, E az elektromos térerő, D a komponens diffúziós állandója és w a mintazóna és a detektálási hely szélességei átlagának négyzetgyöke. A mikrofluidikai kísérletekben a detektor 10-50 m-nyi szakaszra fókuszál, hogy a mintaszéleségek tartományában legyünk. A megfelelő felbontás (L=L 0 ) eléréséhez szükséges idő arányos w-vel: 2 w t 0 (34) 24D A gyorsabb elválasztáshoz az is szükséges, hogy az L elválasztási hosszúság a kapillárisokban tipikus néhányszor tíz centiméterről néhány centiméterre csökkenjen. Jelenleg két, DNS meghatározására szolgáló mikrofluidikai csip érhető el a kereskedelemben: az Agilent gyártmányú 2100 Bioanalyzer (41. ábra) és a Caliper Life Sciences által kifejlesztett, nagy elemzési sebességű LabChip 90 (42. ábra). 41. ábra Az Agilent Bioanalyzer 2100 készülék [18]

369 42. ábra A Caliper LabChip 90 készülék [19] A 2100 Bioanalyzer-nél használt mikrocsip egy olyan sík mikrofluidikai eszköz, mely egy fotolitográfiával és nedves maratási technikákkal kialakított mikrocsatorna rendszert tartalmazó üveglapkát tartalmaz. A lapkán levő csatornákat termikusan kötik egy másik üveglapkához, az ezen található lyukak lehetővé teszik, hogy a csatorna végekhez e lyukakon (portokon) keresztül folyadékokat lehessen bevezetni. A 43. ábrán egy ilyen csipek fényképe látható. A csatornák 10-25 m mélyek és 20-100 m szélesek. 43. ábra Az elválasztásokhoz használatos planáris LabChip eszközök [18]

370 44. ábra A mikrocsatorna mintázata a planáris LabChip-nél [18] A csip működését a 4. ábra áttekintésekor könnyen megérthetjük. Az egyetlen szeparációs mikrocsatornát tartalmazó csipbe legfeljebb 12 mintát elemezhetünk. Miután a mikrocsatornákat egy polimer szűrőmátrixszal feltöltöttük ( chip priming ), a mintákat manuálisan pipettázzuk a csip edénykéibe. A mátrix egy nagy molekulatömegű polimer, a poli(dimetilmetakrilát) (PDMA) oldata, mely TAPS puffert és egy fluoreszcens DNS festéket tartalmaz. A fluoreszcens festék fényérzékeny, ezért annak törzsoldatát sötét helyen kell tárolni. Az alkalmazandó polimer koncentráció és molekulatömeg-eloszlás a molekulaszűrő mátrixban az elválasztandó DNS fragmensektől és a kívánt felbontástól függ. A csipen való munkához szükség van még mintapufferre és DNS létra standardra (DNS létra: ismert méretű és koncentrációjú DNS fragmentek standardja, amit a különböző méretű fragmensek azonosításához és mennyiségi meghatározásához használunk). A laboratóriumokban nagy számú DNS minta feldolgozásakor mikrotiter tálcákat használnak, hogy a sok minta feldolgozását párhuzamosan tudják végezni. A standard tálcák 96 (8 x 12) vagy 384 (16 x 24) tárolóhelyet tartalmaznak. A LabChip 90 készüléket úgy tervezték, hogy mind a 96, mind a 384 tárolóhelyes tálcákkal közvetlenül összekapcsolhatók legyenek. Az automatizált mintavételezés miatt ennek a készüléknek a mintaelemzési sebessége nagy. A kvarc anyagú csip csatorna rendszeréhez egy kvarc kapilláris szívószál (sipper) kapcsolódik (45. ábra). A csatornarendszert - hasonlóképpen, mint a Bioanalyzernél - fotolitográfiával és nedves maratási eljárásokkal alakítják ki. A csatornarendszer sémája a 46. ábrán látható. A csatornák 5-25 m mélyek, 20-500 m szélesek, a szívókapilláris belső átmérője 20-50 m. Miután a polimermátrixszal kitöltik a csip csatornarendszerét, a szívókapilláris egymásután valamennyi mikrotiter mintatartóba belemerül, és kb. 100 nl DNS

371 mintát visz a csipre. A minta felszívásához a kifolyónyílásra (waste) kis vákuumot kapcsolnak, majd az injektálást és az elválasztást elektrokinetikusan (feszültség alkalmazásával) érik el. Egyetlen csip akár 1-2 ezer minta analíziséhez is használható. A tálca mind a 384 mintájának elemzését követően, a csipet friss gélfesték mátrixszal kell feltölteni a további vizsgálatokhoz. 45. ábra A Caliper LabChip90 készülékhez használatos a szívókapillárisos csip [19] vákuum elválasztáshoz injektáláshoz injektáláshoz markerek szívókapilláris elválasztáshoz 46. ábra A mikrocsatorna mintázata a szívókapillárisos DNS-csipnél [19]

372 A teljes mérési időtartam körülbelül félóra. A kiértékelő szoftver a standard és a minták elválasztásait virtuális gélmintázatként is megjeleníti (47. ábra bal széle). Az egyes DNS fragmentek méretét a szoftver a DNS létra standard felső és alsó markerének figyelembevételével számítja ki. 47. ábra A mérési adatok (12 minta elemzése egy csipen) megjelenítése a Bioanalyzer 2100 készüléknél [18]