Mycoplasma pneumoniae-igg-elisa medac. Magyar 360-VPU/170105

Átírás

1 Mycoplasma pneumoniaeiggelisa medac Magyar 360VPU/170105

2 GYÁRTÓ medac Gesellschaft für klinische Spezialpräparate mbh Fehlandtstraße 3 D20354 Hamburg FORGALMAZÓ medac Gesellschaft für klinische Spezialpräparate mbh Geschäftseinheit Diagnostika Theaterstraße 6 D22880 Wedel Tel.: ++49 / 4103 / Fax: ++49 / 4103 / RENDELÉSI CÍM: Tel.: ++49 / 4103 / Fax: ++49 / 4103 / VPU/170105

3 Mycoplasma pneumoniaeiggelisa medac Enzim immunossay Mycoplasma pneumoniae IgG antitestek kvantitatív kimutatására humán szérumból Katalógusszám: 360 IN VITRO DIAGNOSZTIKAI HASZNÁLATRA BEVEZETÉS A Mycoplasmák sejtfal nélküli baktériumok (Mollicutes osztály = lágyfalú, Mycoplasmatales rend) különlegesen kicsi genommal. Kis méretük ( nm) és nagyon sok különböző alakot felvevő képességük (pleomorphizmus) jellemzi. Jelenleg a Mycoplasmatales rend több mint 100 fajtája ismert. Legtöbbjük kizárólag állatokban fordul elő. Eddig 14 fajukat izolálták emberből. A légúti és az urogenitális nyálkahártyákon kolonizálódnak. Csak néhányuk patogén. A Mycoplasma pneumoniae az emberre patogén fajok közé tartozik. A M. pneumoniae két variánsa ismert. A M. pneumoniae a légúti nyálkahártya extracelluláris parazitája. A patogént a gazdasejthez való nagy specificitásával különböztetjük meg. A patogénnek a gazdasejt felületéhez való tapadásáért egy specifikus adhezin felelős. Ez az adhezin tartalmazza a virulencia faktort is, amely ellen a döntő humorális válasz irányul. A M. pneumoniae cseppfertőzéssel terjed, de a 1020 napos inkubációs periódus viszonylag hosszú A M. pneumoniae fertőzés helyi jellegű, tavaszi és őszi szezonális csúcsokkal. A 34 évente jelentkező járvány nem szokatlan. A M. pneumoniae fertőzés az egyik leggyakoribb oka a közösségben szerzett tracheobronchitisnek és atípusos tüdőgyulladásnak gyerekekben és fiatal felnőttekben. A legnagyobb előfordulási valószínűsége 5 és 15 éves kor között van. Az atípusos tüdőgyulladások 5 10 %a a M. pneumoniaenek tulajdonítható. Az alábbi betegségeket is okozhatja: pharyngitis, laryngitis, otitis media és myringitis. A légúti fertőzéssel kezdődő M. pneumoniae fertőzést követően különböző egyéb klinikai megnyilvánulások keletkezhetnek más szervekben és rendszerekben: pericarditis és myocarditis, reactive arthritis, meningitis, meningoencephalitis, és polyneuritis együtt a bőrt érintő körülmények széles választékával. Ez a látszólag kevéssé ártalmas fertőzés ezért később súlyos következményekkel járhat. A betegség különösen súlyos következményekkel járhat immunhiányos, illetve immunszuprimált betegekben. 360VPU/

4 A M. pneumoniae fertőzés nem ad semmilyen védettséget a patogén ellen. Ezért gyakori újrafertőződések előfordulhatnak. Öt alatti gyerekekben a fertőzés legtöbbször tünetmentes. Ezekben az esetekben a betegség enyhe lefolyású. Idősebb gyerekekben, fiatalokban és felnőttekben azonban a betegséget kimerültség, fejfájás, láz és száraz, nem produktív köhögés kíséti. De ezek a klinikai tünetek teljesen nem specifikusak és nem adnak semmi jelet a fertőzés okára. Ezért szükséges egy hatékony diagnosztikai teszt. A betegség akut fázisában az okozó patogén kimutatása a megfelelő választás. A vizsgálat elvégezhető torokmintából, nyálból és bronchoalveolar lavage fluid (BAL)ból. A klasszikus módszer, a M. pneumoniae tenyésztése sejtkultúrában hosszú ideig (1014 napig) tart. Mindazonáltal a mikroorganizmus izolációja csak az esetek 40 60%ában sikeres. Az antigénelisa teszt sejtgazdag mintát igényel, mert a teszt érzékenysége viszonylag alacsony. Hatékony kvalitatív DNS teszt még nincs kereskedelmi forgalomban. A szerológiai teszt a megfelelő választás a M. pneumoniae által okozott krónikus, és újrafertőzésekben, vagy extrapulmonáris betegségekben. A kereskedelmi tesztek magukban foglalják a komplementkötő (CFT), a hemagglutinációs (HAT) és enzimimmunoassay (ELISA) módszereket. A CFT és HAT módszerekkel ellentétben, az ELISA teszt lehetővé teszi az immunglobulin osztályok IgG, IgA és IgM differenciálását, így az akut fertőzés megkülönböztetését a krónikus, vagy régmúlt fertőzéstől. A Mycoplasma pneumoniaeiggelisa medac rekombináns antigénkeveréket alkalmaz a szerológiai vizsgálathoz. Ez biztosítja a nagy érzékenységű és specificitású vizsgálatokat. Továbbá a Medac egy pontos kvantifikációja (AU/ml) biztosítja a legjobb körülményeket a reprodukálható eredményekhez és ezzel a követő minták vizsgálatához VPU/170105

5 A TESZT ELVE A lemezt rekombináns M. pneumoniae specifikus antigénnel vonták be. A mintában levő M. pneumoniaespecifikus antitestek szelektíven kötődnek az antigénekhez. Peroxidázzal konjugált antihumán IgG antitestek kötődnek az IgG antitestekhez (P = peroxidáz). Inkubálás TMBszubsztráttal (*). A reakciót kénsav hozzáadásával állítjuk le. Az abszorbanciát fotometrikusan mérjük. A teszt előnyei A törhető csíkok lehetővé teszik a teszt gazdaságos felhasználását. Alkalmas automatizálásra nyitott ELISA rendszereken. Egypontos kvantifikáció, nem szükséges standard görbe. 360VPU/

6 A KIT TARTALMA KAT. SZÁM: MTP Mikroplate: 12 x 8 lyuk, sárga színkód (kerettel és szárítószerrel, vákuumzárású alumínium zacskóban), törhető, Ualakú, M. pneumoniae rekombináns antigénnel és FCSsel bevonva, felhasználásra kész. 2. CONTROL Negatív kontroll: két üveg, mindegyikben 0,75 ml humán szérum, felhasználásra kész, kék színű, NBCS, fenol, ProClin 300 és gentamicinszulfát tartalmú. 3. CONTROL + Pozitív kontroll: két üveg, mindegyikben 0,75 ml humán szérum, felhasználásra kész, kék színű, BSA, fenol, ProClin 300 és gentamicinszulfát tartalmú. 4. CAL Kalibrátor: két üveg, mindegyikben 0,75 ml humán szérum, felhasználásra kész, kék színű, BSA, fenol, ProClin 300 és gentamicinszulfát tartalmú. 5. WB Mosó puffer: 1 flakon, 100 ml PBS/Tween (10x), ph 7,2 7,4, ProClin 300 tartalmú. 6. BACDIL Mintahígító: 1 flakon, 110 ml PBS/Tween/NBCS, ph 7,0 7,2, felhasználásra kész, kék színű, ProClin 300 tartalmú. 7. CON Konjugátum: 3 üveg, mindegyikben 5,0 ml kecske antihumán IgG, HRPvel konjugált, felhasználásra kész, zöld színű, BSA, fenol, ProClin 300 és gentamicinszulfát tartalmú. 8. TMB TMB szubsztrát: 1 flakon, 10 ml, felhasználásra kész. 9. STOP Leállító oldat: 2 flakon, mindegyikben 14 ml, 0,5 M kénsav (H 2 SO 4 ), felhasználásra kész VPU/170105

7 1. TÁROLÁS ÉS STABILITÁS ANYAG/REAGENS ÁLLAPOT TÁROLÁS STABILITÁS Kit bontatlan 2 8 C lejárati időig 2 8 C, Mikroplate bontott szárítószeres 12 hét zacskóban Kontrol/kalibrátor bontott 2 8 C 12 hét Mosópuffer hígított 2 8 C 12 hét Mintahígító bontott 2 8 C 12 hét Konjugátum bontott 2 8 C 12 hét TMB szubsztrát bontott 2 8 C 12 hét Leállító oldat bontott 2 8 C lejárati időig Ne használjuk a reagenseket a lejárati időn túl! 2. SZÜKSÉGES, DE A KITBEN NEM SZÁLLÍTOTT ANYAGOK ÉS REAGENSEK 2.1. Injekció tisztaságú víz (bidesztillált víz). Ioncserélt víz használata zavarhatja az eljárást Állítható mikropipetták Tiszta üveg, vagy műanyag edények a mosópuffer és a minták hígítására Mikroplatek mosására alkalmas mosó (vagyis többcsatornás pipetta, vagy ELISA mosó) Inkubátor, 37 C Lemezleolvasó 450 és nmes szűrőkkel. 3. A REAGENSEK ELŐKÉSZÍTÉSE Az eljárás megkezdése előtt az összes reagenst szobahőmérsékletűre kell hozni. Számoljuk ki a szükséges lyukakat Mikroplate A szükséges csíkok eltávolítása után a maradékot szorosan zárjuk vissza az alumínium zacskóba, a szárítószerrel együtt. A tárolást és stabilitást ld. 1. pont alatt Mosópuffer Keverjünk össze egy térfogategység mosópuffer koncentrátumot 360VPU/

8 (10x) kilenc térfogategység bidesztillált vízzel (pl. 50 ml mosópuffer koncentrátumot 450 ml vízzel). 10 ml hígított mosópuffer szükséges 8 lyukhoz. A mosópuffer koncentrátumban esetlegesen jelenlevő kristályok max. 37 Cra történő melegítéssel és/vagy szobahőmérsékleten történő keveréssel oldhatók fel. A specifikus reagenseket (mikroplate, kontrollok, kalibrátor, konjugátum) ne keverjük a különböző gyártási számú kiteknél. Ezzel szemben, a mintahígító, a mosópuffer, a TMBszubsztrát és a leállító reagens általában felcserélhető az összes Chlamydiaés Mycoplasma ELISA medac kitben. Más gyártók reagensei nem használhatók. Érvényes és reprodukálható eredmények csak az eljárás pontos követése esetén nyerhetők. 4. MINTÁK 4.1. A kit szérum minták vizsgálatára alkalmas A szérumok előkezelése (pl. inaktiválás) nem szükséges. Azonban, a minták ne legyenek baktériumokkal szennyezettek és ne tartalmazzanak vörösvérsejteket A szérumokat 1:100 arányban hígítani kell mintahígítóval. 5.A. AZ ELJÁRÁS MENETE 5.1. Vágjuk el az alumínium zacskót a simítózár felett és vegyük ki a szükséges számú csíkokat (ld pont). 6 A csíkok felhasználásra készek, előmosás nem szükséges Pipettázzunk 50 µl mintahígítót az A1 lyukba, ez lesz a háttér (ld. 6.A.). Adjunk a következő lyukba 50 µl negatív kontrollt, az azt követő lyukba 50 µl pozitív kontrollt, az utána következő lyukakba pedig egyenként 50 µl szérummintát egyszeres meghatározáshoz és az 50 µl kalibrátort két párhuzamosban. Ha szükséges, a csíkokat nedves kamrában tarthatjuk 30 percig szobahőmérsékleten a feldolgozás előtt Inkubáljuk a csíkokat 60 percig (± 5 perc) 37 Con (± 1 C) nedves kamrában, vagy a fedőfóliával lezárva Az inkubáció után mossuk a lyukakat háromszor, lyukanként 200 µl hígított mosópufferrel. Ügyeljünk arra, hogy az összes lyuk tele 360VPU/170105

9 legyen. Mosás után óvatosan csapkodjuk a lemezt szűrőpapírra. Ne engedjük a lyukakat kiszáradni! Azonnal dolgozzuk fel! 5.5. Adjunk konjugátumot (zöld színű) minden lyukba. 50 µl konjugátumot pipettázzunk a lyukakba, ha manuálisan végezzük a vizsgálatot. Kérjük figyeljen: Ha automata készülékkel dolgozunk, 60 µl konjugátumot pipettázzunk minden lyukba, a készülék inkubációs kamrájában előforduló nagyobb párolgás miatt. A teszt automatán való alkalmazhatóságát a kiértékelés során megerősítették. Mindazonáltal javasoljuk, hogy a laborban működő automatával való kompatibilitást ellenőrizzük Inkubáljuk a csíkokat ismét 60 percig (± 5 perc) 37 Con (± 1 C) nedves kamrában, vagy a fedőfóliával lezárva Az inkubáció után ismét mossuk a lyukakat (ld pont) Adjunk 50 µl TMB szubsztrátot minden lyukba és inkubáljuk sötétben 30 percig (± 2 perc) 37 Con (± 1 C) nedves kamrában, vagy fedőfóliával lezárva. A pozitív minták kék színűek lesznek Állítsuk le a reakciót 100 µl leállító oldattal minden lyukban. A pozitív minták sárgák lesznek. Leolvasás előtt tisztítsuk meg a lemezek alját és győződjünk meg, hogy nincsenek légbuborékok a lyukakban. A leolvasást a leállító reagens hozzáadása után 15 percen belül el kell végezni! 360VPU/

10 5.B. AZ ELJÁRÁS MENETE TÁBLÁZATOSAN Háttér (A1) Negatív kontroll Mintahígító 50 µl Negatív kontroll 50 µl Pozitív kontroll Kalibrátor Minta Pozitív kontroll 50 µl Kalibrátor Minta 50 µl 50 µl Inkubálás 60 percig 37 Con, mosás háromszor 200 µl mosópufferrel. Konjugátum 50/60 µl*) 50/60 µl*) 50/60 µl*) 50/60 µl*) 50/60 µl*) Inkubálás 60 percig 37 Con, mosás háromszor 200 µl mosópufferrel. TMBszubsztrát 50 µl 50 µl 50 µl 50 µl 50 µl Inkubálás 30 percig 37 Con, sötétben Leállító oldat 100 µl 100 µl 100 µl 100 µl 100 µl Leolvasás fotométerrel 450 nmen ( nm referencia hullámhossz) *) manuális/automata eljárás (ld. 5.5.) 6.A. AZ EREDMÉNYEK SZÁMOLÁSA (VALIDITÁS) A kiértékelés tetszőleges értékek használatával történik (AU). Mérjük meg az OD értékeket 450 nmen ( nm referencia hullámhossz). A háttér (A1) OD értéket minden mért ODből vonjuk ki. A gyártási tételre specifikus adatok A kitben található gyártási tételspecifikus adatlap az alábbi információkat tartalmazza: Gyártási tételspecifikus kalibrációs görbe Görbe paraméterek: a és b A kalibrátor névleges OD értéke A kalibrátor alsó OD értékhatára A pozitív kontroll névleges koncentráció tartománya (AU/ml) 8 360VPU/170105

11 Validitási kritériumok A háttér OD értéke kisebb legyen, mint 0,100. A negatív kontroll OD értéke kisebb legyen, mint 0,100. A pozitív kontroll egység értéke a gyártási tételspecifikus adatlapon megadott névleges tartományon belül legyen. A kalibrátor átlag OD értéke a gyártási tételspecifikus adatlapon megadott alsó OD érték felett legyen. Ismételjük meg a vizsgálatot, ha az eredmények nem felelnek meg a specifikációnak! Az eredmények korrekciója A pozitív kontroll és a minták mért OD értékeit korrigálni kell az alábbiak szerint: Kalibrátor névleges OD értéke OD korr = x OD mért Kalibrátor mért OD értéke Az eredmények mennyiségi értékelése A korrigált OD értéknek megfelelő koncentrációk AU/mlben leolvashatóak a gyártási tétel specifikus kalibrációs görbéről (ld. gyártási tétel specifikus lap). Alternatívaként, a koncentráció az alábbi képlettel számolható: a Koncentráció [AU/ml] = b/ 1 OD korr A legtöbb új ELISA leolvasónál lehetséges a képlet programozása, így lehetővé válik az automatikus adatfeldolgozás. A mérési tartomány AU/mlig terjed. A tartomány alá eső mintákat < 9 AU/mlnek, a felettieket > 125 AU/mlnak értelmezzük. Ezeket az értékeket nem szabad extrapolálni. A cutoff 10 AU/ml. Szürke zóna = 9 11 AU/ml. 360VPU/

12 6.B. AZ EREDMÉNYEK ÉRTELMEZÉSE/A MÓDSZER KORLÁTAI A szürke zóna alá eső egységértékű mintákat NEGATÍVnak tekintjük. A szürke zónába eső egységértékű minták KÉTESnek tekintendők. Ezeket a mintákat újra kell vizsgálni 14 nappal később friss mintával együtt, a titer változás meghatározása érdekében. A szürke zóna fölé eső egységértékű mintákat POZITÍVnak tekintjük. Az eredményeket mindig a klinikai adatokkal és további diagnosztikus paraméterekkel összhangban kell értelmezni. A szérumban a hemoglobin nagy koncentrációja nem befolyásolja az eredményeket. Azonban, nagy koncentrációjú lipidek befolyásolhatják az eredményeket. Heterofil antitestekkel a keresztreakció egyéni esetekben nem zárható ki VPU/170105

13 6.C. SPECIFIKUS IgM/IgA/IgGINTERPRETÁCIÓ Lehetséges eredmény IgM IgA IgG Értelmezés + 1. Korai szakaszú fertőzés, vagy egyedüli, perzisztáló IgM. Vizsgáljuk újra az IgM, IgA és IgGt 14 nap múlva. 1, Korai szakaszú fertőzés, vagy egyedüli, perzisztáló IgA. Vizsgáljuk újra az IgA és IgGt 14 nap múlva Akut fertőzés. 1,2 Vizsgáljuk újra az IgGt 14 nap múlva Akut fertőzés Akut fertőzés Jelenlegi elsődleges fertőzés, vagy újrafertőződés Régmúlt fertőzés. Klinikai gyanú esetén vizsgáljuk újra az IgA és IgGt 14 nap múlva. 8. Nincs szerológiai jele a jelenlegi vagy régi fertőzésnek. Klinikai gyanú esetén vizsgáljuk újra az IgM, IgA és IgGt 14 nap múlva. Megjegyzés: Határérték eredmények kezdődő, vagy mérsékelt fertőzést jelentenek. Újra vizsgálat 14 nap múlva javasolt. 1 Jelenlegi akut fertőzés legjobban az IgM és IgA antitestek párhuzamos meghatározásával mutatható ki. 2 Az IgM és IgA antitestek szimultán kimutatása különösen gyerekekben gyakori. 3 Felnőttekben az IgA a jelenlegi fertőzés megbízhatóbb markere, mint az IgM. 360VPU/

14 7. A KIT TELJESÍTŐKÉPESSÉGE Az alábbi teljesítőképességi adatokat határoztuk meg a diagnosztikus kiértékelés során. 7.A. ÉRZÉKENYSÉG ÉS FAJLAGOSSÁG Paciens csoport Fajlagosság IgG M. pneumoniae IgG negatív szérumok (referenciaelisa/aggl. módszer) 80% (n=40) Paciens csoport Érzékenység IgG M. pneumoniae elleni IgG antitest tartalmú szérumok (referencia ELISA/Aggl. módszer) Betegek légúti fertőzéssel 84% (n=45) 7.B. PONTOSSÁG Minta Assayn belüli variáció Minta Assayk közötti variáció átlag SD CV (%) n átlag SD CV (%) n AU AU PC 22,1 2, PC 23,2 1, N 1 15,9 0, N 4 33,7 1, N N 5 68,7 3, N 3 88,3 4, N , PC = pozitív kontroll VPU/170105

15 ÁLTALÁNOS KEZELÉSI TANÁCSOK A kereszt szennyeződések elkerülése érdekében ne cseréljük fel az edényeket és a kupakokat. A reagenseket használat után azonnal zárjuk le, a párolgás és a mikrobiológiai szennyeződés elkerülése érdekében. Használat után a reagenseket előírás szerint kell tárolni az eltarthatóság garantálása érdekében. Használat után az összes komponenst az eredeti edényében tároljuk, a más gyártási számú, illetve más gyártók reagenseivel történő keveredés elkerülése érdekében (ld. 3. pont). EGÉSZSÉGI ÉS BIZTONSÁGI INFORMÁCIÓK Vegyük figyelembe a helyi biztonsági és egészségügyi előírásokat. Az emberi eredetű reagenseket megvizsgálták és negatívnak találták HBsAgre, antihiv1/2re és antihcvre. Ennek ellenére, ezeket az anyagokat, illetve az állati eredetű reagenseket potenciálisan fertőzőnek kell tekinteni és minden szükséges előírást be kell tartani. MEGSEMMISÍTÉSI SZEMPONTOK A vegyi anyagok és preparátumok maradékai általánosságban veszélyes hulladéknak tekintendők. Az ilyen hulladékok megsemmisítése a nemzetközi és a helyi törvények és előírások szerint szabályozottak. Vegyük fel a kapcsolatot a helyi hatóságokkal, illetve hulladékkezelő cégekkel, melyek segítséget tudnak nyújtani a veszélyes hulladékok megsemmisítésében. Kibocsátás dátuma: VPU/

16 IRODALOM Clyde, WA: Clinical overview of typical Mycoplasma pneumoniae infections. Clin Infect Dis 17 (Suppl 1), S326 (1993). Dionisio D, Valassina M, Uberti M, Fabbri C, Parri F, Saffi EG: Mycoplasma pneumoniae nonpulmonary infection presenting with pharyngitis, polyarthritis and localized exanthem. Scand J Infect Dis 33, (2001). Döller G, Döller PC, Jacobs E, Schuy W: Zur Differentialdiagnostik von Infektionen des Respirationstrakts. Diagnose & Labor 43, 2133 (1993). Drasbek M, Nielsen PK, Persson K, Birkelund S, Christiansen G: Immune response to Mycoplasma pneumoniae P1 and P116 in patients with atypical pneumonia analyzed by ELISA. BMC Microbiol. 4, 7ff. (2004). Ferwerda A, Moll HA, de Groot R: Respiratory tract infections by Mycoplasma pneumoniae in children: a review of diagnostic and therapeutic measures. Eur J Pediatr 160, (2001). Granstrom M, Holme T, Sjogren AM, Ortqvist A, Kalin M: The role of IgA determination by ELISA in the early serodiagnosis of Mycoplasma pneumoniae infection, in relation to IgG and mucapture IgM methods. Med Microbiol. 40, (1994). Hammerschlag MR: Mycoplasma pneumoniae infections. Curr Opin Infect Dis 14, (2001). Jacobs E: Das Adhäsin von Mycoplasma pneumoniae: Seine Bedeutung als Virulenzfaktor in der Pathogenese und in der Diagnostik. Klin Lab 40, (1994). Kleemola M, Käyhty H: Increase in titers of antibodies to Mycoplasma pneumoniae in patients with purulent meningitis. J Infect Dis 146, (1982). Krause D: Mycoplasma pneumoniae cytadherence: organization and assembly of the attachment organelle. Trends Microbiol 6, 1518 (1998). Seggev JS, Semak GV, Kurup VP: Isotypespecific antibody responses to acute Mycoplasma pneumoniae infection. Ann Allergy Asthma Immunol. 77, 6673 (1996). Sillis M: The limitations of IgM assays in the serological diagnosis of Mycoplasma pneumoniae infections. Med Microbiol. 33, 2538 (1990). Sotgiu S, Pugliatti M, Rosati G, Deiana GA, Sechi GP: Neurological disorders associated with Mycoplasma pneumoniae infection. Eur J Neurol 10, (2003) VPU/170105