DOKTORI (PhD) ÉRTEKEZÉS TÉZISEI

Hasonló dokumentumok
DOKTORI (PhD) ÉRTEKEZÉS TÉZISEI

Curriculum Vitae. 1 Personal Information:

Angéla Anda, DSc. Author(s), followed by an Abstract (not more than 200 words), Összefoglalás and

SZAKMAI ZÁRÓJELENTÉS

A burgonya y vírussal kapcsolatos nemzetközi kísérlet eredményei (Debrecen-Pallag, )

Egy szuperoxid (paraquat) toleráns, nagy antioxidáns kapacitású dohány fokozott fogékonysága szisztemikus vírusfertızéssel szemben

1.ábra Az intront tartalmazó génkonstrukció felépítése.

c. Doktori (Ph.D.) értekezés tézisei BUKOVINSZKI ÁGNES Eötvös Loránd Tudományegyetem, Természettudományi Kar Biológia Doktori Iskola

MIKROSZKÓPIKUS GOMBÁK MIKOTOXIN-BONTÓ KÉPESSÉGÉNEK. Péteri Adrienn Zsanett DOKTORI ÉRTEKEZÉS TÉZISEI

Fehérje expressziós rendszerek. Gyógyszerészi Biotechnológia

Zárójelentés A HAZAI LÁGYSZÁRÚ DÍSZNÖVÉNYEKET FERTŐZŐ VÍRUSOK VIZSGÁLATA

Klónozás: tökéletesen egyforma szervezetek csoportjának előállítása, vagyis több genetikailag azonos egyed létrehozása.

Zárójelentés LYCOPERSICON FAJOK REZISZTENCIÁJA ILL. VÍRUSFOGÉKONYSÁGA A FONTOSABB PARADICSOM PATOGÉN VÍRUSOKKAL SZEMBEN

Algaközösségek ökológiai, morfológiai és genetikai diverzitásának összehasonlítása szentély jellegű és emberi használatnak kitett élőhelykomplexekben

Szőlővírusok kimutatási módszereinek fejlesztése és alkalmazása a szőlőültetvények vírusfertőzöttségének felmérésében

A molekuláris biológia eszközei

A növény inváziójában szerepet játszó bakteriális gének

A szamóca érése során izolált Spiral és Spermidin-szintáz gén jellemzése. Kiss Erzsébet Kovács László

DNS-szekvencia meghatározás

Növényvédelmi Tudományos Napok 2015

A Legionella jelenlétének kimutatása

ADATBÁNYÁSZAT I. ÉS OMICS

A géntechnológiát megalapozó felfedezések

DNS molekulák elválasztása agaróz gélelektroforézissel és kapilláris elektroforézissel

Molekuláris biológiai technikák

3. A kutatások rövid bemutatása:

5. Molekuláris biológiai technikák

Éter típusú üzemanyag-adalékok mikrobiális bontása: a Methylibium sp. T29 jelű, új MTBE-bontó törzs izolálása és jellemzése

NANOTECHNOLOGIA 6. előadás

Egy 10,3 kb méretű, lineáris, a mitokondriumban lokalizált DNS-plazmidot izoláltunk a

Összehasonlító környezetmikrobiológiai. Böddi-szék vizében egy alga tömegprodukció idején

NÖVÉNYGENETIKA. Az Agrármérnöki MSc szak tananyagfejlesztése TÁMOP /1/A

Biomassza alapú bioalkohol előállítási technológia fejlesztése metagenomikai eljárással

BIOTECHNOLÓGIÁK EGYÉB IPARÁGAKBAN. Pókselyemfehérjék előállítása dohányban és burgonyában

Növényvédelmi Tudományos Napok 2014

A basidiomycota élesztőgomba, a Filobasidium capsuligenum IFM törzse egy olyan

Növénykórtan. Növényeket megbetegítő vírusok, viroidok, egyéb vírusszerű. Növénykórtan 3. 1

AGROTECHNIKAI TÉNYEZŐK HATÁSA A KULTÚRNÖVÉNYEKRE ÉS A GYOMOSODÁSRA

A bioinformatika gyökerei

Molekuláris biológiai eljárások alkalmazása a GMO analitikában és az élelmiszerbiztonság területén

Molekuláris genetikai vizsgáló. módszerek az immundefektusok. diagnosztikájában

Publikációs lista - References. Referált nemzetközi folyóiratok Publications: peer reviewed (English)

Növénytermesztési és Kertészeti Tudományok Doktori Iskola. Pannon Egyetem Georgikon Kar

KOLUMBIAI DATURA VÍRUS (COLOMBIAN DATURA VIRUS, CDV): ÚJABB VESZÉLYES POTYVIRUS ELŐFORDULÁSA MAGYARORSZÁGON

PÉCSI TUDOMÁNYEGYETEM. Természetes és mesterséges agrobaktérium rezisztencia vizsgálata szőlőben. Galambos Anikó

3. gyakorlat: nukleinsav-tisztítás, polimeráz láncreakció

GÉNKLÓNOZÁS ÉS GÉNMANIPULÁCIÓ

MINTAVÉTEL NÖVÉNYI SEJT-, SZÖVET- ÉS SZERVTENYÉSZETEKBŐL

Markerek alkalmazhatósága a burgonya X és Y vírus, valamint fonálféreg rezisztenciára történő szelekciójában

12/4/2014. Genetika 7-8 ea. DNS szerkezete, replikáció és a rekombináció Hershey & Chase 1953!!!


DNS munka a gyakorlatban Természetvédelmi genetika

A PNP kóroktanának molekuláris vizsgálata Dán Ádám és Rónai Zsuzsanna

Molekuláris biológiai módszerek alkalmazása a biológiai környezeti kármentesítésben

Kromoszómák, Gének centromer

HAZAI PVY IZOLÁTUMOK LEVÉLTETŰ ÁTVITELÉBEN SZEREPET JÁTSZÓ GÉNEK MOLEKULÁRIS JELLEMZÉSE

A baktériumok genetikája

A termesztett búza diploid őseinek molekuláris citogenetikai elemzése: pachytén- és fiber-fish.

Bakteriális identifikáció 16S rrns gén szekvencia alapján

ÁLLATTENYÉSZTÉSI TUDOMÁNYOK DOKTORI ISKOLA Doktori Iskola vezető: Dr. Bánszki Tamás, MTA doktora. Témavezetők: mezőgazdaság-tudomány kandidátusa

Bevezetés-Acinetobacter

NEM HOMOLÓG MOZGÁSI FEHÉRJE HATÁSA AZ UBORKA MOZAIK VÍRUS MOZGÁSÁRA ÉS FERTŐZÉSI TULAJDONSÁGAIRA

Patogén mikroorganizmusok vizsgálata molekuláris biológiai módszerekkel

GMO = genetikailag módosított organizmusok. 1. Gének megváltoztatása. Gének megváltoztatása. Pécs Miklós: A biológia alapjai

DOKTORI (PhD) ÉRTEKEZÉS TÉZISEI PANNON ÖKORÉGIÓBÓL SZÁRMAZÓ FÖLDIMOGYORÓ SATNYULÁS VÍRUS (PEANUT STUNT VIRUS, PSV) IZOLÁTUMOK JELLEMZÉSE.

Növekvı arzén adagokkal kezelt öntözıvíz hatása a paradicsom és a saláta növényi részenkénti arzén tartalmára és eloszlására

KOAGULÁCIÓS FAKTOROK BIOTECHNOLÓGIAI ELŐÁLLÍTÁSA

transzláció DNS RNS Fehérje A fehérjék jelenléte nélkülözhetetlen minden sejt számára: enzimek, szerkezeti fehérjék, transzportfehérjék

DNS-számítógép. Balló Gábor

A kvantitatív PCR alkalmazhatósága a fertőző bronchitis vakcinák hatékonysági vizsgálatában. Derzsy Napok, Sárvár, 2011 Június 2-3.

III/3. Gének átvitele vektorokkal

A búza (Triticum aestivum L.) glutamin szintetáz enzim viselkedése abiotikus stresszfolyamatok (a szárazság- és az alumíniumstressz) során

GÉNTECHNOLÓGIA ÉS PROTEIN ENGINEERING GYAKORLAT

5. Előadás Nukleinsavak kimutatása, szekvenálás

7. A b-galaktozidáz indukciója Escherichia coliban

Semmelweis Egyetem / Élettani Intézet / Budapest. Bioinformatika és genomanalízis az orvostudományban. Szekvenciaelemzés. Cserző Miklós 2017

Tipizálási módszerek alkalmazása methicillin-rezisztens Staphylococcus aureus (MRSA) törzsek molekuláris epidemiológiai vizsgálatai során

A doktori értekezés tézisei. A növényi NRP fehérjék lehetséges szerepe a hiszton defoszforiláció szabályozásában, és a hőstressz válaszban.

ALKÍMIA MA Az anyagról mai szemmel, a régiek megszállottságával.

SZENT ISTVÁN EGYETEM

2011. január április 10. IPK Gatersleben (Németország) május 17. Kruppa Klaudia

A BURGONYA Y VÍRUS KÖPENYFEHÉRJE GÉN ÁLTAL INDUKÁLT REZISZTENCIA KIALAKÍTÁSA BURGONYA- ÉS DOHÁNYFAJTÁKBAN, ÉS EZEK SZÁNTÓFÖLDI ÉRTÉKELÉSE

Antiszenz hatás és RNS interferencia (a génexpresszió befolyásolásának régi és legújabb lehetőségei)

A burgonya levélsodródás vírus

TÁMOP /1/KONV

Növényi sejtek által előállított monoklonális antitesttöredékek jellemzése

Növényvédelmi Tudományos Napok 2014

Egy Polycomb Response Element (PRE) in situ vizsgálata Drosophila melanogaster-ben génkonverzió segítségével. Kozma Gabriella

Az örökítőanyag. Az élőlények örökítőanyaga minden esetben nukleinsav (DNS,RNS) (1)Griffith, (2)Avery, MacLeod and McCarty (3)Hershey and Chase

Transzgénikus növények előállítása

AZ IS30 BAKTERIÁLIS INSZERCIÓS ELEM CÉLSZEKVENCIA VÁLASZTÁSÁNAK MOLEKULÁRIS TÉNYEZŐI DOKTORI ÉRTEKEZÉS TÉZISEI SZABÓ MÓNIKA

KÓROKOZÓ VÍRUSOK ELŐFORDULÁSA MAGYARORSZÁGI FELSZÍNI- ÉS FÜRDŐVIZEKBEN. Doktori értekezés tézisei. Kern Anita

11. Dr. House. Biokémiai és sejtbiológiai módszerek alkalmazása az orvoslásban

SALMONELLA SSP. GYORS, MOLEKULÁRIS BIOLÓGIAI MÓDSZEREKKEL TÖRTÉNŐ DETEKTÁLÁSA

Élő metapneumovírus vakcina fejlesztése tojóállományok részére: ártalmatlansági és hatékonysági vizsgálatok. Hajdúszoboszló, június 2-3.

Name Sequences* Length (mer) NHT-1 attcgctgcctgcagggatccctattgatcaaagtgccaaacaccg 48

Szent István Egyetem Állatorvos-tudományi Doktori Iskola. Háziállatokból izolált Histophilus somni törzsek összehasonlító vizsgálata

Különböző Capsicum annuum var. grossum paprikafajták endofita baktériumainak izolálása, jellemzése és molekuláris biológiai vizsgálata

Posztvakcinációs rotavírus surveillance Magyarországon,

TDK lehetőségek az MTA TTK Enzimológiai Intézetben

Átírás:

1 DOKTORI (PhD) ÉRTEKEZÉS TÉZISEI VESZPRÉMI EGYETEM GEORGIKON MEZŐGAZDASÁGTUDOMÁNYI KAR KESZTHELY Növényvédelmi Intézet Növénykórtani és Növényvirológiai Tanszék Programvezető: Alprogramvezető: Témavezető: Dr. Sáringer Gyula Dr. Horváth József Dr. Horváth József az MTA rendes tagja az MTA rendes tagja az MTA rendes tagja A BURGONYA Y-VÍRUS (POTATO Y POTYVIRUS) JELLEMZÉSE, AZ NTN TÖRZZSEL SZEMBEN REZISZTENCIA A VAD SOLANUM FAJOKBAN Készítette: TAKÁCS ANDRÁS PÉTER KESZTHELY 2001

2 CÉLKITŰZÉSEK A burgonya Y-vírus (potato Y potyvirus, PVY) a Potyviridae család Potyvirus nemzetségének típus tagja. A nyolcvanas években Magyarországon megjelent egy új rezisztenciaáttörő tulajdonságú PVY törzs, amely a PVY addig ismert törzseivel szemben rezisztens burgonyafajtákat is megbetegítette. A PVY NTN törzs jelenleg az egész világon elterjedt és jelentős termésveszteséget okoz a burgonyatermesztő országokban. Ezért gazdasági és virológiai jelentőségénél fogva kiemelt szerepe van a vírusrezisztens, vagy a toleráns burgonyafajták előállítását célzó, a burgonya géncentrumából származó rezisztenciával rendelkező vad Solanum fajok és származékok kutatásának. A PVY NTN törzs jelentőségére tekintettel célul tűztük ki az eddig ismeretlen rezisztenciaforrások feltárását, amelyek felhasználhatók a burgonyanemesítésben. Céljaink között szerepelt az egyes Solanum fajok származékainak rezisztencia tulajdonságokban megnyilvánuló különbségeit is feltárni. Vizsgálataink kiterjedtek a PVY gazdanövénykörére, azok szimptomatológiai tulajdonságaira is. Tanulmányoztuk hazánk különböző területeiről származó PVY NTN izolátumok köpenyfehérje génjének nukleotid sorrendjét. A nukleotid sorrend eltérése ill. hasonlósága alapján megállapítható az egyes izolátumok genetikai variabilitása. Ezzel az volt a célunk, hogy az izolátumainkat összehasonlítsuk a Beczner et al. (1984) által izolált és Thole et al. (1993) által szekvenált PVY NTN törzzsel és más PVY izolátumokkal, ezáltal megállpítva a filogenetikai rokonságot.

3 ANYAG ÉS MÓDSZER Rezisztenciavizsgálatok Kísérleteket végeztünk a burgonya géncentrumából, Dél-Amerika különböző országaiból származó rövidnappalos gumóképző vad Solanum fajok és származékok vírus fogékonyságára, ill. rezisztenciájára vonatkozóan. A kísérletekhez a magokat az Egyesült Államokból a Sturgeon Bay-ben lévő burgonya génbankból kaptuk. A fertőzésekhez a Nicotiana tabacum Xanthi-nc növényeken fentartott PVY NTN törzs Maradona izolatumát használtuk fel. A vírustörzset Beczner et al. (1984) izolálta és identifikálta. A fertőzéshez szükséges szövetnedvet, a vírusra jellemző hólyagos mozaik és érnekrózis tüneteket mutató levelekből nyertük, amelyek a növények felső harmadából származtak. A növényeket 8-10 leveles állapotban virológiai üvegházunkban fenntartott vírusizolátumokkal mechanikailag mesterségesen inokuláltuk. A levelekből nyert szövetnedvet 1:1 arányban Sörensen foszfát pufferrel (6,7 mm, ph 7,2) hígítottuk, majd az e módon előkészített vírust tartalmazó szövetnedvvel minden Solanum fajból, ill. származékból 7-7 növényt fertőztünk. Az inokulált növények vírussal szembeni magatartását vizuálisan szimptomatológiailag értékeltük. Feljegyeztünk minden az inokulált leveleken jelentkező lokális vagy primer és a nem inokulált növényi részeken jelentkező szisztemikus vagy szekunder tünetet. A mechanikai inokulációt követő 5. héten a Solanum

4 származékokból görgőspréssel kinyert, mintapufferrel ötszörösére higított szövetnedvet DAS-ELISA szerológiai módszerrel vizsgáltuk (Clark és Adams 1977). A vizsgálatot Boehringer Mannheim és a Loewe Biochemica "Potato Virus Y" kitjeivel azok receptúrája szerint végeztük. A fotometrálás 405 nm-en Labsystems Multiscan RC ELISA readeren történt. Negatívnak tekintettük azokat a mintákat, amelyek esetében a mért extinkciós értékek nem haladták meg a negatív kontroll extinkciós értékének a kétszeresét. A vírus visszaizoláláshoz Nicotiana tabacum cv. Xanthi-nc növényeket használtunk. Extrém rezisztensnek (immunisnak) tekintettük azokat a Solanum fajokat ill. származékokat, amelyek a szimptomatológiai vizsgálat során sem lokális sem szisztemikus tüneteket nem mutattak, a szerológiai vizsgálattal a vírus jelenlétét nem tudtuk kimutatni, továbbá a bioteszt eredménye is negatív volt. Molekuláris virológiai vizsgálatok Németországból és Magyarország földrajzilag eltérő területeiröl, különböző növényeken izolált PVY NTN törzs izolátumokat vizsgáltunk. A németországi izolátumokat a Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen intézmény bocsájtotta rendelkezésünkre. A célunk az volt, hogy a különböző helyről származó NTN-törzs izolátumokat összehasonlítsuk a köpenyfehérje gén és a 3 vég nem kódoló régió nukleotid sorrendjének alapján. Mindez új ismereteket nyújt az egyes

5 izolátumok filogenetikai hovatartozásáról és genetikai variabilitásáról. Vizsgálataink során a következő izolátumokat alkalmaztuk: Ke-9 jelű izolátumot Magyarországon, Zala Megyében, Keszthelyen Murillo burgonyafajtán Wolf István izolálta. Ka-2 jelű izolátumot Magyarországon, Hajdó-Bihar Megyében, Kabán Murillo burgonyafajtán Wolf István izolálta. D-6 jelű izolátumot Magyarországon, Bács-Kiskun Megyében, Dunaegyházán Murillo burgonyafajtán Wolf István izolálta. RM jelű izolátumot Magyarországon, Győr-Moson-Sopron Megyében, Röjtökmuzsajon Murillo burgonyafajtán izoláltam. MM jelű izolátumot Magyarországon, Somogy Megyében, Mariettapusztán Murillo burgonyafajtán izoláltam. PV-0410 jelű izolátumot Németországban Hesse-ben Nicola burgonyafajtán H. L. Weidemann izolálta. PV-0446 jelű izolátumot Németországban paradicsomon J. Dalchow izolálta. Össz-nukleinsav kivonás, tisztítás A tüneteket mutató fiatal Nicotiana tabacum cv. Xanthi-nc levelekből vett mintát az - RNS-ek sérülékenysége miatt - hűtött eszközökben (jégen) teljes nukleinsav kivonó pufferben feltártuk. A propagatív gazdanövények sejtalkotóit, fehérjéit többlépcsős fenolos majd kloroformos extarkcióval távolítottuk el. Az összes nukleinsav kivonása abszolút alkohollal történt. Szárítást követően a nukleinsavat steril bidesztillált vízben visszaoldottuk és 80 o C-on tároltuk. DNS másolat (cdns) készítése reverz transzkripcióval

6 A tisztított és visszaoldott nukleinsav mintában lévő vírus RNS-ről poli T indító szekvenciákkal (primer) olyan DNS másolatokat hoztunk létre, amelyek komplementerek a vírus RNS nukleotidjaival. Polimeráz láncreakció (PCR) A vírusgenom köpenyfehérje régiója és a 3' vég nem kódoló régiója az egyes PVY törzsek között a legnagyobb eltérést mutatja. Ezért a PCR reakció során ezt a cdns szakaszt szaporítottuk fel. A polimeráz láncreakció Perkin Elmer készülékben történt. A köpenyfehérje gén 5' végén 5'-GGG AAT TCC GCG GAA ATG ACA CAA TCG ATG CAG GAG-3', 5'-GGG AAT TCC GCG GAA ATG ACA CAA TTG ATG CAG GAG-3' degenerált primert használtunk, a 3' vég nem kódoló régió végén polyt (5'-CGGGGATCCTCGAGAAGC(T)17-3') primert alkalmaztunk. A reakcióelegy tartalmazta a cdns-t, a köpenyfehérje gén kiemeléséhez szükséges foszforilált oligonukleotidokat, a Promega cég által gyártott puffereket, a nukleotid keveréket és a hőstabil Taq polimeráz enzimet. A PCR ciklus során a DNS denaturálása (a másodlagos szerkezet fellazítása) 94 o C-on 15 másodpercig történt, az anellálás (a két komplementer DNS szál szétválása) 45 o C-on 30 másodpercig tartott és a polimerizációt (sokszorosítás) 72 o C-on 3 percig végeztük. A kívánt DNS mintamennyiség eléréséhez ezt a ciklust 40-szer ismételtük. A DNS hasítása restrikciós endonukleázokkal A polimerizációval megsokszorozott nukleinsavat Sac II és Bam HI restrikciós endonukleázokkal hasítottuk. Az enzimes emésztés 37 o C-on 1

7 órán át tartott. Agarózgél elektroforézis A hasítás során létrejött DNS-fragmentumokat 1%-os agarózgélen - egyenáramú elektromos térben - elektroforézissel választottuk szét. A DNS molekulák a negatív pólustól a pozitív pólus irányába mozognak. Az eválasztás gyorsasága és a termékek távolsága a DNS fragmentum nagyságától függ. Az elektroforézishez fluoreszcens festék (etidiumbromid) tartalmú agarózgélt használtunk. A DNS-molekulák a festék hatására UV fényben láthatóvá váltak. A kívánt sávokat a gélből szikével kivágtuk. A gélcsíkokat visszaoldottuk és tisztítottuk. A DNS darabokat (inszert) vizes oldatba vittük. Rekombináns plazmidok előállítása A DNS szakaszt pbluescript SK+ plazmidba (Stratagene Inc.) (vektor) építettük be, amelyet előzőleg SacII és BamHI restrikciós endonukleázokkal hasítottunk. A defoszforiláció következtében a plazmid nem tudott visszazáródni. A ligáláshoz T4 DNS ligázt használtunk, ami az inszertet az azonos enzimekkel hasított ún. ragadós végekkel beépítette a plazmidba (Sambrook et al. 1989). A rekombináns plazmidok baktérium sejtekbe építése A rekombináns plazmidot Escherichia coli DH5α (Stratagene Inc.) plazmidmentes baktérium sejtekbe építettük be. A kompentens sejtek előállítása, tisztítása valamint a rekombináns plazmidok hősokkal történő sejtbejuttatása Sambrook et al. (1989) szerint történt. A baktérium

8 szuszpenziót egyenletesen ampicilin antibiotikumot tartalmazó LB táptalajra vittük. A táptalajon csak azok a baktériumok voltak képesek osztódni amelyek ampicilin rezisztenciagént hordoztak. A lemezeken elhelyezkedő baktérium kolóniákat ún. blue-white szelekcióval vizsgáltuk. Azok a baktérium telepek, amelyek kék színűek voltak tartalmazták ugyan a plazmidot, de ebben az esetben az inszert nem épült be a plazmidba. A fehér telepek esetében egy a plazmidban lévő enzimműködésért felelős gén kifejeződése az inszert beépülése miatt gátolt. Ezért a továbbiakban ezeket a baktérium kolóniákat használtuk fel. A rekombináns plazmidok felszaporítása Az inszerteket tartalmazó fehér telepeket ampicilin tartalmú folyékony LB táptalajba oltottuk (Sambrook et al. 1989). Az E. coli baktériumokat egy éjszakán át 37 o C-on rázattuk, így biztosítva a baktériumok optimális életfeltételeit és ezáltal gyors osztódásukat. A baktériumokkal együtt a bennük lévő rekombináns plazmidok is oly mértékben felszaporodtak (klónozás), hogy megfelelő mennyiséget kaptunk a szekvencia analízishez. A plazmidok tisztítása Első lépésként centrifugálással elkülönítettük a baktériumsejteket a táptalajtól. A további vizsgálatokhoz szükséges volt a baktériumsejtek elpusztítása, és az oldat tisztítása a sejttörmelékektől és a sejtalkotóktól. Ezt követően a tisztított rekombináns plazmidot SacII és BamHI restrikciós endonukleázokkal emésztettük. Így vizsgálható mennyiségben

9 hozzájutottunk a vírus RNS-ről átírt köpenyfehérje gén DNS másolatához, amelyet a nukleotid sorrend meghatározásához használtunk fel. A köpenyfehérje gén nukleotid sorrendjének a meghatározása A tisztított DNS minta nukleotid sorrendjét a Szegedi Biológiai Központban automata szekvenálóval határozták meg. A kapott adatok feldolgozása a "Wisconsin Genetics Computer (GCG) Package Version 9.1." számítógépes programcsomaggal történt. A szekvenciák összehasonlításához az EMBL/GenBank adatbázisát használtuk. A filogenetikai törzsfa megrajzolása a DRAWTREE programmal történt

10 ÚJ TUDOMÁNYOS EREDMÉNYEK Szimptomatólógiai, szerológiai és bioteszt módszerekkel megvizsgáltuk 115 dél-amerikai rövidnappalos gumóképző vad Solanum faj ill. származék vírusfogékonyságát a PVY NTN törzsével szemben. Százegy eddig ismeretlen új kompatibilis gazda-vírus kapcsolatot tártunk fel. A növényeket szimptomatológiailag jellemeztük és a PVY NTN törzs új gazdanövényeiként írtuk le. A fent említett módszerekkel a PVY NTN törzzsel szemben 14 immunis vad Solanum fajt ill. származékot (Solanum acroscopicum PI. 365314, S. albornozii PI. 498206, S. ambosinum PI. 498212, 498213, S. arnezii PI. 545880, S. cacetanum PI. 584492, S. solisii PI. 473472, S. stoloniferum PI. 558472, 558476, S. subpanduratum PI. 498289, S. sucubunense PI. 583320, S. tarnii PI. 498046, 545742, 570642) tártunk fel, amelyek rezisztenciaforrásként felhasználhatóak a burgonyanemesítésben új PVY NTN rezisztens burgonyafajták előállítására. Rezisztenciavizsgálataink során egy adott fajon belül is a származékok között lényeges eltérést tapasztaltunk a rezisztencia tulajdonságokban. A Solanum fajok közül a S. tarnii származékai (PI. 498046, 545808, 570641) fogékonyak voltak, ezzel ellentétben a PI. 498048, 545742, 570642 származékok extrém rezisztenciát mutattak a PVY NTN törzs fertőzésével szemben. Hasonló eredményeket tapasztaltunk a S. acroscopicum, S. albornozii, S. ambosinum, S. arnezii és S. stoloniferum fajok és származékaik esetében is. Ezek az eredmények rámutatnak a fajon belüli genetikai különbségekre.

11 A vizsgálat során 7 PVY NTN izolátum köpenyfehérje génjének 611 bázis hosszúságú szakaszát és a 3' vég nem kódoló régióját molekuláris szempontból jellemeztük. Az izolátumok között nagy eltérést a nukleotid sorrendben nem tapasztaltunk. Ezért a PVY NTN törzs köpenyfehérje génje kísérleti növényekben alkalmas a patogéntől származtatott rezisztencia kialakítására. Ilyen transzgénikus növények felhasználhatóak a biotechnológiai kutatásokban a rezisztencia tulajdonságok valamint a vírus biológiájának jobb megismeréséhez. A nukleotid sorend ismeretében felállítottuk az általunk molekulárisan jellemzett PVY NTN izolátumok és adatbankban szereplő izolátumok filogenetikai törzsfáját a köpenyfehérje gén azonos szakaszának nukleotid sorrendje és a 3' vég nem kódoló régió nukleotid sorrendje, valamint a köpenyfehérje gén azonos szakaszának aminosav sorrendje alapján. Mindhárom esetben a vizsgált izolátumok a Beczner et al. (1984) által leírt és Thole et al. (1993) által molekulárisan jellemzett magyarországi PVY NTN törzs izolátummal együtt elkülönülnek a különböző eredetű PVY izolátumoktól. Így megállapítható hogy ezek az izolátumok a szimptomatológiai és szerológiai tulajdonságaikon túl a molekuláris jellemzőik alapján is a PVY NTN törzshöz tartoznak.

12 AZ ÉRTEKEZÉS TÉMAKÖRÉBŐL KÉSZÜLT KÖZLEMÉNYEK Idegen nyelvű tudományos közlemények Takács, A., Horváth, J., Kazinczi, G., Pribék, D. (1999): Solanum species as new resistance sources of C strain of potato Y potyvirus (PVY C ). Meded. Fac. Landbouww. Univ. Gent, 64/3b, 509-511. Takács, A., Kazinczi, G., Horváth, J., Bősze, Z., Pribék, D. (1999): Resistance of new wild Solanum species to NTN strain of potato Y potyvirus (PVY NTN ). Meded. Fac. Landbouww. Univ. Gent, 64/3b, 513-520. Horváth, J., Kazinczi, G., Takács, A., Pribék, D., Bese, G., Gáborjányi, R., Kadlicskó, S. (2000): Virus susceptibilty and resistance of Hungarian pepper varieties. Int. J. Hortic. Sci., 6, 4:68-73. Pribék, D., Szénási, Á., Takács, A., Jenser, G., Kazinczi, G., Horváth, J. (2000): Thrips transmission of TSWV to different Solanum species. Meded. Fac. Landbouww. Univ. Gent, 65 (2a), 359-361. Takács, A., Horváth, J., Kazinczi, G., Pribék, D., (2000): Die Virusanfalligkeit verschiedener Unkräuter der Gattung Solanum. Z. PflKrankh. PflSchutz, Sonderh. XVII, 173-175. Takács, A., Kazinczi, G., Horváth, J., Pribék, D. (2000): Susceptibility of different Solanum species to PVX and TSWV. Meded. Fac. Landbouww. Univ. Gent, 65 (2b), 593-595. Takács, A., Kazinczi, G., Horváth, J., Pribék, D. (2000): New host-virus relations between different Solanum species and viruses. Meded. Fac. Landbouww. Univ. Gent, in press. Kazinczi, G., Pribék, D., Takács, A. (2001): Biological decline of Solanum nigrum L. due to tobacco mosaic tobamovirus (TMV) infection I. growth and nutrient uptake. Acta Phytopathol. Entomol. Hung. 36, 1-2: 9-14. Idegen nyelvű előadások és poszterek Horváth, J., Takács, A., Kazinczi, G. (1999): Reaction of wild Solanum species to NTN strain of potato Y potyvirus (PVY NTN ). 14 th Triennal Conf. EAPR, Sorrento, Italy 1999. pp. 315-316. Horváth, J., Takács, A., Kazinczi, G. (1999) Ecolology and biology of potato Y potyvirus (PVY). PVY Conference. Budapest 1999. pp. 1-3. Takács, A., Horváth, J., Kazinczi, G., Pribék, D. (1999): Solanum species as new resistance sources of C strain of potato Y potyvirus (PVY C ). 51 st International Symp. on Crop Protection, Gent, Belgium 1999. p. 158.

13 Takács, A., Kazinczi, G., Horváth, J., Bősze, Z., Pribék, D. (1999): Resistance of new wild Solanum species to NTN strain of potato Y potyvirus (PVY NTN ). 51 st International Symp. on Crop Protection, Gent, Belgium 1999. p. 159. Pribék, D., Szénási, Á., Takács, A., Jenser, G., Kazinczi, G., Horváth, J. (2000): Thrips transmission of TSWV to different Solanum species. 52 nd International Symp. on Crop Protection, Gent, Belgium 2000. p. 44. Takács, A., Horváth, J., Kazinczi, G., Pribék, D. (2000): Susceptibility of different Solanum species to two viruses. 52 nd International Symp. on Crop Protection, Gent, Belgium 2000. p. 76. Horváth, J., Kazinczi, G., Takács, A. (2001): Potato Y potyvirus: tuber necrotic ringspot strain as the main problem in the potato cultivation and breeding. XXXVII Croatian Symposium on Agriculture, Opatija 2001. p. 339. Horváth, J., Takács, A., Kazinczi, G. (2001): Some new results on the resistance of wild Solanum species to the NTN strain of potato Y potyvirus (PVY NTN ). 5 th Slovenian Conference on Plant Protection, Catez ob Savi 2001. p. 65. Kazinczi, G., Horváth, J., Kovács, J., Takács, A. (2001): Affinity of the different capsicum genotypes to the resistance breaking strain of potato Y potyvirus. EUCARPIA XI th Meeting on Genetics and Breeding of Capsicum and Eggplant, Antalya-Turkey 2001. pp. 261-264. Kazinczi, G., Horváth, J., Takács, A. (2001): Role of weeds in the epidemiology of viruses. 5 th Slovenian Conference on Plant Protection, Catez ob Savi 2001. pp. 63-64. Takács, A., Horváth, J., Kazinczi, G., Pribék, D. (2001): New host-virus relations between different Solanum species and viruses. 53 rd International Symp. on Crop Protection, Gent, Belgium 2001. p. 117. Magyar nyelvű tudományos közlemények Takács A., Horváth J., Kazinczi G. (1998): A burgonya Y-vírus (potato Y potyvirus) NTN törzse (PVY NTN ). Növényvédelem, 34, 11:621-626. Takács A., Kazinczi G., Horváth J., Pribék D. (1998): Vad Solanum fajok rezisztenciájának vizsgálata a burgonya Y-vírus (potato Y potyvirus) NTN-törzsével (PVY NTN ) szemben. Növénytermelés, 47, 1:1-4. Takács A. (1999): A burgonya Y-vírus (potato Y potyvirus, PVY), morfológiája, genetikája és törzsei vektorai, gazdanövényköre és tünettana. Növénytermelés, 48, 2:199-208.

14 Takács A. (2000): A burgonya Y-vírus (potato Y potyvirus, PVY) elleni védekezés lehetőségei és a rezisztenciaforrások. Növénytermelés, 49, 4:413-419. Takács A., Horváth J., Kazinczi G., Pribék D. (2000): Dohányfajták vírusfogékonyságának a vizsgálata a burgonya Y-vírus (potato Y potyvirus) NTN (PVY NTN ) és normál törzsével szemben. Növénytermelés, 49, 4:347-351. Takács A., Pribék D., Horváth J., Kazinczi G. (2000): Különböző vad Solanum fajok vírusfogékonysága a burgonya Y-vírus NTN-törzsével (potato Y potyvirus, PVY NTN ) és a dohány mozaik vírussal (tobacco mosaic tobamovirus, TMV) szemben. Növényvédelem, 36, 8:393-396. Takács A., Rauscher, E. (2000): Gyűrűsnekrózist mutató burgonyagumók vírusfertőzöttségének vizsgálata. Növénytermelés, 49, 3:221-225. Magyar nyelvű előadások és poszterek Kazinczi G., Horváth J., Takács A. (1998): A növények vírusfertőzés következtében fellépő biológiai értékcsökkenése. Lippay J. - Vas K. Sci. Symp., Budapest 1998. pp. 310-311. Takács A., Horváth J. (1998): Újabb vad Solanum rezisztenciaforrások feltárása a burgonya Y potyvirus NTN-törzsével (PVY NTN ) szemben. Lippay J. - Vas K. Sci. Symp., Budapest 1998. pp. 344-345. Takács A., Horváth J. (1998): Vad Solanum fajok és származékok rezisztenciájának vizsgálata a burgonya Y potyvirus C-törzsével (PVY C ) szemben. Lippay J. - Vas K. Sci. Symp., Budapest 1998. pp. 342-343. Takács A., Kazinczi G., Horváth J., Pribék D. (1998): Vad Solanum fajok rezisztenciája a burgonya Y Potyvirus NTN-törzsével (PVY NTN ) szemben. Növényvédelmi Tud. Napok, Budapest 1998. p. 137. Takács A., Kazinczi G., Horváth J., Pribék D. (1998): A burgonya Y- vírus NTN törzsével (PVY NTN ) szemben rezisztens vad Solanum fajok és származékok felkutatása. Nemzetközi Környezetvédelmi Szakmai Diákkonferencia, Mezőtúr 1998. p. 75. Takács A., Kazinczi G., Horváth J., Pribék D. (1998): Vad Solanum rezisztenciaforrások feltárása a burgonya Y-vírus (potato Y potyvirus) NTN-törzsével (PVY NTN ) szemben. XL. Georgikon Napok, Keszthely 1998. pp. 348-352. Kazinczi G., Horváth J., Takács A. (1999): A Selyemkóró (Asclepias syriaca L.) a dohány mozaik vírus új természetes gazdája Magyarországon. Növényvédelmi Tud. Napok, Budapest 1999. p. 105.

15 Takács A., Pribék D., Horváth J., Kazinczi G. (1999): Ujabb vad Solanum fajok rezisztenciája a burgonya Y-vírus NTN-törzsével (PVY NTN ) szemben. Növényvédelmi Tud. Napok, Budapest 1999. p. 127. Takács A., Pribék D., Horváth J., Kazinczi G. (1999): Ujabb vad Solanum fajok rezisztenciája a burgonya Y-vírus C-törzsével (PVY C ) szemben. Növényvéd. Fórum, Keszthely 1999. p. 64. Pribék D., Takács A., Kazinczi G., Horváth J. (2000): Vad Solanum fajok TSWV fogékonyságának vizsgálata. Lippay J. - Vas K. Sci. Symp., Budapest 2000. pp. 440-441. Horváth J., Kazinczi G., Takács A., Gáborjányi, R. (2000): A paradicsom bronzfoltosság vírus előfordulása burgonyán. Növényvédelmi Tud. Napok, Budapest 2000. p. 101. Takács A., Pribék D., Horváth J., Kazinczi G. (2000): Különböző vad Solanum fajok vírusfogékonysága a burgonya Y-vírus NTN-törzsével (PVY NTN ) és a dohány mozaik vírussal (TMV) szemben. Növényvédelmi Tud. Napok, Budapest 2000. p. 122. Takács A., Pribék D., Horváth J., Kazinczi G. (2000): Dél-amerikai vad Solanum rezisztenciaforrások vizsgálata a burgonya Y-vírus NTN törzsével (PVY NTN ) szemben. Növényvéd. Fórum, Keszthely 2000. p. 63. Takács A., Pribék D., Kazinczi G., Horváth J. (2000): Új gazda-vírus kapcsolatok feltárása vad Solanum fajokon a burgonya Y potyvirus NTN-törzsével (PVY NTN ) szemben. Lippay J. - Vas K. Sci. Symp., Budapest 2000. pp. 454-455. Kazinczi G., Horváth J., Takács A., Pribék D. (2001): Vírusok alternatív gazdái: gyomnövények. Növényvédelmi Tud. Napok, Budapest 2001. p. 90. Takács A., Horváth J., Kazinczi G., Pribék D. (2001): Új kompatibilis gazda-vírus kapcsolatok feltárása a burgonya Y-vírus NTN törzsével (PVY NTN ) szemben. Növényvéd. Fórum, Keszthely 2001. p. 49.