Módosított hatóanyag-leadású diklofenák-nátrium tartalmú gyógyszerkészítmények formulálása és vizsgálata Doktori értekezés Dr. Fenyvesi Zsófia Semmelweis Egyetem Gyógyszertudományok Doktori Iskola Témavezető: Dr. Marton Sylvia, Ph.D. Hivatalos bírálók: Dr. László Krisztina, D.Sc. Dr. Bácskay Ildikó, Ph.D. Szigorlati bizottság elnöke: Szigorlati bizottság tagjai: Dr. Tekes Kornélia, D.Sc. ifj. Dr. Regdon Géza, Ph.D. Dr. Vecsernyés Miklós, Ph.D. Budapest 2010
TARTALOMJEGYZÉK 1. RÖVIDÍTÉSEK JEGYZÉKE... 6 2. BEVEZETÉS... 9 3. IRODALMI HÁTTÉR... 10 3.1. Gasztrointesztinális traktus (GIT) felépítése és működése gyógyszerkészítmények felszívódása szempontjából... 10 3.2. Módosított hatóanyag-leadású gyógyszerkészítmények... 11 3.3. Mikrokapszula... 12 3.3.1. Mikrokapszulák alkalmazási területei... 14 3.3.2. Mikrokapszulák előállítása... 16 3.3.3. A mikrokapszulázás, mint műveleti eljárás... 20 3.3.4. Mikrokapszulázás során alkalmazott speciális anyagok... 20 3.3.4.1. Alkalmazott biodegradábilis polimerek jellemzése... 21 3.3.5. Mikrokapszulák hatóanyagleadása... 23 3.3.6. Mikrokapszulák fizikai vizsgálata... 24 3.3.6.1. Gördülékenység... 25 3.3.6.2. Deformitási faktor... 25 3.3.6.3. Átlagos szemcseméret..25 3.3.6.4. Az erózió mértékének meghatározása... 26 3.3.6.5. Duzzadás... 26 3.3.6.6. Számítógépes képanalízis... 27 3.3.7. Biofarmáciai vizsgálatok... 28 3.3.7.1. In vitro hatóanyag-felszabadulás vizsgálat... 28 3.3.7.2. Farmakokinetikai predikciós vizsgálatok... 32 3.3.7.3. In vitro és in vivo abszorpciós vizsgálatok... 33 3.3.7.4. Ulcerogenitás vizsgálata... 34 3.3.7.5. Hatóanyagleadás és -felszívódás szimulálása a GIT különböző területein... 35 3.3.8. Kristályszerkezet változás igazolása szabadfilmekben... 37 3.3.8.1. Közeli infravörös spektroszkópia (NIR)... 37 3.3.8.2. Differenciál pásztázó kalorimetria... 38 2
3.3.8.3. Röntgendiffrakciós analízis... 39 3.3.9. Stabilitás... 39 3.4. Diklofenák-nátrium... 40 4. CÉLKITŰZÉSEK... 43 5. ANYAGOK ÉS MÓDSZEREK... 44 5.1. Anyagok, eszközök... 44 5.1.1. Anyagok... 44 5.1.2. Készülékek, eszközök... 45 5.2. Módszerek... 46 5.2.1. Vizsgálati minták előállítása... 46 5.2.1.1. Teofillin tartalmú szabadfilmek és mikrokapszulák előállítása 46 5.2.1.2. Mikrokapszulák előállítása koacervációs módszerrel... 47 5.2.1.3. Mikrokapszulák előállítása in situ gélesedésen alapuló módszerrel... 48 5.2.1.4. Tabletták előállítása mikrokapszulákból direkt préselési eljárással... 48 5.2.1.5. Diklofenák tartalmú tapaszok előállítása... 48 5.2.2. Minták fizikai ellenőrző vizsgálata... 49 5.2.2.1. Gélek viszkozitásának meghatározása... 49 5.2.2.2. Mikrokapszulák szitaanalízise... 50 5.2.2.3. Erózió mértékének a meghatározása... 50 5.2.2.4. Mikrokapszulák duzzadóképességének meghatározása... 50 5.2.2.5. Mikrokapszulák kerekdedségének sztereomikroszkóppal történő meghatározása... 51 5.2.2.6. Szabadfilmek maradék nedvességtartalmának meghatározása 51 5.2.3. Minta előkészítése... 51 5.2.3.1. Koacervációs módszerrel előállított mikrokapszulák hatóanyag-tartalma... 51 5.2.3.2. In situ gélesedésen lapuló módszerrel előállított mikrokapszulák hatóanyagtartalma... 51 5.2.4. Analitikai vizsgáló módszerek... 52 5.2.4.1. Nagynyomású folyadékkromatográfia (HPLC)... 52 3
5.2.4.2. Differenciál pásztázó kalorimetria (DSC)... 52 5.2.4.3. Szabadfilmek NIR vizsgálata... 52 5.2.4.4. Szabadfilmek röntgendiffrakciós vizsgálata... 53 5.2.5. Biofarmáciai vizsgálatok... 53 5.2.5.1. In vitro vizsgálatok... 53 5.2.5.1.1. Átfolyócellás oldódás vizsgálat... 53 5.2.5.1.2. Kioldódás vizsgálat forgókosaras módszerrel mikrokapszulákból... 53 5.2.5.1.3. Mikrokapszulák és tabletták kioldódás vizsgálata ph váltással (ph 1,2 2h-ig majd ph 6,8)... 54 5.2.5.1.4. Kioldóközeg folyamatos ph változásának mikrokapszula hatóanyagleadására kifejtett hatásának vizsgálata... 54 5.2.5.1.5. Hatóanyag-felszabadulás vizsgálat tapaszokból... 55 5.2.5.1.6. Abszorpció meghatározása szimulált vizsgálattal bélgyűrű alkalmazásával... 56 5.2.5.2. In vivo vizsgálat... 56 5.2.5.2.1. Ulcerogenitás meghatározás patkányokban diklofenák tartalmú mikrokapszulák esetén... 56 5.2.6. Stabilitás vizsgálatok... 57 5.2.6.1. Mikrokapszulák stabilitás vizsgálatai... 57 5.2.7. Statisztika kiértékelés... 57 6. EREDMÉNYEK ÉS MEGBESZÉLÉS... 58 6.1. Diklofenák kvantitatív meghatározására alkalmazott módszerek... 58 6.2. Diklofenák-nátrium oldódási kinetikájának meghatározása... 59 6.3. Koacervációs eljárással előállított mikrokapszulák... 60 6.4. In situ gélesedésen alapuló módszerrel előállított mikrokapszulák... 62 6.4.1. Mikrokapszulák tulajdonságait befolyásoló paraméterek... 62 6.4.1.1. Mikrokapszulák duzzadóképessége... 64 6.4.1.2. Mikrokapszulák eróziója... 67 6.4.2. Mikrokapszulák szfericitását befolyásoló paraméterek... 69 6.4.2.1. Hatóanyag oldékonyságának hatása a szfericitásra... 69 6.4.2.2. Hatóanyag kristályszerkezete... 70 4
6.4.3. Kalcium-alginát kialakulását befolyásoló tényezők... 75 6.4.3.1. Kalcium-klorid koncentrációjának hatása... 75 6.4.3.2. Polimerek koncentrációjának hatása... 76 6.4.4. Mikrokapszulák hatóanyag-bezáró képessége... 77 6.4.4.1. Mikrokapszulák hatóanyag-bezárásának kvalitatív vizsgálata.. 77 6.4.4.2. Mikrokapszulák hatóanyag-bezárásának kvantitatív vizsgálata 79 6.4.5. Mikrokapszulák hatóanyagleadása... 79 6.4.6. Mikrokapszula gyomorkárosító hatásának vizsgálata... 83 6.4.7. In vitro intesztinális abszorpció... 84 6.5. Mikrokapszulák alkalmazása... 85 6.5.1. Kapszulák... 85 6.5.2. Tabletta... 85 6.5.3. Tapasz... 87 6.6. Mikrokapszulák stabilitás vizsgálata... 91 6.7. Vérszintgörbék szimulálása famakokinetikai adatok felhasználásával... 93 7. KÖVETKEZTETÉSEK... 96 8. ÖSSZEFOGLALÁS... 98 9. SUMMARY... 99 10. IRODALOMJEGYZÉK... 100 11. BIBLIOGRÁFIA... 115 12. KÖSZÖNETNYILVÁNÍTÁS... 118 13. AZ ÉRTEKEZÉS TÉMÁJÁHOZ KAPCSOLÓDÓ KÖZLEMÉNYEK KÜLÖNLENYOMATAI... 119 5
1. RÖVIDÍTÉSEK JEGYZÉKE A AQ BCS C c max c n COX d D D.E. d i DSC E EWU F FDA f 1 f 2 GIT HPMC HEC ICH I 0 I R k - szemcse vetületének területe - mikrokapszulában lévő hatóanyagtartalom - Biopharmaceutical Classification System - köralakúság tényezője - maximális plazmakoncentráció - Sartorius Dissolution Simulator által levett minta hatóanyag mennyisége - ciklooxigenáz enzim - két hálózati sík távolsága - dózis - kioldódási hatékonyság - i-edik frakció %-os mennyisége - differenciál pásztázó kalorimetria (Differential Scanning Calorimetry) - erózió - egyensúlyi vízfelvétel (Equilibrium Water Uptake) - dózisból felszívódott farmakon hányad - amerikai Élelmiszer- és Gyógyszerellenőrző Hatóság (Food and Drug Administration) - különbözőségi faktor - hasonlósági faktor - gasztrointesztinális traktus - hidroxipropilmetilcellulóz - hidroxietilcellulóz - International Conference on Harmonisation of Technical Requirements for Registration of Pharmaceuticals for Human Use - mintára beeső fénysugár intenzitása - diffúzan visszavert és összegyűjtött fénysugár intenzitása - felszabadulási konstans 6
K k a k d K d K d0 k e K i K p logd logp M F(t) M g(t) Mn M t M Mw M 100% n n d NIR NGF n p NSAID nλ P Ph.Hg. VIII. Ph.Eur.6. PGE2 r f RH r m - rendszer abszorpciós koefficiense - felszívódás elsőrendű sebességi állandója - hatóanyag gyógyszerformából történő kioldódásának elsőrendű sebességi állandója - diffúziós sebességi konstans - korrekciós konstans - elimináció elsőrendű sebességi állandója - abszorpciós sebességi konstans - víz penetrációjának kinetikai konstansa - n-oktanol/víz pufferben mért megoszlási koefficiens - n-oktanol/víz pufferben mért parciális koefficiens - adott időben összegyűjtött minta hatóanyag tartalma - adott időben felszabadult hatóanyag mennyiség - szám szerinti átlagos molekulatömeg - t időben felszabadult hatóanyag mennyiség - végtelen időben felszabadult hatóanyag mennyiség - tömeg szerinti átlagos molekulatömeg - 100%-os kioldódás - mintavételi időpontok száma - diffúzió transzportját jellemző hatványkitevő - közeli infravörös spektroszkópia - nerve growth factor - folyadék penetrációs mechanizmusától függő kitevő - nemszteroid gyulladásgátlók - hullámhossz egész számú többszöröse - szemcse vetületi körvonalának hossza - VIII. Magyar Gyógyszerkönyv - Európai Gyógyszerkönyv 6. kiadása - prosztaglandin E2 - farmakon sugara - relatív páratartalom - mikrokapszula sugara 7
R t R% - reflektancia értéke R 2 S t t max t 0 t p TQ T t USP 32 V d V D V S W d W o W p W r W s x x i X max X min H τ d β θ f b - referens készítményből t időpontban kioldódott %-os hatóanyag mennyiség - korrelációs koefficiens - rendszer szórási koefficiense - idő - maximális plazmakoncentráció eléréséhez szükséges idő - késleltetési idő - a penetrációhoz szükséges idő - mikrokapszulákban lévő elméleti hatóanyatartalom - vizsgálati készitményből kioldódott %-os hatóanyag mennyiség - Amerikai Gyógyszerkönyv 32. kiadása - megoszlási térfogat - minták térfogata - kioldóközeg térfogata - kioldódás után szárított mikrokapszulák tömege - száraz mikrokapszulák tömege - duzzadt mikrokapszula tömegének növekedése - kioldódás során felszabadult hatóanyagmennyiség - duzzadt mikrokapszulák tömege - átlagos szemcseméret - i-edik frakció alsó és felső mérethatárának átlaga - legnagyobb mért átmérő - legkisebb mért átmérő - olvadási entalpia - az az idő, amely alatt a hatóanyag 63,2%-a felszabadul - görbe alaki paramétere - kristálysíkok és a beesési sugár által bezárt szög - farmakon sűrűsége - bevonat sűrűsége 8
2. BEVEZETÉS Napjainkban egyre nagyobb teret hódítanak a multipartikuláris hatóanyag hordozó rendszerek, amelyek közé tartoznak a mikrokapszulák is. Az ilyen rendszerek egyik előnyös tulajdonsága a hagyományos hatóanyaghordozókkal szemben, hogy egyenletes gasztrointesztinális disztribúciót és abszorpciót biztosítanak, valamint a különböző hatóanyag-leadó profillal rendelkező egységek keverékének alkalmazásával egy szabályozott hatóanyag-felszabadulással rendelkező készítmény előállítására van lehetőség. A mikrokapszulázás szilárd, folyadék és gáz halmazállapotú anyagok bezárására alkalmas eljárás; hagyományos szilárd hatóanyagok és biológiai minták egyaránt felhasználhatók. A hatóanyag tulajdonságaitól és kívánt hatóanyag-leadó profiltól függően számos előállítási mód közül lehet választani. Mikrokapszulák alkalmazásával lehetőség van a hatóanyag vérben történő akkumulálódás elkerülésére, valamint kisebb inter- és intraperszonális variancia valósítható meg a vérszintgörbék között. A mikrokapszulák ezen felül a betegek igényeihez rugalmasan idomuló készítmény kifejlesztésére adnak lehetőséget, ilyen lehet például a gyomorvédő funkcióval rendelkező felezhető tabletta vagy a rezervoár típusú transzdermális hatóanyaghordozó rendszer. A NSAID vegyületek elsősorban fájdalom- és lázcsillapításra, valamint reumás megbetegedések kezelésében alkalmazott hatóanyagok. A vegyületek egyik káros mellékhatása, hogy tartós alkalmazásuk a gyomornyálkahártyát jelentős mértékben károsíthatja kontakt hatáson és prosztaglandin szintézis gátláson keresztül, amely gyomorvérzés és -fekély kialakulását idézheti elő. Ennek megelőzésére a nemszteroid gyulladásgátló tartalmú készítményeket általában gasztrorezisztens bevonattal látják el, amely kizárja a készítmény felezhetőségét, valamint a bevonat sérülése a védő funkció elvesztését eredményezheti. Ennek megoldására alkalmazható a hatóanyag mikrokapszulákba zárása, majd tablettázása, amely egy felezhető, változatlan hatóanyag-leadó profilt biztosító rendszer kialakítását teszi lehetővé. 9
3. IRODALMI HÁTTÉR 3.1. Gasztrointesztinális traktus (GIT) felépítése és működése gyógyszerkészítmények felszívódása szempontjából A gyógyszerkészítmények adagolására számos lehetőség áll rendelkezésünkre, mint például per os, intravénás, rektális, szublingvális. Ahhoz, hogy a vegyület kifejtse a kívánt hatást a közvetlenül véráramba juttatott készítményeket kivéve - a felszabadulást követően fel kell szívódnia, majd a megfelelő receptorhoz kell kötődnie. A per os adott készítmények a gyomor-béltraktusból általában nem-ionos passzív diffúzióval szívódnak fel, amelynek alapfeltétele, hogy a vegyület oldott, nem-ionizált formában legyen jelen a felszívódás helyén. Ezen kívül a membránon keresztüli felszívódás történhet filtrációval, facilitált diffúzióval, aktív transzporttal vagy pinocytosissal. A vegyület véráramba jutása az endothel- és epithelsejtek közötti réseken (csatornákon) keresztül is megvalósulhat. A per os adagolt készítmények első jelentős felszívódási szakasza a gyomor. A hasüregben elhelyezkedő szerv 3 részből épül fel: alap (fundus), test (corpus) és antrum. A proximális szakaszon (fundus és corpus) történik a beérkező táplálék raktározása, míg az antrum fő feladata a keverőfunkció ellátása és a gyomortartalom vékonybél felé történő továbbítása. A gyomor általában erősen savas kémhatását a gyomormirigyek által kiválasztott gyomorsav okozza. Ugyanakkor a gyomor ph-ját befolyásoló számos tényező közül az egyik a készítmény adagolásának körülményei, vagyis étkezés előtt, közben vagy után történik a készítmény bevétele. Az éhgyomri ph érték 1,0-1,2 körüli. Étkezés után ez az érték növekszik és akár a ph 6 közeli értéket is elérheti. A gyomor elsődleges funkciói közé a táplálék előemésztése, keverése, tárolása és továbbítása tartozik, de részt vesz a tápanyagok és különböző hatóanyagok felszívódásában is [1]. Elsősorban a gyenge savi és bázikus karakterrel rendelkező, nem ionizált vegyületek felszívódása figyelhető meg a GIT (gasztrointesztinális traktus) ezen szakaszán, míg a felszívódás jelentősebb mértékben a vékonybélben történik különböző abszorpciós folyamatok révén [2], ahol 6,8 körüli ph érték tapasztalható. 10
A gyomorürülés szempontjából is különbséget kell tenni jóllakott és éhezési állapot között, amely során a gyomortartalom szuszpenzió formájában távozik a vékonybél felé a kontrakciókat követően [1]. 3.2. Módosított hatóanyag-leadású gyógyszerkészítmények A VIII. Magyar Gyógyszerkönyv gyógyszernek nevezi azokat a készítményeket, amelyek egy vagy több hatóanyagot tartalmaznak, és valamely betegség kezelésében, megelőzésében vagy diagnózisában igazoltan hatékonyak. A hatékonyság két feltétele a hatóanyag és a gyógyszerforma megfelelősége. Ezáltal a gyógyszer-technológia feladata, hogy az optimális formulálás révén biztosítsa a hatóanyag megfelelő koncentrációját a hatás helyén, illetve a stabil, reprodukálhatóan gyártható készítmény kialakítását. A megvalósításhoz segédanyagok használhatók, amelyek a hatóanyaggal együtt alakítják ki a gyógyszert, és biztosítják annak hatékonyságát, biztonságosságát és relatív ártalmatlanságát. Ugyanakkor a segédanyagok hozzájárulnak a gyógyszer gyárthatóságához, stabilitásához, megkülönböztethetőségéhez, tolerálhatóságához is. A gyógyszerkészítmények a hatóanyag-leadás szempontjából két csoportba sorolhatók: konvencionális- és nem konvencionális (módosított hatóanyag-leadású) készítmények. A konvencionális készítmények előállítása során nem történik módosítás annak érdekében, hogy a hatóanyag felszabadulás helyét vagy idejét megváltoztassák. Nem konvencionális készítményeknél a hatóanyag-felszabadulás helyének és /vagy sebességének módosítása történik a hagyományostól eltérő előállítási módok vagy összetételek alkalmazásával 3. A rendszerek a következő generációkba sorolhatók: I. hagyományos gyógyszerformák (tabletta, kúp, oldat, kenőcs stb.); II. nyújtott hatóanyag-leadású, nyújtott hatású készítmények (sustained release drugs, prolonged action drugs); III. szabályozott hatóanyag-leadású rendszerek (controlled release systems); IV. célzott hatóanyag-szállító rendszerek (targetable delivery systems); 11
V. pulzáló hatóanyag-leadású terápiás rendszerek (tünetorientált gyógyszerrendszerek); VI. génterápián alapuló gyógyszerleadó rendszerek; VII. nanotechnológia hasznosításán alapuló megoldások. A gyógyszerhatás módosítása kémiai módszerekkel (farmakon szerkezetének változtatása), fiziológiai módszerekkel (megfelelő szervezeti adottságok kiválasztása és módosítása - például az alkalmazás helyének és a gyógyszerkészítmény szervezetbe juttatásának megválasztása) és gyógyszertechnológiai módszerekkel (megfelelő gyógyszerforma kialakítása) egyaránt megvalósítható. Az utóbbi lehetőségek közé tartozik a megfelelő vivőanyag kiválásztása, a bevonás alkalmazása és a mikrokapszulázási eljárás is [4]. A módosított hatóanyagleadású készítmények közé sorolhatók a nyújtott, késleltetett és szakaszos hatóanyagleadású gyógyszerformák 3. A hatóanyagleadás módosításának számos célja lehet, mint pl. a terápiás igényekhez igazodó farmakon felszabadulásának biztosítása, a biológiai hasznosíthatóság optimálissá tétele, a beteg complience javítása vagy akár a gazdasági szempontok figyelembevétele. 3.3. Mikrokapszula A mikrokapszula definíciója nem szerepel a Ph.Hg. VIII.-ban vagy a Ph.Eur.6- ban, sem pedig az USP 32-ben [3,5,6]. A mikrokapszulák 0,5-2000 μm átmérőjű szabályos alakzatok, amelyek egy vagy több polimerből felépülő, áteresztő bevonattal ellátott rendszerek. A mikrokapszula és mikrorészecske (1. ábra) között különbséget kell tenni. A mikrokapszula egymástól jól elkülöníthető falból és belső magból épül fel, szemben a mikrorészecskékkel, ahol nincsenek ilyen egyértelmű határok. A készítmény szerkezete az előállítási módszerrel befolyásolható, folyamatos, porózus vagy nem porózus struktúra kialakítására egyaránt van lehetőség [7]. 12
GÁZNEMŰ MAG MIKROKAPSZULÁK SZILÁRD MAG FOLYÉKONY MAG gömbölyű gömbölyű szabálytalan tiszta, oldódott hatóanyag szuszpenzió szabálytalan mátrix több rekeszes emulzió emulzió-szuszpenzió GÁZNEMŰ MAG MIKRORÉSZECSKÉK SZILÁRD MAG FOLYÉKONY MAG gömbölyű gömbölyű szilárd oldat tiszta, oldódott hatóanyag szuszpenzió szabálytalan szabálytalan emulzió emulzió-szuszpenzió 1. ábra Mikrokapszulák és mikrorészecskék [7] A mikrokapszulázás előnyös tulajdonságai közé tartozik a farmakon védelme, növelt eltarthatóság, egyszerűen megoldható nyújtott hatóanyag-leadás, kellemetlen hatóanyagok íz- és szagfedése, inkompatibilis hatóanyagok, és/vagy segédanyagok elkülönítése, valamint relatív kevés segédanyag szükséges az előállításukhoz a tablettákhoz képest [8]. A szilárd, folyékony és gáz halmazállapotú anyagok bezárására egyaránt alkalmas rendszer jobban képes biztosítani a hatóanyag védelmét, mivel ilyen mérettartományban pontosabban szabályozhatóak a gyártás körülményei, amely lehetőséget biztosít érzékeny hatóanyagok, mint például enzimek, fehérjék hatóanyaghordozó rendszerbe zárására. A multipartikuláris rendszerek közé sorolható mikrokapszulák alkalmazása számos előnyt mutat a hagyományos egy egységes gyógyszerformával szemben terápiás, fiziológiás és gyógyszertechnológiai szempontból egyaránt. Az ilyen gyógyszerforma gasztrointesztinális disztribúciója és a hatóanyag abszorpciója egyenletesebb, mint az egy egységes gyógyszerformáké. Adagolása során a plazmaszintek fluktuációja csökkenthető, amely az alkalmazás során fellépő mellékhatások csökkenését is eredményezheti, valamint elkerülhető a dózis felhalmozódása és a helyi irritáció is. A vérszintgörbék inter- és intraperszonális varianciája is kisebb mértékű 9-11. Méretüknél fogva hosszabb időt töltenek a 13
béltraktusban, mint a tabletták, ezáltal hosszabb idő áll a hatóanyag rendelkezésére, hogy felszívódjon. A mikrokapszulák vastagbél tranzit ideje kb. 28 óra, míg a tablettáké 15 óra, ami kihasználható egyrészt a vastagbélben lokálisan ható, másrészt egyes szisztematikusan ható készítmények esetében is 12. Mikrokapszula előállítása a betegek igényeihez rugalmasan idomuló gyógyszerforma fejlesztését teszi lehetővé. Eltérő liberációjú mikrokapszulák keverékének alkalmazásával optimális kioldódási profil tervezhető és alakítható ki. Lehetőség van a hatóanyag szabályozott felszabadulásának biztosítására, vagy akár idő kontrollált többegységes hatóanyag-leadó rendszerek kialakítására 11-15. Az eljárás végeredményeként kapott termék további feldolgozásra is alkalmas. Kapszulába tölthető a pontosabb adagolhatóság érdekében vagy injekció formájában is adható. A tablettázás a hatóanyagleadás további befolyásolására kínál lehetőséget a mikrokapszulák vagy a keletkezett tabletták bevonásával, vagy akár a két folyamat együttes alkalmazásával. A mikrokapszula tartalmú tabletták oszthatók, mivel a hatóanyag-részecskék sokkal kisebb egységenként vannak bevonva és a törési felületen csak kis részük sérülhet. Így egy mikrokapszulákat tartalmazó tabletta széttörése esetén is biztosított a hatóanyag és a gyomor-bél rendszer nyálkahártyájának védelme, valamint a szabályozott hatóanyagfelszabadulás. A különböző hatóanyagleadású profillal rendelkező mikrokapszulák kombinálásával a hatóanyag konstans liberációjának biztosítására is lehetőség van. Dermatológiai készítményekben történő felhasználásakor a fal megszilárdítása nélkül történik a mikrokapszuláknak mint mikrorezervoár komponenseknek gélekbe való inkorporálása. Tapaszok előállításakor a mikrokapszulák a fal megszilárdulása után vagy anélkül is a vázat képező gélbe helyezhetők. Ezek a rendszerek egyesítik a membrán és mátrix rendszerrel működő tapaszok előnyeit, ezáltal például a védőfólia eltávolításakor történő sérüléskor nem szabadul fel az összes hatóanyag, ami a toxicitás elkerülését biztosítja. 3.3.1. Mikrokapszulák alkalmazási területei A mikrokapszulázás széles körben kerül alkalmazásra az élelmiszer-, kozmetikai-, mezőgazdasági- és gyógyszeripar területén egyaránt. Ízesítő anyagokat már az 1930-as, vitaminokat az 1940-es évek óta kapszuláznak, amelynek fő célja a vegyületek védelme 14
és stabilitásuk megerősítése. A mikrokapszulázás alkalmazható különböző nyomelemekkel, vitaminokkal dúsított élelmiszer előállítására is 16. A többletköltséget nem igénylő mikrokapszulázás a kozmetikai ipar számára is kiváló lehetőségeket kínál 17. A magazinok lapjain reklámozott parfümök 18 tesztcsíkjai mikrokapszulázott formában tartalmazzák az illatanyagokat, amelyek fizikai hatásra (például hő, súrlódás) felbomlanak, ami a bezárt illatanyag felszabadulását eredményezi. A mezőgazdasági ipar számára is jelentős előnyöket biztosít a mikrokapszulázás. A növényvédő szerek alkalmazása során ezáltal csökkenthető az alkalmazás gyakorisága, konstans felszabadulás biztosítható, valamint csökkenthető a szerek koncentrációja az adott területen. A gyógyszeriparban a mikrokapszulázás egyre szélesebb körben alkalmazott eljárássá válik. A technológia népszerűségét az adja, hogy szabályozott hatóanyagleadás biztosítására is alkalmas eljárás. A hasnyálmirigy [19], illetve Langerhansszigetek bazofil szemcséjű béta-sejtjeinek [20] mikrokapszulázásával a készítmény félévenként történő egyszeri alkalmazása elegendő, amely által elkerülhető a napi inzulin injekció adása. A hemoglobin mikrokapszulába zárásával mesterséges vörösvértestek állíthatók elő, amelyek a vérátömlesztés immunológia veszélyeinek kiküszöbölésére alkalmasak. A mikrokapszulák parenterális adagolásakor a szemcseméret további csökkentése szükséges, hogy elkerüljék az adagolás helyén kialakuló irritáló hatást. Az intravénás alkalmazásra szánt mikrokapszulák előállítása során figyelembe kell venni, hogy ezek a részecskék embólia- és trombózisveszély forrásai lehetnek, ezért az erre a célra előállított multipartikuláris hatóanyaghordozó rendszerek burkolóanyaga heparint tartalmaz [8]. Napjainkban mágneses tulajdonsággal rendelkező, NGF (nerve growth factor) tartalmú mikrokapszulák előállítására is vannak kísérletek, amelyek alkalmazásával precíz és kontrollált hatóanyag felszabadulás érhető el az adott szövetben. Főként a neurális regeneráció és interface területén nyújtanak új lehetőségeket [21]. 15
3.3.2. Mikrokapszulák előállítása Mikrokapszulák előállítására alkalmazott eljárások alapvetően két nagy csoportba sorolhatók. Az egyik csoportba tartoznak azok a módszerek, amelyek során kémiai változás történik (pl. határfelületi polimerizáció), a másikat a fizikai változással járó folyamatok (pl. ph változtatásával előidézett koacerváció) képezik. Az eljárások alapját mindkét esetben a különböző polimerek homogén oldatából megfelelő (fizikai vagy kémiai) hatással történő kicsapása és ezáltal az oldatban diszpergált részecskék polimerrel való bevonása képezi [7]. A kívánt szemcseméret és nyújtott hatás elérése érdekében számos ipari eljárást dolgoztak ki a mikrokapszulák előállítására: koacervációs eljárás, határfelületi polimerizáció, dermesztés algináttal (in situ gélesedés), porlasztátos fagyasztás és porlasztásos szárítás, fluidizációs eljárás, centrifugálásos eljárás, diszperziós eljárás, emulziós eljárás [8]. Koacervációs eljárás lényege, hogy a polimer anyagok oldatából megfelelő külső hatásra koacervátumok válnak ki. A makromolekuláris anyag oldatának hőmérsékletvagy ph-változtatásával, vagy a polimer oldékonyságát csökkentő anyag hozzáadásával a kolloidok szol-gél állapotának egyensúlya könnyen megbontható. A fáziselkülönítésen alapuló koacerváció folyamata aránylag egyszerű berendezésekkel megvalósítható. Attól függően, hogy a koacervátumcseppek létrehozásában egy vagy több makromolekuláris kolloid vesz részt, egyszerű (például cellulóz-acetát-ftalát oldatból nátrium-szulfát hatására következik be a koacerváció [13]) és összetett koacervációt (pl. szulfametoxazol-szemcsék zselatin-arabmézgával történő koacerválására) különböztetnek meg. A jelenleg alkalmazott technikák két nagy csoportba sorolhatók: vizes oldatban és szerves oldószeres közegben végzett mikrokapszulázási eljárások (2. 16
ábra). A módszer hőérzékeny anyagok, mint például fehérjék és peptidek mikrokapszulázására is alkalmas [22-26]. 2. ábra Koacervációs eljárás [32] Az oldószer-eltávolításos eljárás a koacervációs módszer egyik változatának tekinthető, amelyet szobahőmérsékleten, szerves oldószert alkalmazva lehet elvégezni. A módszert inzulin mikrokapszulázására is alkalmazták [27,28]. Határfelületi polimerizáció során két reaktív monomer egymással nem elegyedő oldószerben történő oldását követően a monomerek a határfelületre diffundálnak, ahol polimer membránt képeznek. A határfelületi reakció általában gyorsan lejátszódó folyamat. Az alkalmazott segédanyagok megválasztásánál figyelembe kell venni, hogy a hidrolízis sebessége ne haladja meg a határfelületi polimerizáció sebességét, ilyenek pl. a poliamid és poliészter típusú vegyületek. A reakciókban résztvevő monomerek szénlánchosszúsága befolyásolja a mikrokapszulák szilárdságát és a fal permeabilitását [14,29,30]. 17
Az algináttal történő dermesztés (in situ gélesedés) mikro- és nanokapszulák előállítására egyaránt felhasználható. Mindkét rendszer alapja a guluronsavak között kalcium hatására kialakuló híd. Az így létrejött gélszerkezet élő sejtek, proteinek (humán serum albumin, inzulin) és más hatóanyagok bezárására is alkalmas [31-34]. A porlasztásos fagyasztás során a farmakon bevonó anyag olvadékában történt diszpergálása után a diszperzió porlasztása történik a megfelelő berendezés alkalmazásával. A keletkező cseppek szárítására hűtés alkalmazható. A segédanyag kémiai összetételének és a farmakon-segédanyag arányának változtatásával a kívánt kioldódás profillal rendelkező termék állítható elő [8]. A porlasztásos szárítás alkalmával az oldószer elpárologtatásával érhető el a bevonó anyag megszilárdulása a maganyag felületén. Az eljárás során a polimerek feloldása illékony folyadékban történik [35-37]. A fluidizációs eljárás elsősorban a Wurster által tervezett készülékben valósítható meg. A levegőáramlással azonos irányban mozog a hatóanyag és a bevonó anyag alsó porlasztással adagolva. A bevonás elsősorban a kolonna alján játszódik le, majd a felső részben megszáradó részecskék visszahullnak a kolonna aljára [8]. Centrifugálásos eljárásnál a maganyag forgó tárcsára juttatva diszpergálható, majd a farmakonrészecskék egy ellentétes irányban forgó tárcsára kerülnek, amelyre a bevonó anyag adagolása történik. A mikrokapszulák ezután a falanyag keményedését biztosító fürdőbe kerülnek, amelyben a kívánt keménység eléréséig állnak, majd a végtermék centrifugálással történő elkülönítése következik [8]. Diszperziós eljárás során a farmakont előzetesen megolvasztott mátrixanyagban diszpergálják, amelyet egy azonos hőmérsékletű, a fenti anyagokat nem oldó folyadékban történő diszpergálás követ. Az összetett diszperz rendszer belső fázisát képező cseppecskék hűtéssel szilárdíthatók [8]. Új kutatási irányvonal alakult ki a század közepén, amelynek lényege a folyadékfolyadék határfelületen elhelyezkedő emulgensfilm stabilizálása. A peptidek és egyéb környezeti hatásokra érzékeny hatóanyagok terápiás felhasználhatóságának megvalósítására és a hatóanyag-felszabadulás módosítására tett erőfeszítések jegyében dolgozták ki az ún. emulziós mikrokapszulázási eljárás -t, amely során stabilizálódik a folyadék-folyadék határfelület és az így keletkező mikrokapszula rendelkezik a szilárd gyógyszerformák minden előnyös tulajdonságával [38]. 18
A bepárlásos kapszulázási eljárás során kis polimer részecskék kicsapása történik olaj a vízben típusú emulzióból [39,40]. A termális denaturáció lényege egy viszonylag tömény vizes proteinoldat (pl. 20%) megfelelő mennyiségű olajban történő emulgeálása szobahőmérsékleten. A módszer elsősorban a szérum és a tojás albumin fehérjék bezárására alkalmas [41]. A hagyományos mikrokapszulázási módszerek mellett a kutatás területén próbálnak új eljárásokat is alkalmazni, amelyekkel jobban szabályozhatók az előállított termékek tulajdonságai. Ilyen módszerek közé tartozik az úgynevezett mikrokörnyezet által kontrollált mikrokapszulázás, amelynek lényege, hogy egy dupla üregű tű belső részén keresztül történik a hatóanyagtartalmú oldat bejuttatása és egy azt körülvevő tűn keresztül megy végbe a bevonásra szánt polimer oldat adagolása [42]. A különböző mikrokapszulázási eljárásokhoz alkalmazott hatóanyagokat és bevonóanyagokat az 1. táblázat foglalja össze [7]. 1. táblázat Mikrokapszulázási eljárások [7] Eljárás Bevonóanyag Szuszpendáló közeg Koacerváció Hidrofób polimerek Szerves oldószer Komplex koacerváció Vízoldékony polielektrolitok Víz Határfelületi polimerizáció Vízoldékony és nem vízoldékony monomerek Vizes vagy szerves oldószer Kicsapás hővel Proteinek Szerves oldószer Kisózás Vízoldékony polimerek Víz Bepárlás Hidrofil vagy hidrofób polimerek Szerves oldószer vagy víz Olvasztás Hidrofil vagy hidrofób polimerek - Oldószer-eltávolítás Hidrofil vagy hidrofób polimerek Szerves oldószerek Porlasztásos szárítás Hidrofil vagy hidrofób polimerek Levegő, nitrogén Fázisszeparáció Hidrofil vagy hidrofób polimerek Vizes vagy szerves oldószer 19
3.3.3. A mikrokapszulázás, mint műveleti eljárás A mikrokapszulázás, mint műveleti eljárás számos nehézséggel jár. A formulálás során tisztázni kell például: a gyártási sarzsok reprodukálhatóságát, amely az ipari szempontból gondos munkát igénylő művelet esetén lényeges, a hatékonyság befolyásolásában szerepet játszó tényezőket, mint például a kapszula falvastagsága, porozitása, keményítettségi foka, a mikrokapszula és a mag átmérője, valamint a heterodiszperzitás mértéke, a mikrokapszulák szeparálási lehetőségét, amely gyógyszer-technológiai szempontból a legtöbb problémát okozza, a helyes polimer-farmakon arány megválasztását, a kapszulafal keményedési idejének meghatározását, a mikrokapszulák és a hatóanyagok stabilitási kérdéseit [4]. 3.3.4. Mikrokapszulázás során alkalmazott speciális anyagok A hatóanyag specifikus kémiai, fizikai és terápiás tulajdonságai, valamint az alkalmazás körülményei alapvetőek a hordozó rendszer megtervezésekor. A hatóanyag fizikai-kémiai tulajdonságai közül a molekulatömege, a biológiai folyadékban és a mátrixban való oldékonysága, a biológiai tulajdonságai közül a toxicitás és biológiai felezési idő az, amely a szállítórendszer megválasztásában döntő fontosságú. Ugyanakkor előírt követelmény a hatóanyag és a mátrix egymással szemben tanúsított kompatibilitása. A hagyományos gyógyszeres kezelések során a hatóanyag periodikus adagolása szükséges. A hatóanyagot különböző módszerekkel formulálják, amelynek célja a hatóanyag stabilitásának, aktivitásának és terápiás alkalmazhatóságának biztosítása. A legtöbb hatóanyag esetében a hagyományos formulálással hatékony készítmény állítható elő, de vannak hatóanyagok, amelyek nem stabilak, toxikusak, szűk terápiás tartománnyal vagy extrém oldékonysági problémával rendelkeznek. Ilyen esetekben a hatóanyag folyamatos adagolása szükséges az állandó plazmaszint fenntartásához, 20
amely infúziós pumpa vagy polimerből felépülő hatóanyag felszabadító rendszerekkel valósítható meg. A hatóanyag-felszabadulás kinetikájának szabályozásával a hatóanyag plazma koncentrációja megfelelő időn át a terápiás tartományban tartható és csökkenthető az ártalmas mellékhatás, valamint a betegek compliance is javítható. A polimer készítmények optimálni tudják a rövid felezési idővel rendelkező hatóanyagok terápiás hatékonyságát és az alacsony vízoldékonyságúak biológiai alkalmazhatóságát is javítják. A hatóanyag periodikus adagolása esetén célszerű biodegradábilis polimereket alkalmazni a formula megtervezésekor, mert ezek az anyagok a szervezetben enzimatikus bomlást szenvednek. Biodegradábilis hatóanyaghordozó rendszerek előállítására általában lineáris polimereket alkalmaznak (nem tartalmaznak keresztkötéseket), mert a keresztkötések csökkentik a mátrix permeabilitását és a magas keresztkötés sűrűséggel rendelkező polimerek degradációja nagyon lassú folyamat. A polimerek keverésével azok fizikai tulajdonságai változtathatók, de hogy megőrizzék kedvező mechanikai tulajdonságaikat, kompatibilisnek kell egymással lenniük. A fizikai tulajdonságok, mint például a polimer morfológiája, befolyásolják az adott polimer degradációjának sebességét. A polimer erősségének meghatározásában fontos szerepe van a molekula tömegnek, amely közvetlenül nincs hatással a hatóanyag permeabilitására. A polimer molekulatömege egy tömeg szerinti átlagos molekulatömeggel (Mw) vagy szám szerinti átlagos molekulatömeggel (Mn) jellemezhető, amelyek hányadosa monodiszperz polimerek esetében Mw/Mn = 1. Szintetikus polimereknél ez az érték kevesebb, mint 1,2. A természetes polimerek gyakorlatilag monodiszperznek tekinthetők. A polidiszperzitás foka hatással lehet a polimer biodegradációs tulajdonságaira. Biodegradábilis polimerek közé tartozik a hidrofil tulajdonsággal is rendelkező nátrium-alginát, metilcellulóz és hidroximetilcellulóz, valamint a hidrogélek csoportjába tartozó kitozán is [43]. 3.3.4.1. Alkalmazott biodegradábilis polimerek jellemzése A kereskedelemben főként nátrium és ammónium só formájában előforduló alginát széles körben kerül felhasználásra a gyógyszeripar különböző területein [31,32,44,45]. A D-mannuronsavból és L-guluronsavból felépülő poliszaharid 21
biodegradábilis és biokompatibilis tulajdonságokkal egyaránt rendelkező polimer [46-48]. Előállítása barna hínárból (pl. Fucus vesiculosus, Ascophyllum nodosum) történik kivonással [49], ugyanakkor néhány mikroorganizmus (pl. Pseudomonas aeruginosa) is képes előállítani [50]. Az eredetétől függően eltérő a szerkezetét felépítő D- mannuronsav és L-guluronsav arány, amely befolyásolja a kialakuló gélszerkezet fizikai és kémiai tulajdonságát [51]. Az elmúlt években jelentős számú kutatás irányult a keresztkötések természetének és az alginát gélek struktúrájának meghatározására. Megfigyelték, hogy a keresztkötések kétféle módon képződhetnek. Egyrészt egyszerű ionos hidak jöhetnek létre két szomszédos polimer lánc karboxil-csoportja és a kalciumionok közt, másrészt egy pár polimerlánc kelátkötést hozhat létre egy kalcium-ionnal. Száldiffrakciós- és modellvizsgálatokkal igazolták, hogy az alginsav kanyargós szerkezettel rendelkező polimannuronsav és poliguluronsav alkotórészei képesek összeakadni és kicsapódni. Ez alapján, valamint a gélek tulajdonságait is figyelembe véve arra lehet következetni, hogy bár az alginát mindkét szegmense részt vesz a keresztkötések létrehozásában [52], főként a guluronsav egységek között alakul ki [53]. A 3. ábra a kalcium-alginát szerkezetét szemlélteti. 3. ábra Kalcium-alginát szerkezete [54] Az alginát a gyengén felszívódó vegyületek abszorpcióját is képes növelni a vegyület tranzit idejének meghosszabbításával [55,56]. Ennek oka, hogy a számos karboxil csoportot tartalmazó anionos vegyület a töltések következtében jó mukoadhezivitással rendelkezik [57,58]. Az orális alkalmazásra szánt készítmények fejlesztése során 22
gyakran kihasználják az alginát azon tulajdonságát, hogy alacsonyabb ph-val rendelkező oldatokban csökken a makromolekulák felszabadulása [59-61], amelynek oka, hogy a gyomorsav hatására a hidrált nátrium alginát egy porózus, vízoldhatatlan alginsavvá alakul a készítmény felszínén, amely magasabb ph-val rendelkező oldattal való érintkezést követően vízoldékony viszkózus réteggé alakul [62]. A kalcium-alginát tartalmú mikrokapszulák előállítása során bizonyos mértékű hatóanyagveszteség következik be a hatóanyag pórusokon keresztül történő kiáramlása miatt, amely a kalcium-alginát képződésével párhuzamosan történik [63,64]. Ennek kiküszöbölésére különböző polimereket (kitozán, zselatin) adnak az algináthoz [65-68] vagy kémiailag módosítják annak szerkezetét [69]. Az állati eredetű kollagénből nyerhető zselatin egy tisztított fehérje, amelynek előállításától függően két típusát tudjuk megkülönböztetni: részleges, savas hidrolízissel előállított A-típus és a részleges, lúgos hidrolízissel készült B-típus. A vegyület fontos minőségi jellemzője az izoelektromos pont, ahol a vegyület kicsapása történik. Az A- típusú zselatin izoelektromos pontja ph 7,0 9,0-nél, a B-típusú zselatiné ph 4,7 5,6- nél figyelhető meg [70]. Biodegradábilis tulajdonságokkal rendelkező cellulóz származékok közé tartozik a hidroxipropilmetilcellulóz (HPMC) és hidroxietilcellulóz (HEC). Az előbbi viszkózus gélek kialakítására alkalmas, míg az utóbbi nagy vízmegkötő kapacitással rendelkező nemionos hidrokolloid [71]. A HPMC a szubsztitúciós csoportok számától és típusától függően eltérő tulajdonsággal rendelkezik [72]. Az utóbbi időben egyre több kutató próbálja az alginát és HPMC előnyös tulajdonságait ötvözni a két vegyület keverékének alkalmazásával [73-75], mindemellett az alginát és HEC együttes felhasználására is végeztek kísérleteket [76]. 3.3.5. Mikrokapszulák hatóanyagleadása A mikrokapszulában lévő hatóanyag felszabadulása többféle mechanizmus útján valósulhat meg, például diffúzióval, polimer degradációval, hidrolízissel vagy erózióval [77]. 23
A mikrokapszulázási eljárás során a bevonat összetétele és vastagsága alapvetően meghatározza a készítmény hatóanyagleadó tulajdonságát. A kapszula falvastagsága (h) a polimer-farmakon arány változtatásával szabályozható. A bevonat és a farmakon tömegének aránya (M b /M f ) a kővetkező összefüggés alapján számítható ki: M M b f f 4 3 r 3 3 m rf b (1) 4 3 ahol, r f és r m a farmakon és a mikrokapszula sugara, f és b a farmakon és a bevonat sűrűsége [8]. A mikrokapszula felépítését a 4. ábra mutatja. mikrokapszulafal mikrokapszulamag h r m r f 4. ábra Mikrokapszula felépítése 3.3.6. Mikrokapszulák fizikai vizsgálata A különböző hatóanyagokkal és előállítási paraméterekkel gyártott mikrokapszulák eltérést mutatnak számos fizikai tulajdonságban, például átlagos szemcseméret, felületi, geometriai tulajdonságok, duzzadás és erózió mértéke. Az előbb említett tulajdonságok befolyásolják a hatóanyag biofarmáciai viselkedését a szervezetben és meghatározzák további feldolgozhatóságukat, például tablettázhatóságukat, bevonhatóságukat, ami szükségessé teszi a mikrokapszulák fizikai paramétereinek előzetes ismeretét. 24
3.3.6.1. Gördülékenység Szilárd szemcsehalmazok folyási tulajdonsága fontos anyagjellemző, amelynek megfelelő értéke elengedhetetlen a mikrokapszulák tablettázásánál és kapszulázásnál. A szemcsehalmazok gördülékenységét befolyásoló tényezők közé tartozik például a szemcseméret-eloszlás, a szemcse alaki- és felületi jellemzői, a nedvességtartalom és az elektrosztatikus feltöltődés. 3.3.6.2. Deformitási faktor A részecskék deformitási faktora a mikrokapszulák gördülékenységét, préselhetőségét és bevonhatóságát egyaránt befolyásoló alaki paraméter. Értéke minél inkább megközelíti az egyet, a szemcse annál inkább izometrikus 78,79. F X min / X max (2) ahol, X min a legkisebb mért átmérő és X max a legnagyobb mért átmérő. Meghatározására okulárskálával ellátott mikroszkóp és különböző szemcseméret analizáló számítógépes programok (pl.: Image Pro Plus, Media Cybernetics) alkalmazhatók. Az utóbbi a szemcsékről készített felvételek alapján adja meg a deformitási faktor értékét. 3.3.6.3. Átlagos szemcseméret Szemcsehalmaz jellemzésére szolgáló átlagos szemcseméret ( x ) meghatározható az előbb említett Imige Pro Plus számítógépes program felhasználásával; de 20 μm felett gyakrabban alkalmazzák a szitaanalízist, amely során a kapott gyakorisági görbe adataiból meghatározható a kért érték a következő egyenlettel 80 : x d i i / 100 x (3) ahol, x i az i-edik frakció alsó és felső mérethatárának átlaga és d i az i-edik frakció %-os mennyisége. 25
3.3.6.4. Az erózió mértékének meghatározása A mikrokapszulák előállítására használt anyagok biodegradábilis tulajdonsággal rendelkezhetnek, ezért a készítmény különböző kioldóközegben történő eróziója befolyásolhatja a hatóanyagleadást. Az erózió (E) mértékének meghatározásához a mikrokapszulák tömegét kell lemérni a kioldódás kezdetekor, majd a kioldódás után száraz állapotban. Az eredményt százalékban szokás megadni, amelynek értékét a következő egyenlettel határozzák meg: W W W / W 100% E (4) o d r o ahol, W o a száraz mikrokapszulák tömege, W d a kioldódás után szárított mikrokapszulák tömege és a W r a kioldódás során felszabadult hatóanyagmennyiséget jelenti 81. 3.3.6.5. Duzzadás A mikrokapszulák előállítása során duzzadó képességgel rendelkező polimerek is alkalmazhatók, amely lehetőséget kínál a hatóanyagleadás profiljának módosítására. Ebben az esetben a mikrokapszulák duzzadása meghatározó szerepet játszik a folyamatban. A polimerek hidrofilicitása és hidrofóbicitása gyakran meghatározza a hatóanyag készítményből történő felszabadulásának mechanizmusát. A hidrofil polimerek nagy vízfelvételi sebességgel rendelkeznek, míg a hidrofób polimereket a víz nem nedvesíti és ezáltal duzzadó képességgel sem rendelkeznek 7. A mikrokapszulák vízfelvételének meghatározása azok tömeg növekedésének mérésével lehetséges. Az egyensúlyi vízfelvétel (EWU) százalékos értékének meghatározásához a következő egyenlet használható fel: W W / W 100% EWU (5) s o s ahol, W s a duzzadt mikrokapszulák tömege és a W 0 a száraz mikrokapszulák tömege 82,83. 26
A folyadék mátrixba történő penetráció kinetikájának elemzésére a Davidson-Peppas modell alkalmazható 84,85 : W p n p p K p t (6) ahol, W p a duzzadt mikrokapszula tömegének növekedése, K p a víz penetrációjának kinetikai konstansa, t p a penetrációhoz szükséges idő és n p egy kitevő, amely a folyadék penetrációs mechanizmusától függ. A W p és n p értékeinek meghatározásához lineáris regressziót használnak. 3.3.6.6. Számítógépes képanalízis A gyógyszerforma tervezése során a szemcsék morfológiai tulajdonságának fontos szerepe van. A gyógyszerrendszerek fizikai kémiai tulajdonságai egyaránt függenek a szemcsék alakjától, méretétől, felületi geometriájától. A szemcseméret meghatározására off-line, in-line, at-line és on-line módszerek is rendelkezésekre állnak, amelyek közül az at-line és on-line mérések a leggyakrabban alkalmazottak, mint például a szitaanalízis és a számítógépes képelemzés. Az utóbbi időben egyre gyakrabban alkalmazzák a mikroszkópos analízist, amely a szemcsék méretének, alakjának, szerkezetének és morfológiai sajátságainak meghatározására egyaránt alkalmas. A mikroszkópos képanalízis során egyrészt a szemcse vetülete kerül meghatározásra, másrészt a legnagyobb átmérő, mivel a szemcsék a nagyobb felületű oldalukon helyezkednek el stabilan. A szemcsék képanalízise során a mikroszkóppal felnagyított képről a fényérzékelő révén keletkezett elektromos impulzusok kerülnek digitalizálásra, amelynek kiértékelése egy számítógépes képanalizáló program segítségével oldható meg. A digitalizált kép elemi képpontok kétdimenziós hálózatából épül fel. A kép minőségének javítása szoftveres úton megvalósítható. A pontos alaki paraméterek meghatározásához egy minimális képelem-felbontás szükséges. 27
A szemcsealak képanalízisének elsődleges jellemzői a következők: Martin-féle átmérő: a vizsgált szemcse területét két egyenlő nagyságú területre osztó vonal hosszúsága, Feret-féle átmérő: mérés irányára merőleges két érintő egymástól mért távolsága, Horizontális és vertikális átmérő, Maximális hosszúság: leghosszabb méret, Maximális szélesség, Deformitás faktor: szemcse maximális és minimális átmérőjének aránya, Egyenértékű területi átmérő: szemcse területével megegyező területű kör átmérője, Egyenértékű kerületi átmérő: azon kör átmérője, amelynek kerülete megegyezik a vizsgált szemcse körvonalának hosszával, Kerekdedség, amelynek meghatározása a következő egyenlettel lehetséges: C 4 A 2 P (7) ahol C a köralakúság tényezőjét fejezi ki, míg A a szemcse vetületének területét és P a szemcse vetületi körvonalának hosszát. Ideális köralak esetén C értéke 1, és minél távolabb van 1-től, a szemcse alakja annál inkább eltér a szabályos körtől [86]. 3.3.7. Biofarmáciai vizsgálatok 3.3.7.1. In vitro hatóanyag-felszabadulás vizsgálat Az in vitro kioldódás vizsgálatok alapvető lépését képezik a gyógyszerfejlesztéseknek. Számos teória és kinetikai modell létezik, amely leírja a hatóanyag felszabadulását az azonnali vagy módosított hatóanyagleadó gyógyszerformákból. A hatóanyag típusa, polimorfiája, kristályszerkezete, részecske mérete, oldékonysága és az adott gyógyszerformába töltött mennyisége jelentősen befolyásolja a felszabadulás kinetikáját [87]. A gyógyszerformából felszabadult 28
hatóanyag mennyiségét az idő függvényében ábrázolva megkapjuk a jellemző kioldódási görbéket, amelyek alakja eltérő lehet. Megkülönböztetünk egyenes, szigmoid és exponenciális görbéket. A kioldódás profilok összehasonlító értékelésére modellfüggő, statisztikai és modell-független módszerek állnak rendelkezésre. A modell-független értékelő módszerek a különböző kioldódási profilok értékelésére és összehasonlítására alkalmazhatók. Statisztikai próbát használva határozzák meg egy mintaátlag várható értéktől való eltérését és a megbízhatósági (konfidencia-) intervallumot. Továbbá vizsgálják, hogy az egész sokaságra teljesül-e a minőségi szabványelőírás (hipotézisvizsgálatok) [88]. A következő módszerek tartoznak ebbe a körbe: egyedi kioldódási profilt jellemző értékek és azok összehasonlítása, kioldódási hatékonyság, párosított kioldódási adatok összehasonlítása, illeszkedési tényezők, többváltozós statisztikai módszerek. Az egyedi kioldódási profilt jellemző értékek alkalmazása esetén adott időponthoz tartozó minta kioldódási értékeit először megfelelő mutatószámmal (átlag, tapasztalati szórás) kell jellemezni, majd két minta esetén t-próbát, kettőnél több minta esetén szóráselemzést alkalmazva az értékek összehasonlíthatók. A kioldódási hatékonyság (D.E.) meghatározásakor a kioldódási görbe adott időpontig számított görbe alatti területértékét vonatkoztatjuk ugyanazon időpontig számított maximális (100%) kioldódásnak megfelelő görbe alatti terület értékére [87], amely a következő egyenlettel határozható meg: D. E. t 0 M M t dt 100% 100 t (8) ahol M t a kumulatív százalékos kioldódást t időben és M 100% a 100%-os kioldódást jelenti. A hatékonysági érték meghatározását 70-90%-os kioldódási értékek tartományában célszerű elvégezni. 29
Az illeszkedési faktorokon alapuló modell-független értékelés alkalmazásakor közvetlenül a referens és minta készítmény adott időpontban mért százalékos kioldódás értékeinek összehasonlítása történik [89-94], amelyet a különbözőségi faktorral (f 1 ) és hasonlósági faktorral (f 2 ) lehet kifejezni: n Tt Rt t 1 f 1 n 100 (9) R t 1 t f 2 100 50 log10 (10) n 2 wt Tt Rt t 1 1 n ahol a R t a referens készítményből t időpontban kioldódott %-os hatóanyag mennyiséget, T t a vizsgálati készítményből kioldódott %-os hatóanyag mennyiséget és n a mintavételi időpontok számát jelenti. A különbözőségi faktor (f 1 ) értékének megadása %-ban történik, amelynek értéke ha 0, a két készítmény kioldódási profilja egybevágónak tekinthető, ha értéke 0-15 közötti, akkor szignifikáns különbség nem mutatható ki. A hasonlósági faktor (f 2 ) értéke 0 és 100 közötti dimenziómentes szám, amely értéke ha 50 fellett van, a kioldódási profil hasonlónak tekinthető. A hasonlóság értékelésekor a következő feltételeknek kell teljesülnie: legalább 3 mintavételi időpont (0 kivéve), mindkét készítményre legalább időpontonként 12 egyedi érték, mindkét készítményre legfeljebb egy 85%-os kioldódásnál nagyobb érték figyelembevétele, mindkét készítmény variációs koefficiense kisebb legyen 10%-nál a második időponttól az utolsóig, az első korábbi időpontnál (15 perc) ne haladja meg a 20%-t. 30
Az FDA a többváltozós statisztikai módszer alkalmazását javasolja a hasonlósági faktor helyett, abban az esetben, ha a gyártási tételen belüli különbség 15% a variációs tényező vonatkozásában [95-98]. A modell-függő értékelés során a mért kioldódási adatokra különböző függvények illesztése történik. Ez az értékelési mód a függvény által meghatározott kioldódási profilok sebességi állandóinak statisztikai összehasonlítására alkalmazható, abban az esetben, ha az illesztett kinetikai modellek a két készítmény esetében megegyezők és a sebességi állandók mértékegysége is azonos [99]. A következő modellek tartoznak ide: nulladrendű kinetikai modell, amely a nem dezintegrálódó gyógyszerformából történő egyenletes lassú hatóanyagfelszabadulás kiértékelésére alkalmas [87], elsőrendű kinetikai modell, amely számos hatóanyag kioldódásának, abszorpciójának és/vagy eliminációjának leírására használható [87], Weibull-modell, amely alkalmazható majdnem minden kioldódás típusra a nulladrendű kinetikát kivéve [87,100-103], Higuchi modell, amely a módosított hatóanyagleadású gyógyszerkészítményből történő hatóanyag felszabadulás leírására, valamint vízoldékony hatóanyagok mátrix tablettából való kioldódásának jellemzésére használható [87,104-107], Hixon-Crowell modell, amely olyan gyógyszerkészítményeknél alkalmazható, amelyek geometriája konstans marad a kioldódás során [87], Korsmeyer-Peppas modell, amely a polimer tartalmú gyógyszerkészítményből történő hatóanyag felszabadulás kinetikájának leírására használható, abban az esetben, ha a felszabadulás mechanizmusa pontosan nem ismert [87,108-110], Baker-Lonsdale modell, amely a mikrokapszulából és mikroszférekből történő hatóanyag felszabadulás linearizálására alkalmas [87,111] és Hopfenberg modell, amely abban az esetben alkalmazható, amikor a mátrix eróziója a sebesség meghatározó lépés a hatóanyag felszabadulás során [87,112]. 31