Szent István Egyetem Állatorvos-tudományi Doktori Iskola. Pulyka-, liba- és más madár-adenovírusok genetikai vizsgálata. PhD értekezés tézisei

Hasonló dokumentumok
ADENOVÍRUSOK OKOZTA BETEGSÉGEK BAROMFIÁLLOMÁNYOKBAN

Szent István Egyetem Állatorvos-tudományi Doktori Iskola. Pulyka-, liba- és más madár-adenovírusok genetikai vizsgálata.

Szent István Egyetem Állatorvos-tudományi Doktori Iskola

Szent István Egyetem Állatorvos-tudományi Doktori Iskola. Rágcsálók és denevérek adenovírusainak genetikai elemzése

Adenovírus okozta fertőzések, betegségek

Zárójelentés. Állati rotavírusok összehasonlító genomvizsgálata. c. OTKA kutatási programról. Bányai Krisztián (MTA ATK ÁOTI)

Állatorvostudományi Egyetem Állatorvostudományi Doktori Iskola. Madarakban előforduló adenovírusok sokféleségének és genetikai jellemzőinek feltárása

A PNP kóroktanának molekuláris vizsgálata Dán Ádám és Rónai Zsuzsanna

Különbözı Mycoplasma gallisepticum törzsek összehasonlító vizsgálata több, döntıen PCR alapú molekuláris biológiai módszer segítségével

ÁLLATI ADENOVÍRUSOK KIMUTATÁSA ÉS RENDSZEREZÉSE

Az adenovírusok morfológiája I.

Gyöngyös adenovírus okozta pancreatitise hazai megfigyelés Bistyák Andrea 1, Kecskeméti Sándor 1, Farkas Laura Hedvig 1, Terjéki Edit 2

Egy 10,3 kb méretű, lineáris, a mitokondriumban lokalizált DNS-plazmidot izoláltunk a

Szent István Egyetem Állatorvos-tudományi Kar. MTA Agrártudományi Kutatóközpont

Szent István Egyetem Állatorvos-tudományi Doktori Iskola

Szent István Egyetem Állatorvos-tudományi Doktori Iskola. Sertés circovírusok járványtani vizsgálata

Tipizálási módszerek alkalmazása methicillin-rezisztens Staphylococcus aureus (MRSA) törzsek molekuláris epidemiológiai vizsgálatai során

OTKA K72484 téma zárójelentése A pathogenitásért és az állati sejtek manipulálásáért felelős, új adenovírus fehérjék keresése

3. Eredmények Az OTKA-téma segítségével sikerült elsőként beszámolnunk hazai mintákban előforduló adenovírus-, parvovírus- és feltételezett

Orvosi Genomtudomány 2014 Medical Genomics Április 8 Május 22 8th April 22nd May

Gyakorlati bioinformatika

Bakteriális identifikáció 16S rrns gén szekvencia alapján

DOKTORI ÉRTEKEZÉS TÉZISEI. Hepatitiszt okozó vírusok molekuláris vizsgálata. N. Szomor Katalin. Budapest 2009.

Szent István Egyetem Állatorvos-tudományi Doktori Iskola. Háziállatokból izolált Histophilus somni törzsek összehasonlító vizsgálata

ELTE Doktori Iskola Evolúciógenetika, evolúciós ökológia, konzervációbiológia program Programvezető: Dr. Szathmáry Eörs, akadémikus, egyetemi tanár

REGIONÁLIS VIROLÓGIAI LABORATÓRIUM GASTROENTERÁLIS VÍRUSOK NEMZETI REFERENCIA LABORATÓRIUMA

A Multi Locus Sequence Typing (MLST) alkalmazhatósága az élelmiszermikrobiológiában

ELTE Biológia Doktori Iskola Klasszikus és molekuláris genetika program Programvezető: Dr. Orosz László, MTA levelező tagja. Tudományos előzmények

SZENT ISTVÁN EGYETEM Állatorvos-tudományi Doktori Iskola

M. A. H. FOOD CONTROLL Kft. Mikrobiológiai vizsgáló Laboratóriuma Állategészségügyi Diagnosztikai Részleg BROILER PROGRAM

A szamóca érése során izolált Spiral és Spermidin-szintáz gén jellemzése. Kiss Erzsébet Kovács László

Újabb alloherpeszvírusok. rusok. Doszpoly Andor, Igor Shchelkunov,

Szent István Egyetem Állatorvos-tudományi Doktori Iskola

MIKROSZKÓPIKUS GOMBÁK MIKOTOXIN-BONTÓ KÉPESSÉGÉNEK. Péteri Adrienn Zsanett DOKTORI ÉRTEKEZÉS TÉZISEI

Szakmai zárójelentés

A MADÁRINFLUENZA ÉS AKTUÁLIS VONATKOZÁSAI

Élő metapneumovírus vakcina fejlesztése tojóállományok részére: ártalmatlansági és hatékonysági vizsgálatok. Hajdúszoboszló, június 2-3.

Mangalica specifikus DNS alapú módszer kifejlesztés és validálása a MANGFOOD projekt keretében

Biomassza alapú bioalkohol előállítási technológia fejlesztése metagenomikai eljárással

DNS-szekvencia meghatározás

Összehasonlító környezetmikrobiológiai. Böddi-szék vizében egy alga tömegprodukció idején

ADATBÁNYÁSZAT I. ÉS OMICS

Algaközösségek ökológiai, morfológiai és genetikai diverzitásának összehasonlítása szentély jellegű és emberi használatnak kitett élőhelykomplexekben

Kutatási zárójelentés

A kvantitatív PCR alkalmazhatósága a fertőző bronchitis vakcinák hatékonysági vizsgálatában. Derzsy Napok, Sárvár, 2011 Június 2-3.

Hazai természetesvízi és tógazdasági halakból származó Aeromonas veronii törzsek összehasonlító vizsgálata

Posztvakcinációs rotavírus surveillance Magyarországon,

Különböző Capsicum annuum var. grossum paprikafajták endofita baktériumainak izolálása, jellemzése és molekuláris biológiai vizsgálata

Szent István Egyetem Állatorvos-tudományi Doktori Iskola. Hüllőkben előforduló adeno-, irido- és paramyxovírusok kimutatása és jellemzése

DOKTORI (PhD) ÉRTEKEZÉS TÉZISEI

Genetikai panel kialakítása a hazai tejhasznú szarvasmarha állományok hasznos élettartamának növelésére

Opponensi Vélemény Dr. Nagy Bálint A valósidejű PCR alkalmazása a klinikai genetikai gyakorlatban ' című értekezéséről

A baromfiágazatot fenyegető legfontosabb állategészségügyi kérdések

RÉSZLETEZŐ OKIRAT (1) a NAH /2017 nyilvántartási számú akkreditált státuszhoz

Az intézetek szerepe a baromfibetegségek megelőzésében Debrecen

III. ATK Tudományos Nap

Új kutatási eredmények madár orthoreovírusokról

Készítette: Pintér Zsuzsanna (Biológia környezettan V.)

Szent István Egyetem Állatorvos-tudományi Doktori Iskola

Human genome project

SOLiD Technology. library preparation & Sequencing Chemistry (sequencing by ligation!) Imaging and analysis. Application specific sample preparation

DEBRECENI EGYETEM AGRÁR- ÉS MŐSZAKI TUDOMÁNYOK CENTRUMA AGRÁRGAZDASÁGI ÉS VIDÉKFEJLESZTÉSI KAR VÁLLALATGAZDASÁGTANI ÉS MARKETING TANSZÉK

Molekuláris biológiai eljárások alkalmazása a GMO analitikában és az élelmiszerbiztonság területén

DOKTORI (PhD) ÉRTEKEZÉS TÉZISEI TÓTH ÁGNES

Molekuláris genetikai vizsgáló. módszerek az immundefektusok. diagnosztikájában

Szent István Egyetem Állatorvos-tudományi Doktori Iskola

Molekuláris evolúció második gyakorlat

Genomikai Medicina és Ritka Betegségek Intézete Semmelweis Egyetem

Az egészségügyi miniszter 8013/2007. (EüK. 19.) EüM. tájékoztatója

In Situ Hibridizáció a pathologiai diagnosztikában és ami mögötte van.

Molekuláris biológiai módszerek alkalmazása a maláriát okozó paraziták elterjedésének és prevalenciájának vizsgálatában

Cserző Miklós Bioinformatika és genomanalízis az orvostudományban. Integrált biológiai adatbázisok

Juhász Angéla MTA ATK MI Alkalmazott Genomikai Osztály SZEKVENCIA ADATBÁZISOK

Madarakban. Emlısökben. A fehérje-anyagforgalom zavarai. 27. Uricosis (Köszvény) nucleoproteidekbıl. fehérjékbıl. teljes N-anyagforgalom

2011. január április 10. IPK Gatersleben (Németország) május 17. Kruppa Klaudia

A növény inváziójában szerepet játszó bakteriális gének

Molekuláris biológiai módszerek alkalmazása a biológiai környezeti kármentesítésben

Csirkék fertőző bronchitis vírusának magyarországi előfordulása és genetikai jellemzése

Fertőző betegségek járványtana. dr. Gyuranecz Miklós MTA ATK Állatorvos-tudományi Intézet

(11) Lajstromszám: E (13) T2 EURÓPAI SZABADALOM SZÖVEGÉNEK FORDÍTÁSA

A 2014/1. SZÁM TARTALMA. Veres-Nyéki K. O., C. Spadavecchia: A fájdalom felismerése és. Seres L., Ózsvári L.: Napi háromszori fejés hatása a termelési

Dodé Réka (ELTE BTK Nyelvtudomány Doktori IskolaAlkalmazott Alknyelvdok 2017 nyelvészet program) február 3. 1 / 17

A genomikai oktatás helyzete a Debreceni Egyetemen

A termesztett búza diploid őseinek molekuláris citogenetikai elemzése: pachytén- és fiber-fish.

KÓROKOZÓ VÍRUSOK ELŐFORDULÁSA MAGYARORSZÁGI FELSZÍNI- ÉS FÜRDŐVIZEKBEN. Doktori értekezés tézisei. Kern Anita

Humán kórokozó vírusok kimutatása magyarországi felszíni vizekbıl

PERZISZTENS FERTŐZÉST OKOZÓ HEPATITIS VÍRUSOK MOLEKULÁRIS VIZSGÁLATAI

Szent István Egyetem Állatorvos-tudományi Doktori Iskola. Madarak orthoreovírusainak összehasonlító genomvizsgálata. PhD értekezés tézisei

Molnár Levente Farkas

Éter típusú üzemanyag-adalékok mikrobiális bontása: a Methylibium sp. T29 jelű, új MTBE-bontó törzs izolálása és jellemzése

Fiatal kutatói beszámoló

Szent István Egyetem. Állatorvos-tudományi Doktori Iskola

110. A madarak nemi szerveinek kórbonctana

A 2014/11. SZÁM TARTALMA. Sárközi R., Makrai L., Tóth A., Fodor L.: Pásztiné G. E., Gálfi P., Molnár Zs., Csavojetz A., Meggyesházi N.

A bioinformatika gyökerei

Tanácsadás az ápolásban: Ápolóhallgatók tanácsadói kompetenciájának vizsgálata. Doktori tézisek. Papp László

Emésztőszervi betegségek (PEC/PEMS) járványtani és virológiai vizsgálata pulykaállományokban

A perifériás neuropátia (PNP) morfológiai jellemzése

Lele Zsolt. MTA Kísérleti Orvostudományi Kutatóintézet

Szent István Egyetem Állatorvos-tudományi Doktori Iskola

Átírás:

Szent István Egyetem Állatorvos-tudományi Doktori Iskola Pulyka-, liba- és más madár-adenovírusok genetikai vizsgálata PhD értekezés tézisei dr. Kaján Gyızı 2011

Témavezetı és témabizottsági tagok: Prof. Dr. Benkı Mária Magyar Tudományos Akadémia Állatorvos-tudományi Kutatóintézete témavezetı Dr. Dán Ádám Mezıgazdasági Szakigazgatási Hivatal Állategészségügyi Diagnosztikai Igazgatósága témabizottság tagja Prof. Dr. Harrach Balázs Magyar Tudományos Akadémia Állatorvos-tudományi Kutatóintézete témabizottság tagja 2

1. Bevezetés A baromfifajokban elıforduló adenovírusokat a 2005-ben hivatalossá vált rendszertani beosztás szerint három nemzetségbe soroljuk az Adenoviridae családon belül. A Si- és Atadenovirus génuszba egy-egy baromfiból izolált adenovírus tartozik, és mindkettınek ismert a teljes genomszekvenciája. Azonban a madár-adenovírusok többségét magában foglaló Aviadenovirus nemzetség tagjai közül munkám kezdete elıtt csupán két házityúk-adenovírus teljes genomjának elemzését közölték. A pulyka vagy a különféle vízibaromfi fajok aviadenovírusaiból csak a legfontosabb kapszid fehérje, a hexon génjének rövid szakaszaiból volt ismert szekvencia. Részleges hexon gén szekvenciák alapján végzett elızetes törzsfa-rekonstrukciós számításaink szerint a lúdalakúak (Anseriformes) aviadenovírusai határozottan elkülönülnek a tyúkalakúak (Galliformes) aviadenovírusaitól. Ezzel szemben a pulyka aviadenovírusai nagyfokú hasonlóságot mutatnak a házityúk aviadenovírusaival. A DNS-kimutatáson alapuló, modern és érzékeny diagnosztikai módszerek alkalmazásával kiderült, hogy adenovírusok jelenléte a hazai libaállományokban nem ritka, de esetleges kórtani szerepükre vonatkozó adatok nem álltak rendelkezésünkre. Egy hazai izolálású pulyka-adenovírus törzs molekuláris klónozását és DNSszekvenálását már elkezdték laboratóriumunkban. Ezért munkám céljául ennek a törzsnek a teljes genomszekvenálását tőztük ki. Továbbá egy szintén hazánkban izolált liba-adenovírus törzs teljes genomjának bázis-sorrendjét is meg kívántuk határozni. Ezután számítógépes programok segítségével terveztük azonosítani a más adenovírusokban is megtalálható, ismert géneket, és elemezni a várhatóan elıforduló ismeretlen ORF-ek méretét, számát és pontos helyezıdését. A genomszekvenálási projekttel párhuzamosan terveztük további pulyka-, liba-, tyúkés vadmadár-adenovírus minták vizsgálatát olyan esetekbıl, amelyek hátterében adenovírusok, mint kórokozók feltételezhetıek. Ezekbıl PCR segítségével terveztük felerısíteni a hexon gén bizonyos szakaszait, majd szekvenciájukat meghatározva ennek alapján tipizálni a vírusokat. Megkíséreltük más génszakaszok (DNS-polimeráz) PCR-rel történı felerısítését is, és vizsgáltuk ezek alkalmazhatóságát a tipizálásban. Kutatásaink nemzetközi érdeklıdésre is számot tartó, elméleti és gyakorlati eredményekkel is kecsegtettek. Feltételeztük, hogy alapkutatási eredményeink a madáradenovírusok rendszertanának és feltételezett evolúciós útjának pontosításához járulhatnak hozzá. A diagnosztikai módszerek tökéletesítése, az egyes kórképek és adenovírus típusok közötti esetleges összefüggések feltárása pedig fontos adatokat szolgáltathat a baromfiegészségügy számára. 3

2. Anyag és módszer 2.1. A pulyka- és liba-adenovírus 1 típusok törzseinek szekvenálása Egy hazai izolálású pulyka-adenovírus törzset vizsgáltunk, amelyet dr. Palya Vilmos izolált légúti tüneteket mutató, 10 hetes pulykákból csirkeembrió májsejteken. A törzs neve, melyet vizsgálataink után a pulyka-adenovírus 1 (azaz turkey adenovirus 1, TAdV-1) prototípus törzsének javasolunk, D90/2 volt. Hasonlóképpen a liba-adenovírus 1 (goose adenovirus 1, GoAdV-1) prototípus törzsének javasoljuk a P29-es jelzéső dr. Palya Vilmos által szintén hazánkban libaembrió májsejteken izolált vírust. A továbbiakban TAdV-1 és GoAdV-1 néven tárgyalom ezeket. A TAdV-1 esetében a véletlenszerő klónozás, a GoAdV-1 esetében pedig az ún. sörétespuska (shotgun) szekvenálás módszerét alkalmaztuk. 2.2. Egyéb madár-adenovírus minták PCR-es vizsgálata Összehasonlítás céljából a korábban publikált belfasti TAdV-1 és -2 típusok prototípus törzseit is vizsgáltuk, továbbá egy prototípus tyúk-adenovírus (fowl adenovirus, FAdV) törzsgyőjtemény 10 különbözı típusba tartozó törzsét (FAdV-2 8b, -10, -11) is. Ezen kívül aviadenovírusos fertızöttségre gyanús, gyakorlati esetekbıl is kaptunk mintákat vagy izolátumokat. Ezeket a mintákat az adenovírusok DNS-függı DNS-polimeráz génjére irányuló PCR-rel, valamint a vírus fı szerkezeti fehérjéjének, a hexonnak a génjére irányuló PCR-rel is vizsgáltuk. 2.3. Alkalmazott bioinformatikai módszerek A szekvenciákat a Staden programcsomag segítségével szerkesztettük és illesztettük össze. A TAdV-1 és GoAdV-1 genom virtuális restrikciós endonukleázos emésztését a pdraw32 program segítségével végeztük el. A genomokat az Artemis program segítségével értelmeztük. A származtatott aminosavszekvenciákban feltételezhetı megırzött doméneket az InterProScan Sequence Search használatával kerestünk. A filogenetikai számításokat a Phylip programcsomaggal végeztük. 4

3. Eredmények 3.1. A genomok virtuális restrikciós endonukleázos emésztése, és a belfasti TAdV-1 és -2 törzs vizsgálata A vizsgált pulyka-adenovírus D90/2 törzs, valamint liba-adenovírus P29 törzs virtuális restrikciós endonukleázos emésztése alapján kapott fragmentummintázat eredménye jelentısen eltért az irodalomban korábban közölt TAdV-1 és -2, valamint GoAdV-1, -2 és -3 DNS-ének megfelelı restrikciós enzim mintázatától. A hexon génre irányuló PCR termék szekvenciaelemzése továbbá kimutatta, hogy az eredeti belfasti TAdV-1 izolátum továbbpasszált leszármazottja mára a FAdV-8a típussal egyezik meg. 3.2. A pulyka- és liba-adenovírus 1 genomjának tulajdonságai A GenBank Nucleotide adatbázisában a TAdV-1 teljes genomja a GU936707 számon érhetı el, a GoAdV-1 teljes genomja pedig a JF510462 számon. A TAdV-1 teljes genomja 45.413 bp-ból áll, ami eddig a leghosszabb ismert adenovírus genom. G+C-tartalma 67,55%, ami ugyancsak az eddigi legmagasabb a teljes genomszekvenciák között. A fordított végismétlıdések (inverted terminal repeat, ITR) hossza 95 bp. A GoAdV-1 genomja 43.376 bp-t tartalmaz, G+C-tartalma 44,6%, az ITR 39 bp. A genomtérképeket az 1. ábra mutatja be. Mindkét genom központi régiója megırzött sorrendben tartalmazza azt a 16 gént, mely minden adenovírusban így található meg. Ezekhez illeszkedik még az U-exon és a fiber génje, hasonlóan, mint a három ismert genomú tyúk-adenovírusban is. A TAdV-1 genomjában egy teljes és két csökevényes fiber gént találtunk, a GoAdV-1 genomjában pedig két teljeset. A TAdV-1 bal genomvégén megtaláltuk az ORF0, ORF1, ORF1A, ORF1B, ORF2, ORF12, ORF13, ORF14 és ORF24, míg a jobb végén a lipáz, ORF8, ORF9, ORF11, ORF17, ORF20, ORF20A, ORF22 és ORF26 homológját. Mindössze egy olyan ORF-et (ORF50) találtunk a jobb végen, melynek származtatott terméke nem mutatott homológiát a GenBankban található egyetlen fehérjével sem. A GoAdV-1 bal genomvégén az ORF1, ORF2, ORF12 és ORF24 homológját, valamint 2 új ORF-et (ORF51, ORF60) találtunk. A jobb végén az ORF20, ORF20A és ORF22 homológját találtuk meg, a lipáz gént duplikálódva, és 8 teljesen új ORF-et (ORF52-ORF59). 3.3. Filogenetikai elemzések A teljes hexon gén származtatott aminosavszekvenciáján alapuló törzsfarekonstrukciós elemzésen a különbözı génuszok tagjai egyértelmően elkülönültek a törzsfán, és ezt a magas bootstrap értékek is megerısítették. Mind a két szekvenált törzs 5

TAdV-1: GoAdV-1: 1. ábra: A pulyka-adenovírus 1 (TAdV-1) és liba-adenovírus 1 (GoAdV-1) teljes genomjának géntérképe. A hat világosszürke csík a hat leolvasási keret. Az exonokat vékony vonalak kötik össze. Zöld nyilak: a teljes Adenoviridae családban megırzött központi genomrégió génjei. Piros nyilak: minden aviadenovírusban megırzött gének. Sárga nyilak: csak egyes aviadenovírusokban megtalálható gének. Fehér nyilak: egyedi, homológ nélküli gének. A fiber-2-l és fiber-2-r a TAdV-1 genomjában a második fiber génbıl eredı két csökevényes fiber gén. ism ismétlıdéseket tartalmazó régió; ITR inverted terminal repeat, fordított végismétlıdés; ptp terminális protein prekurzora; DBP DNA-binding protein, DNS-kötı fehérje A színes ábra megtekinthetı a tézisek digitális változatában az Állatorvos-tudományi Doktori Iskola honlapjáról letöltve: http://phd.univet.hu/lapok/a-index-ert.htm

egyértelmően az Aviadenovirus génuszba osztályozódott, de filogenetikai távolságuk a többi fajtól megalapozza új fajokként történı elismerésüket (2. ábra). A vizsgált 10 tyúk-adenovírus referenciatörzs DNS-függı DNS-polimeráz génjének részleges szekvenciáját HM853995 HM854004 elérési számon helyeztük el a GenBankban. A törzsfarekonstrukciós elemzés az egy fajba sorolt típusokat monofiletikusan ábrázolta, sıt a FAdV-D és -E faj típusai egy fajon belül aminosav szinten teljes mértékben megegyeztek. A tyúk-adenovírusok öt faja azonban jól elkülöníthetı a törzsfán, amit a magas bootstrap értékek is alátámasztanak. Az Aviadenovirus génuszon belül a vízibaromfi fajok adenovírusai határozottan elkülönülnek a tyúkalakúak adenovírusaitól. A baromfi-adenovírus minták PCR-es vizsgálata alapján a hazánkban elıforduló tyúk-adenovírusok többsége a FAdV-D vagy -E, kisebb része a FAdV-A fajokba sorolható. A vadmadár mintákból at-, avi- és sziadenovírusok is kimutathatóak voltak. 997 998 812 957 humán 5 humán 12 szarvasmarha 1 denevér 3 kutya 1 egér 1 kígyó 1 szarvasmarha 4 kacsa 1 (EDSV) pulyka 3 (THEV) ragadozó madár 1 liba 1 sólyom 1 tyúk 10 tyúk 4 tyúk 9 tyúk 8 pulyka 1 tyúk 1 fehér tok 1 Mastadenovirus Atadenovirus Siadenovirus Aviadenovirus Ichtadenovirus 0,2 2. ábra: Adenovírusok teljes hexon génjének származtatott aminosavszekvenciáján alapuló törzsfa-rekonstrukciós elemzés. A törzsfát a megjelenítéshez a fehér tok 1-es típusú adenovírusával gyökereztettük. Az adenovírus típusokat a fán a gazdaállat nevével és a típusszámmal tüntettük fel (ragadozó madár 1: raptor adenovirus 1). A vizsgált pulyka- és libaadenovírus 1 típusokat félkövéren és nagyobb betőmérettel tüntettük fel. Dılt betővel a génuszokat jelöltük. A bootstrap értékek analízisre vonatkoznak, és akkor tüntettük fel ıket, ha 750-nél nagyobbak. 7

4.1. Pulyka- és liba-adenovírus 1 4. Megbeszélés Kutatócsoportunk elsıként határozta meg nem házityúk eredető aviadenovírusok teljes genomjának szekvenciáját. Eredményeinket összevetve más kutatócsoportok által közölt adatokkal, az alábbi következtetésekre jutottunk. Az évtizedekkel ezelıtt leírt TAdV-1 és GoAdV-1 eredeti izolátuma mára nem elérhetı, szekvencia pedig nem áll rendelkezésre belılük. Ezért célszerőnek látszik, hogy a témában különösen aktív kutatókkal történı egyeztetés után az általunk szekvenált D90/2 pulyka-adenovírus és P29 liba-adenovírus törzs képviselje ezentúl a pulyka-adenovírus 1 és liba-adenovírus 1 típusokat. A törzseket ilyen számmal javasoljuk referenciatörzsnek, annak ellenére is, hogy a genomok virtuális restrikciós enzimes emésztése megmutatta, ezek a törzsek nem egyeznek meg az eredetileg leírt TAdV-1 és GoAdV-1 típusok törzseivel. Nem tartjuk ugyanis ésszerőnek az eddigi számozás folytatását, mivel a régi típusokból semmilyen szekvenciainformáció nem áll rendelkezésünkre, és ez várhatóan nem is fog változni. Az eredeti belfasti TAdV-1 típus törzsének továbbpasszált leszármazottja mára ugyanis a FAdV-8a típussal (58-as törzs) egyezik meg. Eredményeink (genomszervezıdés, homológ gének, splice-helyek, proteáz vágási szignálok, gazdafaj) alapján elmondhatjuk, hogy a két vizsgált vírus az Aviadenovirus génuszba tartozik, és ezt a törzsfarekonstrukciós elemzés is alátámasztja. Ugyanakkor mindkét vírus olyannyira elkülönül a már elfogadott aviadenovírus fajoktól, hogy új fajként való elfogadásuk megalapozottnak tekinthetı. Ezért a Nemzetközi Vírusrendszertani Bizottság felé hivatalos javaslatot fogunk tenni, melyben javasoljuk a Turkey adenovirus B faj elfogadását a TAdV-1 típus részére, továbbá a GoAdV-1 típus besorolását a Goose adenovirus fajba. 4.2. A tyúk-adenovírus referencia törzsek filogenetikája; polimeráz gén alapú PCR a diagnosztikai kimutatásukra Az adenovírusok DNS-függı DNS-polimeráz génjén alapuló törzsfarekonstrukciós elemzés szerint a tizenkét tyúk-adenovírus típus öt fı kládba sorolódik, melyek megfelelnek a tyúk-adenovírusok öt elfogadott fajának. Ez az elsı olyan PCR, mely úgy képes kimutatni a tyúkokat fertızı avi-, at- és sziadenovírusokat, hogy primereit nemcsak a tyúk-adenovírusok, a pulyka vérzéses bélgyulladásának vírusa (turkey hemorrhagic enteritis virus, THEV, TAdV-3) és a tyúk tojáshéjképzıdési zavarának vírusa (egg drop syndrome virus, EDSV, kacsa-adenovírus 1) alapján tervezték, ezért új, eddig nem ismert adenovírusok, esetleg új tyúk-adenovírusok kimutatására is alkalmas lehet. Használatával írtak is már le 8

vadmadarakat fertızı új adenovírusokat. Ezt a reakció nagyfokú érzékenysége is elısegíti, a PCR ugyanis kétkörös (nested). A PCR a DNS-függı DNS-polimeráz gén legkonzerváltabb szakaszát célozza meg, melynek szekvenciája annyira megırzött, hogy általában csak elızetes, génusz- és fajszintő besorolást tesz lehetıvé az eredmény. Fajon belüli, típusszintő elkülönítésre egyéb gének szekvenciája, például hexonszekvencia szükségeltetik. 4.3. Egyéb madár minták PCR-es szőrése; új adenovírusok filogenetikája A vizsgált tyúk-adenovírus minták többsége a FAdV-D és -E fajba sorolódott, hasonlóan mások vizsgálataihoz. Ezen fajok típusai okozzák a tyúkok leggyakoribb adenovírusos kórképét, a sejtzárványos májgyulladást (inclusion body hepatitis). De a FAdV-1 típust is sikerült kimutatnunk. Ezt egy esetben a patológiához is kötni tudtuk, a Lengyelországból származó mintákat ugyanis egy zúzógyomor fekélyes tyúkállományból kaptuk. Mind a FAdV-B, mind a FAdV-C faj képviselıjét mindössze egyszer sikerült kimutatnunk. A FAdV-B fajba sorolható törzset korábban még nem mutattak ki hazánkban, így ez volt az elsı hazai izolálása és tipizálása. Egy májgyulladást és hydropericardium szindrómát mutató liba állományból sikerült kimutatnunk egy liba-adenovírus jelenlétét. Bár a vizsgált polimeráz szakasz aminosavszekvenciájában nem találtunk eltérést a liba-adenovírus törzsek között, a részleges hexon szekvenciák már nagyobb varianciát mutattak, és az ezen a szakaszon is vizsgált két törzs itt jól elkülönült. A teljes genomjában szekvenált P29 törzs és a hydropericardiumot okozó törzs nukleotidszekvenciája között a vizsgált szakaszon mindössze 60%-os a hasonlóság. Ezek alapján feltételezhetjük, hogy a vizsgált négy GoAdV törzs egy fajt, de legalább két típust alkot. Néhány madár-adenovírus a Siadenovirus génuszba sorolódott, de ez az ott megtalálható madár-adenovírusok számának növekedésével nem is meglepı. Az általam vizsgált madár mintákból az Atadenovirus génuszba még több madár-adenovírus került, az egyik mintából rögtön két elkülönülı törzs, melyeket távolságuk alapján biztosan külön fajba sorolhatunk. A minták többsége, egy kivételével, egy külön leágazást képvisel az atadenovírusok között, mely csak madár-atadenovírusokat tartalmaz. Ezen vírusok gazdafaja szinte minden esetben a verébalakúak rendjébe sorolható madár, az egyetlen kivétel a kládon belül a kacsa-adenovírus 1 (EDS vírus). Hat házi veréb mintából is ki tudtunk mutatni atadenovírust, ezekbıl öt valószínőleg egy fajt alkot, mert a részleges polimeráz aminosavszekvenica alapján alig különülnek el egymástól. Feltételezhetjük tehát, hogy a verébalakú madarakkal hosszabb ideje együtt fejlıdhetnek az atadenovírusok, és jelenlétük e madarakban feltehetıen egy ısi gazdaváltás következménye. 9

5. Új tudományos eredmények 1. A világon elıször határoztunk meg teljes genomszekvenciát nem tyúk eredető baromfiadenovírusokból. Egy pulyka- és egy liba-adenovírus elemzésével megállapítottuk, hogy mindkettı az Aviadenovirus nemzetség tagja. 2. Meghatároztuk a virális DNS-függı DNS-polimeráz gén részleges nukleotidsorrendjét a tyúk-adenovírusok (FAdV-ok) tíz olyan típusának referenciatörzsébıl, melybıl ez eddig nem volt elérhetı. A génszakaszt rendkívül érzékeny, kétkörös PCR segítségével megbízhatóan lehet felsokszorozni. Ezzel a PCR módszer állategészségügyi diagnosztikai célra való használhatóságát jelentısen fokoztuk. 3. Elıször állapítottuk meg Magyarországon egy FAdV-B fajba sorolható törzs jelenlétét molekuláris módszerrel. 4. Különféle baromfi- és vadmadárfajokból származó minták PCR-es szőrése során korábban ismert FAdV típusokat és új adenovírusokat mutattunk ki. 5. Megállapítottuk, hogy hazánkban, illetve a környezı országokban a leggyakoribb tyúkadenovírusok a FAdV-D és -E, valamint ritkábban a FAdV-A fajokba sorolhatók. 6. Megállapítottuk, hogy a vadmadarakból kimutatott, új adenovírusok általában az Aviadenovirus génuszba tartoznak, de énekesmadarakban (Passeriformes) másik két (At- és Siadenovirus) nemzetségbe tartozó vírusok is gyakoriak. 10

6. A doktori kutatás eredményeibıl született közlemények 6.1. Lektorált, impakt faktoros tudományos folyóiratban megjelent/elfogadott publikációk Kaján Gy.L., Kecskeméti S.: Egy tyúk-adenovírus B fajba tartozó típus elsı magyarországi izolálása, Magy. Állatorv. Lapja, 2011., [nyomdában] Kaján Gy.L., Sameti, S., Benkı M.: Partial sequence of the DNA-dependent DNA polymerase gene of fowl adenoviruses: A reference panel for a general diagnostic PCR in poultry, Acta Vet. Hung., 59. 279-285, 2011. Kaján Gy.L., Stefancsik R., Ursu K., Palya V., Benkı M.: The first complete genome sequence of a non-chicken aviadenovirus, proposed to be turkey adenovirus 1, Virus Res., 153. 226-233, 2010. Ivanics É., Palya V., Markos B., Dán Á., Ursu K., Harrach B., Kaján Gy., Glávits R.: Hepatitis and hydropericardium syndrome associated with adenovirus infection in goslings, Acta Vet. Hung., 58. 47-58, 2010. 6.2. Könyvfejezet Harrach B., Kaján Gy.L.: Aviadenovirus, In: The Springer Index of Viruses. Szerk.: Tidona, C.A., Darai, G., Berlin: Springer, 2011., [nyomdában] 6.3. Konferencia prezentációk Kaján Gy.L., Davison, A.J., Harrach B., Palya V., Benkı M.: Beyond mammalian adenoviruses: genome and phylogeny of goose adenovirus, 8th Int. Adenovirus Meeting, Zürich, 133, 2006. Kaján Gy.L., Davison, A.J., Harrach B., Palya V., Benkı M.: Sequencing and phylogeny of a goose adenovirus, In: Proceedings of the ESVV 7th Int. Congr. Vet. Virol. Szerk.: Leitao, A., Martins, C., Lisbon, 129, 2006. Kaján Gy.L., Davison, A.J., Harrach B., Palya V., Papp T., Stefancsik R., Benkı M.: Sequencing and comparative analysis of a goose and a turkey adenovirus, Acta Microbiol. Immunol. Hung., Abstracts of the 15th Int. Congr. Hung. Soc. Microbiol., 54. (Supplement) 53, 2007. Kaján Gy.L., Davison, A.J., Palya V., Harrach B., Benkı M.: Full genome sequence analysis of a goose and a turkey aviadenovirus, 9th Int Adenovirus Meeting, Dobogókı, 92, 2009. 11

Kaján Gy.L., Davison, A.J., Palya V., Harrach B., Papp T., Benkı M.: Comparative sequence analysis of aviadenoviruses from a goose and a turkey, 8th Int. Congr. Vet. Virol., 20 years of ESVV: Integrating classical and molecular virology, Budapest, 110, 2009. Kaján Gy.L., Davison, A.J., Palya V., Harrach B., Papp T., Stefancsik R., Benkı M.: Comparative genome analysis of aviadenoviruses isolated from goose and turkey, XIV. Int. Congr. Vir., Istanbul, 217, 2008. 6.4. A doktori kutatás témájához nem kapcsolódó tudományos közlemények Mayer B., Kis Zs., Kaján Gy., Frenyó L.V., Hammarström, L., Kacskovics I.: The neonatal Fc receptor (FcRn) is expressed in the bovine lung, Vet. Immunol. Immunopathol., 98. 85-89, 2004. Papp T., Fledelius, B., Schmidt, V., Kaján Gy.L., Marschang, R.E.: PCR-sequence characterization of new adenoviruses found in reptiles and the first successful isolation of a lizard adenovirus, Vet. Microbiol., 134. 233-240, 2009. 12