POTENCIÁLISAN FARMAKOLÓGIAILAG AKTÍV O-HETEROCIKLUSOK SZINTÉZISE. Doktori (Ph.D.) értekezés GULÁCSI KATALIN

Átírás

1 PTENCIÁLISAN FARMAKLÓGIAILAG AKTÍV -ETERCIKLUSK SZINTÉZISE Doktori (Ph.D.) értekezés GULÁCSI KATALIN Debreceni Egyetem Debrecen, 2004

2 Ezen értekezést a Debreceni Egyetem TTK Kémia Doktori iskola Természetes eredetű heterociklusos vegyületek című K/6 programja keretében készítettem a Debreceni Egyetem TTK doktori (PhD) fokozatának elnyerése céljából. Debrecen, 2004.március.02. Gulácsi Katalin jelölt Tanúsítom, hogy Gulácsi Katalin doktorjelölt között a fent megnevezett Doktori Iskola K/6 programjának keretében irányításommal végezte munkáját. Az értekezésben foglalt eredményekhez a jelölt önálló alkotó tevékenységével meghatározóan hozzájárult. Az értekezés elfogadását javasolom. Debrecen, 2004.március.02. Dr. Antus Sándor tszv. egyetemi tanár témavezető

3 Köszönetemet szeretném kifejezni Dr. Antus Sándor tanszékvezető egyetemi tanárnak amiért megtisztelt bizalmával és lehetővé tette, hogy a szerves kémiai tanszéken dolgozhassak, valamint segítségéért és támogatásáért mindennapi munkámban és dolgozatom megírásában. Köszönettel tartozom Dr. Litkei György nyugalmazott egyetemi tanárnak türelméért amellyel munkámat irányította és segítségéért dolgozatom megírásában. Köszönet jár kollegámnak, Dr. Juhász László egyetemi tanársegédnek a szakmai és technikai segítségért. A spektroszkópiai mérésekért megköszönöm Dr. Szilágyi László, Dr. Kövér Katalin, Balla Sára, Dr. Dinya Zoltán és Tréfás Györgyné segítségét. Köszönetet mondok minden kedves kollegámnak aki közvetlen vagy közvetett módon segítségemre volt és támogatott munkámban: Ferenczi Renáta, Kerti Gábor, Kenéz Ágnes, Magyar Lászlóné, Kurtán Tibor, Kónya Krisztina, Rimán Éva. Végül, de nem utolsó sorban, szeretném megköszönni családomnak a sok türelmet, amivel az utóbbi időben támogattak és segítettek munkám végzésében.

4 1. BEVEZETÉS FLAVNIDK ÉS JELENTŐSÉGÜK KÍSÉRLETI MUNKÁM IRDALMI ELŐZMÉNYEI FLAVNK SZINTÉZISE PTERKARPÁNK SZINTÉZISE SAJÁT KÍSÉRLETI MUNKÁM IDRXIKALKNK XIDATÍV GYŰRŰZÁRÁSA IPERVALENS JÓD REAGENS SEGÍTSÉGÉVEL PRENILEZETT 2 -IDRXIKALKNK GYŰRŰZÁRÁSA PIDA ALKALMAZÁSÁVAL (-)-CABENEGRIN A-I TELJES SZINTÉZISE (-)-CABENEGRIN A-I ANALGNK SZINTÉZISE Rezorcin alapvázú analogonok szintézise Kromán alapvázú analogonok szintézise FARMAKLÓGIAI VIZSGÁLATK EREDMÉNYEI KÍSÉRLETI RÉSZ ÖSSZEFGLALÁS...93 SUMMARY IRDALM FÜGGELÉK

5 1. Bevezetés 1.1. Flavonoidok és jelentőségük A flavonoidok az -heterociklusos természetes anyagok igen elterjedt csoportját alkotják és meghatározó szerepük van a növények csodálatos színvilágának kialakításában. Mindemellett a növényi eredetű táplálékainkkal szervezetünkbe kerülve sokrétű biológiai hatásuk révén fontos szerepet töltenek be az egészségünk megőrzésében. Flavonoid névvel általában a C 6 -C 3 -C 6 szénvázú (difenilpropánváz) vegyületeket illetjük, melyek nagy számuk és változatos szerkezetük miatt, célszerűségi szempontból különböző módon csoportosíthatók. Doktori munkám során természetes eredetű flavonok és pterokarpánok szintézisével foglalkoztam, ezért a továbbiakban röviden csak e vegyületcsaládok természetbeni előfordulásával, bioszintézisével és szintézisirodalmuk rövid áttekintésével foglalkozom. A flavon (3) formálisan az 1,3-difenilpropán (1) oxidációs termékének tekinthető. E folyamat közbenső terméke a kalkon (2), melynek oxidatív átrendeződésével az 1,2-difenilpropánból (4) is levezethető izoflavon (5) keletkezik. 5' 6' 4' 3' ' 2' ' 2 α 2 2' 5 5' ' β a a

6 Az izoflavonnál alacsonyabb oxidációs állapotú vegyület a pterokarpán (6), melynek előállítása a megfelelő szubsztitúciójú kalkonból kiindulva a szekvencia szerint megvalósítható. A neoflavonoidok (8) az 1,1-difenilpropán (7) származékai és oxidációs állapotukat tekintve a flavonokkal (3) és izoflavonokkal (5) sorolhatók egy csoportba. Mindhárom természetes anyagcsaládra jellemző a polihidroxiszubsztitúció; ugyanakkor jelentősek a prenil- (3,3-dimetilallil), valamint ezek gyűrűzáródása révén keletkező 2,2-dimetil-2-piránszármazékok is. A flavonoidok számos képviselője antifungális, antibakteriális, tumorellenes, antioxidáns valamint gyulladásgátló aktivitású és így a különféle enzimrendszerekre gyakorolt hatásuk révén fontos szerepet töltenek be az élővilág molekuláris szintű működésének szabályozásában. A természet színpompája mint ismeretes nemcsak a szem gyönyörködtetésére szolgál, hanem kémiai jelzőrendszere révén fontos szerepet tölt be a rovarok, madarak és növényevő állatok életében, különös tekintettel a beporzásra ami a növények fennmaradásának feltétele. A növények és virágok színét elsősorban az antocianidinek és glikozidjaik, az antocianinok idézik elő, melyek szerkezetüket tekintve a flavonok (3) oxidált származékainak tekinthetők. Fiziológiai kísérletek azt is kimutatták, hogy a flavonoidok, beleértve az antocianinokat is, hatékony védelmet nyújtanak az UVsugárzás sejtkárosító hatása ellen. 1-6 A flavonoidoknak és rokon vegyületeiknek, a polifenoloknak, megkérdőjelezhetetlen szerepük van a növények különböző mikroorganizmusokkal szembeni védelmében is. Egyértelműen bizonyított, hogy bioszintézisük a mikrobiális támadás érzékelésekor fokozódik, azaz a növény így védekezik a külső fertőzéssel szemben. 7-8 Az ilyen típusú növényi anyagokat fitoalexineknek nevezzük, melyek egyik nagy csoportját a pterokarpánok képezik. A (+)-maackiain (9) e vegyületcsalád jellegzetes és hatékony gombaellenes képviselője, a hüvelyes fák gesztjében és zöldségfélékben (zöldborsó, csicseriborsó) található, valamint számos fitoalexin prekurzora. 9 (+)-maackiain (9) 2

7 Egyre több közlemény számol be a flavonoidok antibakteriális és antivirális hatásáról. Így pl. a likokalkon-c (10) ellenhatásosnak bizonyult Staphylococcus aureus esetében, 10 míg az 2,5,6,7,-tetrahidroxi-8-lavandulil-4 -metoxi-6- prenilflavanon (11) teljesen gátolja ennek a kifejlődését. 11 Me Me likokalkon-c (10) 11 A flavonoidok antivirális hatását kismértékű toxicitásuk miatt legjobban talán korunk egyik rákfenéje, az AIDS ellen lehetne kiaknázni. Az eddigi kutatások bizonyítják számos képviselőjüknek, például a baikalinnek (12) és a kvercetinnek (13) figyelemreméltó ÍV-ellenes hatását. 12,13 baikalin (12) kvercetin (13) (baikalein-7-β D-glukuronid) Még nem teljesen tisztázott, hogy a flavonoidok milyen szerkezeti elemei tehetők felelőssé a ÍV-ellenes aktivitásért, továbbá hatásmechanizmusok részletei sem ismertek. Az eddigi vizsgálatok alapján úgy tűnik a gátlás a vírus életciklusának egyik korai szakaszában lép fel. 14 Az elmúlt évtizedekben egyre több közlemény foglalkozik a flavonoidok antioxidáns, gyulladásgátló és tumorellenes hatásával. A táplálékkal felvett antioxidánsok szerepe a szervezetünkben a C-vitamin felfedezésével vált ismertté (Szent-Györgyi, 1933). Míg elődeink tudatlanul, de helyesen védekeztek a skorbut ellen, Szent-Györgyi és munkatársai bebizonyították hogy a C-vitamin mellett más növényi eredetű anyagok is szükségesek a hatás kifejtésében. 15 Ezek a segédanyagok flavonoidoknak bizonyultak; a B-gyűrűjűk o-hidroxicsoportjai tehetők elsősorban 3

8 felelőssé az antioxidáns hatásért ugyanis, elektrontranszfer kézségük kiegészíti a C- vitaminét. R A C B - Ar B - e e Ar B Ar Ismeretes, hogy a fenolszármazékokat gyakran használják konzerválószerként, mert megakadályozzák a lipidek autoperoxidációját és növelik az élelmiszerek eltarthatóságát. A flavonoidok és a C-vitamin ezeknek regenerálódását segítik elő, ugyanis jelenlétükben a fenol koncentrációja nem változik. E-vitamin esetében például az alábbi antioxidációs mechanizmus képzelhető el: arachidonsav arachidonil gyök Me Me Me Me Me Me Me 3 Me Me Me 3 α-tokoferol (E-vitamin) α-tokoferil gyök C 2 C 2 C-vitamin gyök L-aszkorbát Először az E-vitamin semlegesíti a lipid peroxidgyököt, majd az adalék antioxidáns (C-vitamin vagy flavonoid) az α-tokoferilgyök közömbösítésében játszik fontos szerepet. Általánosan elfogadott, hogy a flavonoidok in vivo körülmények között is a szuperoxidion (.- 2 ), hidroxil- ( ) és hidroperoxil ( ) gyökök valamint a szinglet oxigén ( 1 2 ) hatékony elnyelői. Kutatások bizonyítják, hogy az 1,3-4

9 difenilpropanoidszármazékok körében a 4-oxo, a C-2 és C-3 közötti kettős kötés 16 és az o-dihidroxicsoport jelenléte 17 meghatározó szerepet játszik. Az édesgyökérből (Glycyrrhiza glabra) izolálható likokalkon-a (14) és B (15) antioxidáns hatása az E-vitaminéhoz hasonló, míg a glabrén (16) háromszor aktívabb. 18 Me Me likokalkon A (14) likokalkon B (15) glabrén (16) Antioxidáns flavonoidok fellelhetők a legtöbb növényi eredetű élelmiszerben. Megtalálhatók különféle gyümölcsökben, zöldségekben, teában, borban, stb. Jótékony hatásukra a francia paradoxon néven közismertté vált jelenség hívta fel a figyelmet. Franciaország egyes vidékein ugyanis a zsíros étrend ellenére, ritkább a szívkoszorúér-megbetegedés mint Európa más országaiban. Ezt az ellentmondást, tudományosan elvégzett statisztikai felmérések alapján, a lakosság rendszeres vörösbor fogyasztásával értelmezték. Mivel az elmúlt negyed évszázadban ismertté vált hogy a flavonoidok meghatározó szerepet játszanak mind a növények életében, mint pedig az egészségünk megőrzésében, ezért e területen folyó kutatások újra reneszánszukat élik. Izolálásuk, azonosításuk és szintézisük mellett egyre inkább hangsúlyt kapott a hatás-szerkezet közötti kapcsolatok keresése is. Mindezeket alapul véve doktori munkám témája a potenciálisan aktív, prenilezett flavonok és pterokarpánok, valamint analogonjainak előállítása és hatás-szerkezet összefüggéseket is feltáró farmakológiai vizsgálatára irányult. 5

10 1.2. A flavonoidok bioszintézise A flavonoidok bioszintézisének óriási irodalma van. Számos könyvet (ahlbrook és Grisebach, 1975; Ebel és ahlbrook, 1982; eller és Forkman, 1988) és monográfiát (alborne, 1988; Zaprometov, 1989; Stafford, 1990) közöltek e területen az elmúlt 30 évben. Ebben a fejezetben, a teljesség igénye nélkül, a flavon-(3), izoflavon-(5) és pterokarpánszármazékok (6) bioszintézisének legfontosabb lépéseit ismertetem A 5 5' 6' 4' 1 B ' C 2 2' A C 2' A B 3 6 6a ' 5 11a B 1 6' 4' C 5' 11 7 D A flavonoidváz B-gyűrűje a megfelelő hidroxifahéjsav koenzim-a-észterből (4- kumaroil-co-a, 17), míg az A-gyűrű három acetátegységből malonil-koenzim-a-n keresztül épül fel 19,20 (1.ábra). 6

11 Szénhidrátok Shikiminsav Fenilalanin PAL C Acetil-CoA KE CoAS 17 Malonil-CoA CS CS P KR 4' 2' 6' CI CI FS IFS ID IF IFR 24 (S) P6a (R) PTS (R) Ö ' 3' 4' 5' 1. ábra: Flavonoidok bioszintézise 7

12 PAL fenilalanin-ammónia-liáz FS flavon-szintáz C cinnamát-4-hidroxiláz IF izoflavon-szintáz KE karboxiláz ID dehidratáz CS kalkon-4-szintáz IF izoflavanon-2 -hidroxiláz PKR poliketid-reduktáz IFR izoflavanon-reduktáz CI kalkon-izomeráz PTS pterokarpán-szintáz A malonil-koenzim-a az acetil-koenzim-a-ból és szén-dioxidból, acetil-coakarboxiláz enzim (KE) katalitikus hatására képződik. A 4-kumaroil-CoA (17) kialakulása szénhidrátokból shikiminsavon keresztül játszódik le. A kulcsreakció az ebből keletkező fenilalanin dezaminálása fahéjsavvá, amit a fenilanilin-ammónialiáz (PAL) enzim katalizál. Az így kialakuló fahéjsavat végül a cinnamát-4- hidroxiláz enzim (C) hidroxilezi, 4-kumaroil-CoA-vá (17, C 6 -C 3 egység). A flavonoidalapváz (C 6 -C 3 -C 6 ) a kalkon-4-szintáz (CS) enzim segítségével malonil-coa-ból és 4-kumaroil-CoA-ból (17) keletkezik és a körülményektől függően ez lehet 2,4,4,6 -tetrahidroxikalkon (18) vagy a 6 -dezoxiszármazéka (19). Ez a két kalkon tekinthető valamennyi flavonoidszármazék prekurzorának. E kalkonok sztereospecifikus gyűrűzáródása a kalkon-izomeráz (CI) enzim hatására következik be és a (2S)-flavanonszármazékok (20,22) keletkeznek, melyek megfelelő enzimkatalízissel flavonokká (21), izoflavanonokká (25), izoflavonokká (24) illetve pterokarpánokká (26,27) alakulnak tovább. A flavon-szintáz (FS) enzimek katalizálják a flavanon (20) flavon(21) átalakulást. 21 A 4,7-dihidroxiflavanonból (22) izoflavon-szintáz (IFS) enzim hatására arilvándorlást követő hidroxilezés után, 2-hidroxiizoflavanon (23) képződik, amelyet dehidratáz enzim (ID) a megfelelő izoflavonná (24) alakít át. 22,23 A pterokarpán szerkezet kialakulásának kulcslépése az izoflavon (24) B- gyűrűjének 2 helyzetbe való hidroxilezése. 24 Ezt az izoflavanon 2 -hidroxiláz (IF) enzim katalizálja. A következő lépés az izoflavanon-reduktáz (IFR) enzim hatására lejátszódó sztereospecifikus redukció, melynek során a kialakuló kiralitás centrum abszolút konfigurációja egyben meghatározza a pterokarpán sztereokémiáját is. 25 Végül a pterokarpán-szintáz (PTS) enzim katalizálja az izoflavanon (25) átalakulását a 3,9-dihidroxipterokarpánná (26), ez pedig glicinollá (27) alakul pterokarpán 6ahidroxiláz enzim (P6a) hatására. A flavonoidok változatos szubsztitúciós származékai (hidroxil, metil, prenil, glikozil, acil, stb.) másodlagos enzimatikus folyamatokban alakul ki (2. ábra). A metilezés vagy prenilezés módosítja az izoflavonok és pterokarpánok lipofilicitását 8

13 és ezáltal a mikrobák ellen kifejtett hatásukat. Ezek a részlépések a bioszintézis késői szakaszaiban játszódnak le. A (+)-maackiain (9) több lépésben a glicinolból (27) képződik, majd enzimatikus metilezés hatására a megfelelő metilszármazékká, (+)-pisatinná (28) alakul (2.ábra). A glicinol (27) a növények számára igen fontos fitoalexineknek (gliceollidin I, II; gliceollin I, II) is a prekurzora, melyek pterokarpán-preniltranszferáz illetve prenilpterokarpán-cikláz enzimek hatására képződnek ' IFR PTS (S) P6a P3M C 3 (+)-maackiain (9) (+)-pisatin (28) P4CP 4PPC I 27 glyceollidin I glyceollin I P2CP 2PPC I glyceollidin II glyceollin II 12' izoflavon 2'-hidroxiláz P2CP pterokarpán 2-C-preniltranszferáz P6a pterokarpán 6a-hidroxiláz 4PPC I 4-prenilpterokarpán cikláz P3M pterokarpán 3--metiltranszferáz 2PPC I 2-prenilpterokarpán cikláz P4CP pterokarpán 4-C-preniltranszferáz 2. ábra: Másodlagos folyamatok a pterokarpánok bioszintézisében 9

14 2. Kísérleti munkám irodalmi előzményei 2.1. Flavonok szintézise Jóllehet egyszerű kiindulási anyagokból elméletileg számos lehetőség van a C 6 - C 3 -C 6 flavonoid váz kialakítására, 26 ezek közül leginkább kettő terjedt el a laboratóriumi gyakorlatban: a.) A bioszintetikus útnak megfelelően fenolok (C 6 egység) acilezése fahéjsavszármazékokkal (C 6 -C 3 egység) b.) A C 6 -C 2 egység kondenzációja a C 6 -C 1 egységgel C C C C C C a. b. A C C C B Mindkét esetben első lépésben nyílt láncú intermedierek képződnek, melyek megfelelő reagensek segítségével gyűrűzárással flavonokká alakíthatók. Az a.) módszer kevésbé terjedt el a gyakorlatban., mivel a szubsztituált fenoloknak fahéjsavszármazékokkal végzett Friedel-Crafts reakciója általában alacsony hozammal vezet a kalkonokhoz, amelyekből a flavon, illetve a flavanonok nyerhetők. A rezorcin (29) és fahéjsav (30) reakciója polifoszforsav jelenlétében egyik legegyszerűbb példa az a.) módszerre. Talapatra és munkatársai 27 a reakciókörülmények optimalizálásával elfogadható hozammal (62%) állították elő 7- hidroxiflavanont (31) ezen az úton Rezorcin-monometil-éterből (32) és fahéjsavból (30) azonban a 2 -hidroxi-4 - metoxikalkon (33) és 2 -metoxi-4 -hidroxikalkon (34) kromatográfiásan elválasztható keverékét kapták, igen alacsony hozammal (12%). 10

15 Me Me Me Ichino és munkatársai 28 természetes eredetű kalkonszármazékok (37a, 38) alacsony hozamú szintézisét valósították meg ezzel a módszerrel alumínium-klorid jelenlétében. Gyűrűzáródást e reakciókörülmények között azonban nem tapasztaltak és 3,4,5-trimetoxifenolból (35a) és fahéjsav-kloridból (36), az alábbi séma szerint a helilandin B-t (37a) illetve fazanont (38) kapták meg. Me Me Me Me AlCl 3 Me Me Cl PhN 2 sz.hõ 35a 36 37a Br DMF K 2 C 3 Me Me Me Me Me 36 Me Me BCl 3 Me ipr AlCl 3 PhN 2 ipr C 2 Cl 2-70 o C 35b 37b 38 A b.) módszer bemutatására az alábbi eljárások szolgálnak: 1. 2-hidroxiacetofenonok (39) és aromás aldehidek (40) kondenzációja lúgos közegben 2 -hidroxikalkonok (41) képződéséhez vezet, amelyek a közeg pjától függően a megfelelő flavanonokkal (42) vannak egyensúlyban; flavonokká történő átalakításuk (42 43) oxidatív körülményeket igényel. 11

16 R' R + R' R R' R R' ox. R 2. 2-hidroxiacetofenonok (39) -acilezése aromás savkloridokkal (44) a megfelelő észterekhez (45) vezet, melyek lúgos közegben Baker-Venkatamaran átrendeződéssel 1,3-diketonokká (46), majd ezt követőn savas gyűrűzáródással flavonokká (43) alakíthatók R' 44 Cl R C R' R R' A flavonok előállítása a 2 -hidroxikalkonok oxidatív gyűrűzárásával illetve az intermedier flavanonok dehidrogénezésével valósítható meg. Erre számos módszer ismeretes az irodalomban. Farkas és munkatársai 30 a hidroxikalkonból kiindulva dibrómkalkonon (49) keresztül metanolos forralással és termikus gyűrűzárással ( ) jutottak a megfelelő flavonszármazékhoz (PhC 2 = Bn). 12

17 Me Me Bn Me Me Br Bn Br 2 CaC 3 Me Me Br Me Me Me Bn Me Me Me Bn Me Br Amerikai kutatók polihidroxiflavanonok peracetilszármazékaiból (51a-c) peroxidok jelenlétében végzett gyökös brómozását követő lúgos kezeléssel flavanonok előállítását oldották meg. A reakcióban a bróm a flavanon (51a-c) 3 helyzetű szénatomjára lép be, amelynek nemcsak eliminációja játszódik le lúg hatására, hanem az acetilvédőcsoportok is lehasadnak. Ezzel a módszerrel számos természetes eredetű flavont, mint pl. apigenint (52), diosmetint (53) és chrysoeriolt (54) állítottak elő. Ac A c 2 3 R 2 R mol NBS 2. / R 2 R 1 R 1 R 2 51a Ac 51b Me Ac 51c Me Me 54 Me 51a-c Japán kutatók, 34 jó hozammal az A-gyűrűben fenilcsoportot tartalmazó kalkonokat (56a,b) alakítottak flavonná (58a,b) az 57a,b dibrómvegyületeken keresztül, a klasszikus brómozási módszert (Br 2 /CCl 4 ), majd lúgos-acetonos közegben végzett gyűrűzárást alkalmazva. A kalkonokat (56a,b) acilcsoportot tartalmazó hidroxibifenilekből (55a,b) és változatosan szubsztituált benzaldehidekből (40) állították elő a lúgos-kondenzációs módszerrel. 13

18 R 2 R 2 R 1 R 3 R 1 R 3 55a,b 40 56a,b R 1 3 R 20% K aceton R 2 R 2 R 1 Br Br Br 2 CCl 4 R 3 R 1 R 2 R 3 a Ph válb Ph tozó 58a,b 57a,b A 2-pirrolidon hidrotribromid [2-pirrolidon hidrogén-bromid bróm komplex, (C 4 7 N) 3 Br Br 2 (PT)] alkalmazásával japán kutatók 35 jó hozammal állítottak elő flavonokat. Flavanonból (59) kiindulva, különböző oldószerekben végezve a reakciót azt tapasztalták, hogy tetrahidrofuránban 3-brómflavanon (60) (cisz-és transz-izomerek, arányuk hőmérséklet függő, szobahőmérsékleten a transz-, míg forraláskor a cisz-izomer a főtermék), dimetilszulfoxidban pedig e vegyület (60) és flavon (3) keveréke képződött. A reakciót 80 C-on végezve kizárólag flavon (3) keletkezett. PT / TF sz. hõ v. PT / DMS sz.hõ 60 Br 59 PT / DMS 80 o C 3 Wagner és munkatársai 36 számos természetes eredetű flavon-glikozid (63,64) szintézisénél jód/jégecet reagenst használtak flavanonglikozidok (61,62) peracetilszármazékainak dehidrogénezésére. 14

19 R 2 R 2 R 1 1. I 2 / jégecet R 1 2. NaMe 61,62 63,64 R 1 R 2 61 naringenin-7-β-d-rutinozid rutinozil 63 apigenin-7-β-d-rutinozid 62 izosakuratenin-7-β-d-rutinozid rutinozil Me 64 akacetin-7-β-d-rutinozid A 2 -hidroxikalkonok oxidatív gyűrűzárása különböző reagensekkel valósítható meg, így például szelén-dioxiddal pentán-1-olban, palládium-szénen vákuumban, jóddal dimetilszulfoxidban (DMS) vagy jégecetben, 2,3-diklór-5,6-diciano-1,4- benzokinonnal (DDQ) dioxánban, nátrium-perjodáttal (NaI 4 ) DMS-ban. A szelén-dioxidos oxidációt főleg természetes eredetű flavonok szerkezetbizonyító-szintézisénél a megfelelő metil-éterek előállítására használták, mint például a xanthomicrol (69) esetében. 37 A p-benziloxibenzaldehid (66) és a megfelelő acetofenon (65) nátrium-hidrid és tetrahidrofurán jelenlétében az intermedier 67 kalkonná alakult, melyből szeléndioxiddal, pentán-1-olban oxidálva a 4'-benziloxi-5,6,7,8-tetrametoxiflavont (68) kapták meg. Ennek debenzilezése és szelektív demetilezése, közepes hozammal a xanthomicrolt (69) szolgáltatta. Me Me Me Me Bn Na TF Me Me Me Me Bn Se 2 / pentanol Me Me Bn Me 1. 2 / kat. Me Me 2. AlCl 3 / éter Me Me Meglehetősen sokoldalúan használható különböző vegyületek dehidrogénezéséhez a 2,3-diklór-5,6-diciáno-1,4-benzokinon (DDQ) is. Japán 15

20 kutatók sikerrel alkalmazták ezt a reagenst flavanonok flavonokká történő oxidációjára is. Jain és munkatársainak, 42 a természetes eredetű likoflavon-a (72) szintézise kapcsán, sikerült a módszert preniloldalláncot tartalmazó kalkonok (70) oxidatív gyűrűzárására is kiterjeszteni. A reakció (70 71) DDQ-val, benzolos oldatban, forralással, közepes hozammal játszódott le. Ezt követően az -prenilcsoportot vizes morfolinnal történő forralással távolították el. Említésre érdemes hogy e körülmények között a C-prenilcsoport ciklizációja az o-hidroxilcsoporttal nem játszódott le. Pren Pren Pren Pren DDQ C 6 6 / Morfolin 2, Pren = 72 Imafuku és munkatársai 43 behatóan tanulmányozták különböző 2 - hidroxikalkonok oxidatív gyűrűzárását DDQ jelenlétében. Érdekes módon benzolban nem tapasztaltak átalakulást, ugyanakkor dioxánban szubsztitúciótól függő ciklizációt észleltek. A 4 -helyzetben szubsztituenst nem tartalmazó kalkonok (74, R 1 = ) oxidációjakor flavonok (76, 32-42%) és auronok (77, 9-17%) keveréke keletkezett, míg 4 -metoxikalkonok (74, R 1 = Me) esetében flavanonok (75) és flavonok (76) képződtek és az auronokat (77) csak nyomokban (R 2,R 3,R 4 -változó, vagy Me; R 4 = Cl is) lehetett kimutatni. A B-gyűrű szubsztituensei csekély mértékben befolyásolták a gyűrűzáródást. 16

21 R 4 R 1 R 2 R 4 3 R DDQ dioxán R 1 R 2 3 R R R 4 R 2 3 R R 1 R 2 R 4 3 R Indiai kutatók 44 tapasztalata szerint a NaI 4 /DMS alkalmazása kiküszöböli a fenti módszerek hátrányait, azaz az alacsony hozamokat és a komplex keverékek képződését. A változatosan metoxicsoportokkal szubsztituált kalkonok (78) esetében o C-os hőmérsékleten, 50-60%-os hozammal a megfelelő flavonokat (79) kapták meg. R 2 R 1 R 4 DMS R 2 R 1 R 4 R 3 NaI 4 R Bose és munkatársai 45 2,4 -dihidroxikalkonok (80) palládium-szén jelenlétében, vákuumban, melegítéssel történő gyűrűzáródásáról és szimultán dehidrogénezéséről számoltak be (R 1 váltakozóan, ; R 2, R 3 váltakozóan,, Me): R 2 R 3 R 2 R 3 2 / Pd / C R 1 R A Baker-Venkatamaran-féle átrendeződést 46,47 széles körben alkalmazzák flavonok (84) előállítására. A reakció mechanizmusát már jó néhány évtizede 17

22 tisztázták A reakció első lépésében a 45 típusú észter a bázis (pl. porított K) hatására bekövetkező deprotonálódást (45 82) követően, intramolekuláris C acilvándorlással a megfelelő 1,3-diketonná alakul, melyből a 2-hidroxiflavanon intermedieren (83) keresztül a kívánt flavonszármazék (84) keletkezik. R CAr B R CAr R Ar Ar = C 2 R' R Ar R Ar R Ar E módszer felhasználásával magyar és japán kutatók szerkezetbizonyító módon számos természetes eredetű flavon szintézisét oldották meg. Újabban e módszer néhány figyelemreméltó módosítását is referálták az irodalomban. Jain és munkatársai 57 fázis-transzfer katalízist alkalmazva váltakozóan metil- és metoxicsoportokat tartalmazó 2-hidroxiacetofenonokat (85) különböző, metoxicsoportokkal szubsztituált aroilkloridokkal (86) reagáltatták benzolos oldatban n-tetrabutilammónium-hidrogén-szulfát (TBAS) és vizes lúg jelenlétében. A képződött o-hidroxidibenzoilmetán-származékokat (87) izolálás nélkül, p-toluolszulfonsavval a megfelelő flavonokká (88) ciklizálták. 18

23 R 2 R 3 R 1 R 4 Cl R 6 R 5 TBAS/ C 6 6 / 2 R 2 R 3 1 R R 4 C R 6 R R 2 1 R R 5 R 6 p-tsa R 2 1 R R 6 R 5 R 3 R 3 R 4 R R 1 - R 6 = váltakozóan, Me, Me Japán kutatók 58 megfigyelése szerint a 89 típusú diketonok vízmentes kationcserélő gyantával (Amberlyst 15), különböző oldószerekben (benzol, kloroform, acetonitril, izopropanol), jó hozammal (67-90 %) a megfelelő flavonná (90) alakíthatók. A legjobb termelést izopropanolban érték el. R 3 R 2 R 4 Amberlyst 15 R 2 R 4 R 1 R 3 i-pr, R R 1 - R 4 = váltakozóan, Me, Me Polihidroxiflavonok előállításánál a hidroxilcsoportok védése (pl. metil, benzil, prenil) majd a védőcsoport eltávolítása sokszor nehézségekbe ütközik. Ennek elkerülésére amerikai kutatók 59,60 a fenolos hidroxilcsoportok átmeneti védelmére a t-butildimetilszilil-, ill. bisz(trimetil)szililamid-védőcsoport használatát javasolták. Többek között a természetes eredetű apigenin (96), luteolin (97) és tricin (98) szintézisét valósították meg magas hozammal a megfelelő észterekből (91) és acetofenonokból (93) kiindulva. Az észter (91) hidroxilcsoportjait t- butildimetilszilil-kloriddal diizopropil-etil-amin jelenlétében, míg az acetofenont (93) lítium bisz(trimetil)szililamiddal védték. Ez utóbbi elég erős bázisnak bizonyult 19

24 hogy az acetofenonból enolátot (94) képezzen, amely regioszelektíven reagált az észterrel (92) és a megfelelő diketonhoz (95) vezetett. Ez utóbbi ciklizációját flavonná (96-98) kénsavas ecetsavban valósították meg, miközben a védőcsoportok lehasadását is tapasztalták. Me R 1 R 2 t BuMe 2 SiCl DMF / DIPEA Me R 1 R 2 SiMe 2 tbu R 1 R 3 R 3 R 4 R 4 Ac R 2 2S4 R 5 R 5 R 6 R 6 R 3 R 3 R 4 R 4 (Me 3 Si) 2 NLi R 5 R 5 C 2 Li R 6 R R 1 SiMe 2 tbu R R 1 R 2 R 3 R 4 R 5 R Me Me 20

25 2.2. Pterokarpánok szintézise A pterokarpánok (6) cisz-kondenzált benzofuranilbenzopirán gyűrűt tartalmaznak A B 11a 6a 1 C D Előállításukra leginkább két módszer ismert az irodalomban: a.) a vegyületek C 6 -C 3 -C 6 vázát kalkonokból kiindulva izoflavonon (5) keresztül a bioszintetikus úttal megegyezően, illetve b.) a C 6 -C 3 egységen (kroménváz) alakítják ki a pterokarpán C- és D-gyűrűjét Az a.) módszer szerinti szintézis kiindulási anyaga a megfelelően szubsztituált 2 - hidroxikalkonszármazék (99), melyet tallium(iii)-nitráttal 61 vagy fenil-jód(iii)- bisz(trifluoracetát)-tal 62 oxidatív átrendeződési reakcióban β ketoaldehid-dimetilacetállá (100) alakítanak át. Ennek gyűrűzárásával a 2'-hidroxiizoflavon (101) prekurzort kapják meg, amit biomimetikus módon, redukciót ( ) követő ciklizációval alakítanak át pterokarpánná (104): R R' Bn Tl(N ) 3 v. PI DA R C(Me) 2 Bn R' / Pd(C) R R' NaB 4 / TF Et R R' R 4 R 2' R' R' A savkatalizált gyűrűzárás során a 103 diol C-4 hidroxilcsoportjának protonálódását követően a megfelelő termodinamikailag stabil benzilkation keletkezik, amelynek a 2 -hidroxilcsoporttal való reakciója kizárólag a cisz- 21

26 pterokarpánt eredményezi. Ez a módszer lehetőséget adott optikailag aktív pterokarpánok előállítására is. Mori és Kishida ban ezen az úton valósította meg a pterokarpin enantiomerjeinek [(+) 109/( ) 109] teljes szintézisét. A 2 -hidroxi-7-metoxi-4,5 - metiléndioxiizoflavon (105) nátrium-tetrahidrido-borátos redukcióját követően a racém cisz- és transz-izoflaván-4-ol [(±)-106a,b] keverékéből a cisz izomert [(±)- 106a] kromatográfiásan izolálták, majd az optikailag aktív (-)-(R)-1-naftiletilizocianáttal (107) a megfelelő karbamáttá [(±)-108a] alakították. A diasztereomer keverék kromatográfiás elválasztása [(+)-108a, (-)-108a] és a királis segédvegyület lítium-tetrahidrido-aluminátos redukciója után, az izoflavanol (3R,4S) és (3S,4R) konfigurációjú optikailag tiszta enantiomerjeit [(+)-106a), (-)-106a] bór-fluoridos gyűrűzárással alakították a pterokarpin jobbra [(+)-6aS,11aS)-109] illetve balra [(-)- 6aR,11aR)-109] forgató enantiomerjeivé. 22

27 Me NaB 4 Me R 1 R R 1 R 2 a b 105 (±)-106a,b Me N C 107 (±)-108a elválasztás N Me Me = R R Me R (+)-108a (-)-108a LiAl 4 LiAl 4 (+)-106a (-)-106a BF 3 BF 3 Me Me (+)-109 (-)-109 Egy évvel később, hasonló szintézis stratégiát alkalmazva, az előbbi szerzők 64 közölték a (+)-pisatin [(+)-28] előállítását is: 23

28 Me Me NaB 4 tbume 2 Si tbume 2 Si 110 (±)-111 CF 3 S 2 Cl Me R tbume 2 Si 1. s 4 2. KámforS 2 Cl Me tbume 2 Si (±)-113a,b 113 R 112 a b KámforS 2-1.rezolválás 2.BuN + - F 4 Me 1.CF 3 S 2 Cl 2.NaC 3 Me (+)-114 (+)-28 A 2 -hidroxi-7-metoxi-4,5 -metiléndioxiizoflavon t-butildimetilszilil-éterének (SiMe 2 tbu-, 110) nátrium-tetrahidrido-borátos redukciójával a racém cisz- és transzizoflaván-4-ol [(±)-111] keverékét állították elő, melynek trifluormetilszulfonilkloriddal 4-(dimetilamino)piridin jelenlétében végzett dehidratációja során, az instabil izoflavénszármazék (112) keletkezett. E vegyületből ozmium-tetroxiddal végzett hidroxilezéssel a racém cisz-diolt [ (±)-113a] állították elő, melyből a (+)- kámforszulfonil-kloriddal nyert észtert (113b) kristályosítással rezolválták. A védőcsoport és a királis segédanyag eltávolítása után a jobbra forgató 3,4- dihidroxiizoflaván-származékot [(+)-114] kapták meg, melynek gyűrűzárásával az optikailag aktív tiszta pisatinhoz [(+)-28] jutottak. A (+)-pisatin [(+)-28] enantioszelektív szintézisét Pinard és munkatársai 65 is megvalósították. A szintézis kulcslépése az izoflavénszármazék (116) volt, melyet a kereskedelemben könnyen hozzáférhető szezamolból (115) kiindulva hat lépésben állítottak elő. Ennek dihidrokinin-p-klórbenzoát jelenlétében ozmium-tetroxiddal végzett Sharpless-féle hidroxilezésével jutottak el az optikailag tiszta diolhoz (117), 24

29 melynek katalitikus debenzilezésekor a 6a-hidroximaackiain keletkezett (118). Ezt dimetil-szulfáttal metilezve, a természetes eredetű (+)-pisatint [(+)-28] kapták meg. Bn 6 lépés s4 Bn királis induktor Bn Bn Pd(C) / 2 Me Me Me 2S 4 K2C3 (+) A b.) utat alkalmazva 1976-ban orino és Inoue 66 2-kromént (119) eck-féle oxiarilezési reakcióval 67 2-merkurifenollal (120) kapcsoltak, lítium-tetraklórpalladát jelenlétében. Ily módon a racém pterokarpánt kapták meg [(±)-6]. Clg Li 2 PdCl 4 C 3 CN (±) - 6 Ezt a módszert széles körben alkalmazták természetes eredetű pterokarpánok szintézisére, de a reakció mechanizmusáról csak néhány feltételezés van az irodalomban. 67 Az alábbi folyamatot javasolják: 25

30 PdCl LiCl 6 Li 2 PdCl gcl 2 gcl PdCl 3 120a Li + - Pd o, Cl 2- Pd Cl 3-2 LiCl 121 A lítium-kloridból és palládium-kloridból keletkező lítium-tetraklórpalladát első lépésben az o-merkurifenollal (120) reagál és a palládium a higanyt helyettesítve (120a) a szénatomhoz kapcsolódik. A kialakult intermedier a kromén (119) kettős kötésének C-3 szénatomjához szin addícióval kötődik. Mivel ebben az esetben, a klasszikus eck-reakciótól eltérően nincs lehetőség a β-szin eliminációra (121), gyűrűzáródás játszódik le és pterokarpán [(±)-6], valamint fém palládium keletkezik. A palládium kiválása miatt a körfolyamat nem valósulhat meg. A reakció szin addíciós lépését illetően Roux és munkatársai 68 megfigyelték, hogy a regioszelektivitást mind az o-merkurifenolszármazék nukleofilitása, mint pedig a kroménszármazék 3 -helyzetű kettőskötésének polaritás viszonyai befolyásolják. A fokozottan nukleofil 2-klórmerkurirezorcin (123) esetében ugyanis azt tapasztalták, hogy a 7-es helyzetben szubsztituált kroménszármazékokra (R = Me, Bn, Ac, ) (122) történő szin addíció már nem regioszelektív és a pterokarpánok (124) mellett 6,12-metano-6-dibenzo[d,g][1,3]dioxocinszármazékok (125) is keletkeznek. Ez utóbbi átalakulás jelentősen visszaszorult ha a kromén C-3 szénatom pozitív polározottságát elektronszívó-szubsztituens bevitelével fokozták (R = Ac). 26

31 gc l R 122 Li 2 PdCl R R Kroménból (119) kiindulva más úton is megvalósították a pterokarpánok szintézisét. Indiai kutatók 69 kromén-epoxidot (126) alkalmazva a 128 enol-étert állították elő a reakciósor szerint, majd ennek tributil-ón-hidrid (nbu 3 Sn) jelenlétében végzett gyökös ciklizációjával a racém pterokarpánt [(±) 6] kapták meg. 1.NBS/DMS Br 2.K Br nbu 3 Sn AIBN/benzol Br 1.TsCl 2.KtBu (±) Egy másik módszer Engler és munkatársai azon megfigyelésén alapszik, miszerint a 7-metoxikromén (129) benzokinonokkal (130a,b) titán-tetraklorid (TiCl 4 ) és titán-izopropilát [Ti(iPr) 4 ] jelenlétében [2+2] cikloaddícióba vihető és egy ciklobutánszármazék mellett (131a,b), racém pterokarpán [(±) 132] is keletkezik. 27

32 Me a,b TiCl 4,Ti(iPr) 4 R C 2 Cl 2 Me R + 131a,b R a Me b Bn Me R 132a,b Ez a módszer alkalmasnak bizonyult pterokarpánok enantioszelektív előállítására is. Engler és munkatársai, 73 királis induktorként TADDL-t [(+)-133] alkalmazva, 7-metoxikromént (129) 2-metoxi-1,4-benzokinonnal (130a) kapcsoltak és a (+)- (6aS,11aS)-8-hidroximedicarpint (134) jó hozammal (77%) és 75%-os enantiomer felesleggel kapták meg. M e Me TiCl 4, Ti(iPr) 4 (+) Me Me a Ph Ph (+) Ph Me Ph Ph (+)

33 3. Saját kísérleti munkám Kísérleti munkámat öt fejezetre osztva tárgyalom: 1.) 2 -idroxikalkonok oxidatív gyűrűzárása hipervalens jód reagens (feniljodozónium-diacetát/pida) segítségével 2.) Prenilezett 2 -hidroxikalkonok gyűrűzárása PIDA alkalmazásával 3.) (-)-Cabenegrin A-I teljes szintézise. 4.) (-)-Cabenegrin A-I analogonok szintézise 5.) Farmakológiai vizsgálatok eredményei idroxikalkonok oxidatív gyűrűzárása hipervalens jód reagens segítségével Az irodalomban flavonok előállítására 2 -hidroxikalkonok oxidatív gyűrűzárásával 36-38,42-44 számos módszert leírtak. Áttekintve ezen eljárásokat általánosan megállapítható, hogy a hozamok a kiindulási vegyület szubsztituenseinek minőségétől meglehetősen függnek. Például, az A-gyűrűben floroglucin gyűrűt tartalmazó kalkonok esetében csak nagyon alacsony hozammal vagy egyáltalán nem képződnek 5,7-dihidroxiflavonszármazékok, illetve legtöbb esetben összetett reakcióelegy az eredmény. 43 Az utóbbi időben a hipervalens jódvegyületek a különböző oxidációs átalakulások kedvelt reagenseivé váltak. Felismerték ugyanis, hogy a jód(iii)származékok viselkedése rendkívül hasonlít a szerves kémiában széles körben alkalmazott higany(ii), tallium(iii), ólom(iv) vegyületeikére, ugyanakkor nem mérgezőek és a környezetet sem szennyezik nehézfém ionokkal. Az elmúlt évtizedben megjelent összefoglaló közlemények és a feniljodozónium-diacetát [PhI(Ac) 2 /PIDA] kereskedelmi forgalmazása (Aldrich) egyaránt hozzájárult e terület gyors fejlődéséhez. A jodozilbenzol (PhI) sárgás, amorf, polimer szerkezetű vegyület, 77 mely metanollal vagy vízzel reagálva depolimerizálódik [PhI PhI() 2 ] és így kitűnően oldódva, homogén fázisú oxidációs átalakulások elvégzését teszi lehetővé. E reagens lúgos közegben feniljodozónium-diacetátból [PIDA PhI() 2 ] is könnyen előállítható. Moriarty és munkatársai 78 a cisz-3-hidroxiflavanon (140) előállítása során használták ki ezt a lehetőséget. Vizsgálatuk szerint ugyanis 2 -hidroxikalkonból (135), vagy flavanonból (59) kiindulva feniljodozónium-diacetáttal, metanolban, 29

34 kálium-hidroxid jelenlétében végzett oxidációval 65% hozammal a cisz-3- hidroxiflavanon (140) keletkezett. K/Me Ph Ph a 59 Ph PhI(Ac) 2 K/Me Ph I Ph Me Me Ph I Ph 59a PhI,- Ph Ph Me Me Me Me Ph Feltételezésük szerint mindkét esetben az 59 flavanon enol formája (59a) a fenilcsoporthoz viszonyítva ellentétes oldalról reagál az in situ generált jodozilbenzollal (59a 136), majd a metoxidion a karbonilszénatomon történő támadását követően, intramolekuláris epoxidképződés ( ) játszódik le. Az átalakulás utolsó lépésében az epoxid gyűrű felnyílik metoxidion hatására és a 139 dimetil-ketál keletkezik, amely a reakcióelegy enyhe savas feldolgozásakor a cisz-3-hidroxiflavanont (140) eredményezi. E többlépéses folyamat 3- jodozilflavanon típusú intermedierje (136), úgy gondoltuk, hogy elvben magában rejti a flavonná (3) történő átalakulás lehetőségét is. Ph I Ph Me -PhI - 2 Ph Flavon (3) előállítása szempontjából lényeges, hogy a jódbenzol kilépését eliminációval érjük el, azaz a metoxidionnak a karbonilszénatomon történő 30

35 támadását ( ) kell megfelelő szerkezeti változtatásokkal megakadályozni. Feltételeztük, hogy ha a karbonilcsoporttal peri-helyzetbe (C-5) nagy térkitöltésű elektronküldő szubsztituenst viszünk be a molekulába, akkor számottevően megnöveljük a karbonilszénatom elektronsűrűségét és így a metoxidion nem itt, hanem a C-2 helyzetbe támad. A karbonil-szénatom pozitív polározottsága a 7- helyzetű szénatomra elektronküldő-csoport bevitelével is tovább csökkenthető. Elképzelésünk helyességét a hidroxikalkonoknak a megfelelő szubsztitúciójú flavonokat ( ) eredményező átalakulásával igazoltuk. Me 5' 4' 3' A 2' 1' 6' Me α β B R 2 R 1 PIDA K/Me Me Me R 1 R 2 % , ,152 Me ,153 -C 2 C 2-75 R 2 R 1 A kalkonszármazékok sikeres oxidatív gyűrűzárása azt is megmutatta, hogy a B-gyűrűn levő elektronküldő-szubsztituenseknek nincs számottevő hatásuk az eliminációt lehetővé tevő C-2 helyzetű hidrogén savasságára. Minthogy a természetben előforduló flavonszármazékokban többnyire a hidroxilcsoport szabadon van jelen, így kézenfekvő volt azt is megvizsgálni, hogy az oxidatív gyűrűzárás elvégezhető-e bázisra stabil, ugyanakkor savval vagy katalitikus hidrogénezéssel könnyen eltávolítható védőcsoportok (benzil, metoximetil) jelenlétében is. Várakozásunknak megfelelően a metoximetoxi-2 -hidroxikalkonszármazékok (144,145) is, a Moriarty és Prakash 78 által leírt reakciókörülmények között, jó hozammal (65-70%) szolgáltatták a megfelelő flavonokat (154,155) és így a védőcsoport eltávolítása után a természetes eredetű chrysin (156) és luteolin (97) új szintézisét valósítottuk meg ezzel a módszerrel. 31

36 3' 4' 2' R 1 5' A 1' α B R 2 6' β PIDA K/Me R 1 R 2 144, ,155 R 1 R 2 144, ,155 Bn Bn / Me v. 2 / Pd(C) R 1 R 2 97 (luteolin) 156 (chrysin) Továbbiakban a hidroxikalkonszármazékok átalakítása során tanulmányoztuk a reakció érvényességi körét ( scope and limitation ). A 146 kalkon esetében, amely az A-gyűrűben a karbonilcsoporthoz csak parahelyzetben tartalmazott elektronküldő-csoportot, azt tapasztaltuk, hogy a kívánt flavon (157) mellett már a megfelelő cisz-3-hidroxiflavanonszármazék (158) is keletkezett körülbelül 6:1 arányban. Ez egyértelműen arra utalt, hogy a peri-helyzetű szubsztituens szterikus és elektronikus tulajdonsága jelentősen befolyásolja a reakció irányát, azaz a flavonná történő magas hozamú átalakuláshoz az A-gyűrűben a 6 helyzetű elektronküldő csoport jelenléte feltétlen szükséges. PIDA K/Me

37 Ezt igazolta a 147 kalkonszármazék átalakítása is. A reakcióelegy kromatográfiás feldolgozásakor ugyanis a 159 flavon mellett már jelentős mennyiségben a 161 transz-3-hidroxiflavanonszármazékot is izoláltuk (159:161 = 2:1). Me Me PIDA Me Me Me K/Me Me + Me Me Me Me Me Me 1 2 Me Me Me Ez utóbbi vegyület keletkezését úgy értelmeztük, hogy az oxidáció során a 160 ketálszármazék is keletkezik, amely a feldolgozás során a termodinamikailag stabilabb transz-3-hidroxiflavanonszármazékká (161) alakul át. További bizonyítékul szolgált az A-gyűrűben szubsztituenst nem tartalmazó 2 - hidroxikalkonok (148,149) oxidatív ciklizációja is. 33

38 R 1 148,149 R 2 R 1 R 2 148,162 Me 149,163 -C 2 C C 2 C 2 - PIDA/K/Me R 1 R 1 Me Me R 2 162, R 2 /Me R 1 R 1 R 2 R Mindkét esetben a flavonképződés háttérbe szorult. Főtermékként a 148 kalkon esetében a 162 dimetil-ketált izoláltuk, míg a 149 kalkonból dimetil-ketálon (163) és cisz-3-hidroxiflavanonszármazékon (165) keresztül a transz-3,4 -etiléndioxi-3- hidroxiflavanonhoz (166), valamint kis mennyiségű flavonhoz (164) jutottunk.. Végül elképzelésünk igazolására 2 -hidroxi-4,6 -diklórkalkon (150) oxidatív gyűrűzárását is megvizsgáltuk. Teljes egyezésben fentebb tárgyalt kísérleteinkkel, az A-gyűrűben elektronszívó-csoportok (klór) jelenlétében jó hozammal (80%) kizárólag a cisz-3-hidroxiflavanon dimetil-ketálszármazék (167) keletkezett, melynek savas hidrolízise cisz-izomeren (168) keresztül a stabilabb transz-3- hidroxi-5,7-diklórflavanonhoz (169) vezetett. 34

39 Cl Cl Cl PIDA K/Me Ph Cl Me Me /Me Cl Cl Ph Cl Cl Ph 169 Ez az átalakítás egyben arra is rámutatott, hogy a metoxidion karbonilszénatomon történő támadását elsősorban a megfelelő helyzetű csoportok induktív effektusa, nem a peri-helyzetű szubsztituens szterikus gátlása akadályozza meg. 35

40 3.2. Prenilezett 2 -hidroxikalkonok gyűrűzárása PIDA alkalmazásával Az irodalomban alkéneknek hipervalens jód reagens segítségével történő átalakítása igen jól dokumentált A feniljodozónium-diacetát epoxid képzésre is alkalmazható, például ruténium-komplexek jelenlétében transz-sztilbén-oxid állítható elő magas hozammal (92%). 79 Ph Ph PIDA Ru-komplex Ammónium- vagy foszfóniumcsoportok által stabilizált alkiljodóniumszármazékok segítségével a kettős kötés haloacetilezhető. 80 Ph Ph Et 4 NBr + PhI(Ac) 2 = Et 4 NBr(Ac) 2 + PhI Ph 3 PI + PhI(Ac) 2 = Ph 3 PI(Ac) 2 + PhI Et 4 NBr(Ac) 2 v. X Ph 3 PI(Ac) 2 Ac A trimetilszilil-enol-éterek hipervalens jód vegyületekkel reagáltatva 81 α- szubsztituált ketonokká alakulnak, ahol X a jódhoz kapcsolódó ligandum (TMS = trimetilszilil): TMS TMS PhIX 2 X X + PhI + TMSX Feniljodozónium-diacetátból és trimetilszilil-izotiocianátokból keletkező reagensek 82 alkénekhez addícionálódva 1,2-ditiocianátokhoz vezetnek, amelyek kéntartalmú funkciós csoportokat és heterociklusos vegyületeket eredményezhetnek további folyamatok során: SCN Ezen átalakítások ismeretében érdekesnek tűnt megvizsgálni, hogy az előző fejezetben tárgyalt oxidatív ciklodehidrogénezési módszerünk kiterjeszthető-e SCN 36

41 telítetlen oldalláncot tartalmazó 2 -hidroxikalkonokra is. Választásunk prenil-(3,3- dimetilallil) és 2,2-dimetil-2-piranilkalkonokra irányult, ugyanis az utóbbi időben számos ilyen csoportot tartalmazó flavont izoláltak a természetből. 83,84 Célvegyületként a Glycyrrhiza eurycarpa-ból 85 izolált kanzonol-d (170) és E-t (171). illetve a Vancouveria hexandra-ból 86 és Epimedium sagittatum-ból 87 kinyert, vérlemezke aggregációt gátló hatású, yinyanghuo-c-t (172) választottuk, mivel úgy véltük, hogy e vegyületek szintézisének 2 -hidroxikalkon-prekurzorai jó lehetőséget adnak arra, hogy az addíciós lépés regioszelektivitását is tanulmányozzuk A yinyanghuo-c (172) szintézisének kiindulási anyaga a hidroxikalkon volt, melyet 4,6-bisz(metoximetil)floracetofenonból 88 (173) és 2,2-dimetil-6-formil- 2-kroménből 89 (174) lúgos közegben, szobahőmérsékleten végzett kondenzációval állítottunk elő. E kalkon (175) oxidatív gyűrűzárását, az előző fejezetben ismertetett módon, feniljodozónium-diacetáttal végezve, 62%-os kitermeléssel, egységes terméket kaptunk, melyet 1 NMR színképe alapján a 176 flavonszármazékként azonosítottunk. 37

42 % Na Et PIDA K/Me I Ph a -PhI A reakció tehát regioszelektíven zajlott le, azaz csak a karbonilcsoport melletti kettőskötés reagált az elektrofil reagenssel (PIDA), és a 175a 3- feniljodóniumflavanon keletkezett, amely a jódbenzol és víz kilépésével a 176 flavonszármazékká alakult. A metoximetil-védőcsoportok híg sósavas eltávolítása után, a természetes anyaggal minden szempontból megegyező yinyanghuo-c-t (172) kaptuk meg. Említésre érdemes, hogy az egy metoximetoxicsoportot tartalmazó kalkon (177) szintén jó hozammal (64%) alakult át a megfelelő flavonná (178), majd a védőcsoport eltávolítása után az 5-dezoxiyinyanghuo-C (179) keletkezett. 38

43 PIDA K/Me /Me E szintézis kiindulási anyagaként használt kalkon (177) sósavas hidrolízisével egy másik természetes eredetű vegyületet, a kanzonol-b-t (180) állítottuk elő. Ezt Fukai és munkatársai 85 izolálták a Glycyrrhiza eurycarpa gyökeréből és spektroszkópiai ( 1 NMR, MS) vizsgálatok alapján tettek javaslatot szerkezetére. Minthogy az általunk kapott vegyület minden szempontból azonos volt e természetes anyaggal, így az is igazolást nyert, hogy az irodalomban igen jól dokumentált 2,4 - dihidroxikalkonok a megfelelő flavanonná történő gyűrűzáródása sav hatására, 90 nem következett be ebben az esetben. 179 Me A kanzonol-d (170) és -E (171) szintézisét a 181, illetve 183 kalkonokból kiindulva a már ismertetett standard körülmények között (PIDA/Me/K) két lépésben oldottuk meg, vagyis gyűrűzárással, majd ezt követően a védőcsoportok savas hidrolízisével. 39

44 PIDA K/Me /Me A 183 kalkonszármazék a megfelelő flavonná (171) történő sikeres átalakítása arra is rávilágított, hogy az alkalmazott körülmények között a para-szubsztituált fenolok körében megfigyelt ciklohexadienonok képződésével járó dezaromatizáció, ebben az esetben nem játszódott le ( ). 170 PIDA K/Me /Me Me E sikeres átalakulások egyértelműen arra utaltak, hogy a karbonilszénatom melletti kettőskötés fokozott reaktivitást mutat az elektrofil reagenssel (PIDA) szemben. E nagyfokú regioszelektivitás okára kvantumkémiai számításokkal próbáltunk magyarázatot találni. Ezeket a 186 kalkonszármazékon végeztük el, mivel e vegyületben az α,β-telítetlen ketonfunkció mellett mindkét olefin jellegű csoport (3,3-dimetilallil és 2,2-dimetil-2--piranil) megtalálható. A PM 3 szemiemipirikus számításokkal meghatározott Löwdin-féle ponttöltések nagysága (1. Táblázat) egyértelműen arra utalt, hogy a karbonilcsoport melletti α-szénatom legérzékenyebb elektrofil támadásra. 40

45 3" ' Me 2' 5 4' 1 2" 1' α 8 1" 5' 6 6' β q Löwdin q EP c M C C C-β C-α C-2" C-3" Táblázat. 186 kalkon kvantumkémiai adatai Az elektrosztatikus potenciáltérképből számított töltéssűrűségek (q EP ) a szénatomok ugyanilyen reakciókészségét mutatták. Az elektrofil reagenssel szemben mutatott reakciókészség értelmezhető a határmolekulapályák (M-LUM) egyes atomokon megjelenő koefficienseinek nagyságával is. Az olefinkötésben levő szénatomok közül e számítás alapján is az α-szénatomra adódott a legnagyobb töltéssűrűség, ezért érthető hogy a feniljodozónium-diacetát ehhez a szénatomhoz kapcsolódva tette lehetővé a ciklodehidrogénezéssel járó átalakulást. E fejezetben ismertetett oxidatív gyűrűzárások eredményei egyértelműen azt mutatják, hogy a feniljodozónium-diacetát megfelelő reagens polihidroxi- és preniloldalláncot tartalmazó flavonok és hasonló típusú természetes anyagok egyszerű, jó hozamú előállítására. 41

46 3.3. (-)-Cabenegrin A-I teljes szintézise A dél-amerikai népgyógyászatban a Cabeca de Negra-nak nevezett alkoholos kivonatot széles körben használják kígyómarás és pókcsípés ellenszeréül. Ebből a kivonatból Nakanishi és munkatársai 94 két pterokarpánszármazékot különítettek el, a cabenegrin A-I-t (187) és A-II-t (188) és szerkezetükre spektroszkópiai (UV, 1 - és 13 C-NMR, CD, MS) vizsgálatok alapján tettek javaslatot. Említésre érdemes, hogy a növényt, amelynek gyökeréből az alkoholos kivonatot nyerték, nem sikerült eddig azonosítani. R 1 R 1 R 2 R 3 R 4 R 5 R 2 R 3 187,188 R 5 R C C 2 - ím beagle kutyákon végzett vizsgálatokkal azt is megállapították, hogy a népgyógyászatban megfigyelt hatásért valóban e két vegyület a felelős, mivel a cabenegrin A-I (187) 1 mg/kg dózisban hatékonynak bizonyult a Bothrops atrox (valódi lándzsakígyó) marása ellen. A szabadalommal 95 védett vegyületek előállítására Darkó László kutatási igazgató (Pharmacon Inc. Ridgefield, USA) megbízásából egy másik japán kutatócsoport 96 kidolgozta e vegyületek racemátjainak szintézisét és ezt a Tetrahedron Letters folyóiratban le is közölték. A cabenegrin A-I (187) szintézisének főbb lépéseit a következő ábrán foglaltuk össze. 42

47 Bn Bn Clg Li 2 PdCl (±) /Pd(C) aceton PhNEt 2 Br K 2 C 3,aceton, (±)-192 (±)-9 s 4 NaI 4 Ph 3 P=C(Me)C 2 Et DMS, 120 o (±)-193 (±)-194 C 2 Et (±)-187 LiAl 4 TF, -40 o (±)-195 Mint látható a eck-féle 67 oxiarilezési módszert alkalmazták a pterokarpánváz felépítésére [( ) 191]; a benzilcsoport eltávolítása után a racém maackiainen [(±)-9] keresztül Claisen-féle allil-átrendeződéssel oldották meg a telítetlen oldallánc bevitelét, ( ). Ennek hosszabbításával aldehiden (194) és észteren (195) keresztül jutottak az (E)-geometriájú hidroxiprenil célvegyülethez (187). A cabenegrin A-I (187) abszolút konfigurációjára, (6aR,11aR), Nakanishi és munkatársai 94 kiroptikai vizsgálatok alapján tettek javaslatot. A 238 nm-nél észlelt intenzív negatív Cotton-effektus ( ε=-9.84) arra a következtetésre adott okot, hogy ez a vegyület homokirális a Neorautanenia edulis gyökeréból izolált 97 (-)- (6aR,11aR)-homopterocarpinnal (196) és a (-)-(6aR,11aR)-trifolirhizinnel (197). Az 43

48 utóbbi vegyület abszolút konfigurációját Shibata és Nishikawa 98 a (-) parakonsavval (198) való kémiai korreláció alapján határozták meg. R 1 R 2 R 3 R 5 R 4 R 1 R 2 R 3 R 4 R Me Me 197 β-d-glup Me C 196, Feltételeztük, hogy a (-)-cabenegrin A-I (187) abszolút konfigurációja úgy tisztázható egyértelműen, ha teljes szintézisét Ishiguro és munkatársai 96 által leírt módon (3.ábra) a balra forgató maackiainon [(-)-9] keresztül valósítjuk meg. E vegyület abszolút konfigurációját ugyanis a (-)-(6aR,11aR)-trifolirhizinnel (197) való kémiai korrelációval már igazolták 99. Ez a megközelítés azért is előnyösnek tűnt, mert a racém maackiain [(±)-9] előállítása jól dokumentált az irodalomban 66, és fenolos hidroxilcsoportja feltehetően lehetőséget nyújt diasztereomerszármazékok képzése révén a rezolválásra, azaz a balra forgató enantiomer [(-)-9] elválasztására. A racém maackiain [(±)-9] előállítását eck-féle oxiarilezési 67 reakcióval, 7- benziloxi-2-1-benzopirán- (212) és 2-klórmerkuri-3,4-metiléndioxifenolból (208a) kiindulva oldottuk meg, Breytenbach és Rall 100 által leírt módon. A 7-benziloxi-2-1-benzopiránt (189) négylépéses reakcióban rezorcinból (29) az alábbi séma szerint, ( ), állítottuk elő. Cl Cl Na CF 3 S 3, PhC 2 Cl/ K 2 C 3 1. NaB 4 Bn 2. PTS Bn

49 Az oxiarilezési reakció másik komponensét, a 2-klórmerkuri-3,4- metiléndioxifenolt (190), szezamolból (115) higany(ii)-acetáttal [g(ac) 2 ] és lítium-kloriddal (LiCl) nyertük Az oxiarilezési reakcióban [3.ábra, ( ) 191], eltérően Breytenbach és Rall 100 által leírtaktól, nem 66%, hanem csak 53%-os termeléssel kaptuk meg a racém maackiain benzil-éterét (191), ugyanakkor azt tapasztaltuk, hogy termékünk olvadáspontja ( C) jelentősen eltér az irodalomban közölttől ( C). E nagy olvadáspont különbség arra utalt, hogy a Breytenbach és Rall 100 által izolált anyag egy magasabb olvadáspontú termékkel volt szennyezve. A reakció kromatográfiás vizsgálata valóban azt mutatta, hogy a kívánt termék mellett számos más vegyület is keletkezett. Ezek közül kettőt sikerült oszlopkromatográfiás tisztítást követő preparatív-rétegkromatográfiával elkülönítenünk és szerkezetüket spektroszkópiai módszerekkel ( 1 NMR, MS) felderítenünk. A (±)--benzilmaackiainnal (191) közel azonos polaritású kristályos vegyület (o.p o C) 1 NMR és MS adatait összehasonlítottuk a 208 oxazocinéval. Az utóbbi vegyületet kutatócsoportunk szintén eck-reakcióval, 1,2-dihidrokinolinból (209) és 2-klórmerkuri-3,4-metiléndioxifenolból (190) állította elő. 103 Az ismeretlen anyagot így egyértelműen 6,12-metano-6-dibenzo[d,g][1,3]dioxocinként (207) azonosítottuk. 103 A másik nem várt melléktermék (205) adataiból kitűnt hogy szintén a (±)-191 izomere, de a 3,4-metiléndioxifenilcsoport ebben az esetben, mint azt a 1 NMR értékek mutatták, a 7-benziloxikrománváz 4-helyzetű szénatomjához kapcsolódik. 45