A fehérje triptofán enantiomereinek meghatározása



Hasonló dokumentumok
01/2008: MÉRŐOLDATOK

Biodízel előállítása hulladék sütőolajból

1. Melyik az az elem, amelynek csak egy természetes izotópja van? 2. Melyik vegyület molekulájában van az összes atom egy síkban?

Aprómagvak szárítása és pattogatása

LACTULOSUM LIQUIDUM. Laktulóz-szirup

Szilárd gyógyszerformák hatóanyagának kioldódási vizsgálata

DOKTORI (PhD) ÉRTEKEZÉS TÉZISEI

Fizikai vízelőkészítés az alkímia és a korszerű technika határán

ADEPS LANAE. Gyapjúviasz

Izopropil-alkohol visszanyerése félvezetőüzemben keletkező oldószerhulladékból

Trypsinum Ph.Hg.VIII. Ph.Eur TRYPSINUM. Tripszin

Témavezető neve Földiné dr. Polyák lára.. A téma címe Komplex vízkezelés természetbarát anyagokkal A kutatás időtartama:

VIZES INFÚZIÓS OLDATOK TARTÁLYAINAK ELŐÁLLÍTÁSÁHOZ HASZNÁLT LÁGYÍTOTT POLI(VINIL- KLORID)-ALAPÚ ANYAGOK

RETARD KARBAMID ALAPÚ TERMÉKCSALÁD. Karba-GO % retard karbamidot tartalmazó fehérje-kiegészítő

Hidrogén előállítása tejcukor folyamatos erjesztésével

Aminosavak, peptidek, fehérjék

ETANOLTARTALOM

Tárgyszavak: Diclofenac; gyógyszermineralizáció; szennyvíz; fotobomlás; oxidatív gyökök.

Modern Mérnöki Eszköztár Kockázatalapú Környezetmenedzsment megalapozásához (MOKKA) 2. jelentés. BME III/4.b. 1.

MTA Doktori értekezés

Mszaki zománc egy high-tech anyag Dipl. Ing. Daniel Renger, De Dietrich Process Sistems Mitteilungen,

Azonosító jel: KÉMIA EMELT SZINTŰ ÍRÁSBELI VIZSGA október :00. Az írásbeli vizsga időtartama: 240 perc

A sejtek élete. 5. Robotoló törpék és óriások Az aminosavak és fehérjék R C NH 2. C COOH 5.1. A fehérjeépítőaminosavak általános

EMELT SZINTŰ ÍRÁSBELI VIZSGA

I. Szerves savak és bázisok reszolválása

DOKTORI (PhD) ÉRTEKEZÉS TÉZISEI

CARBOMERA. Karbomerek

XANTHANI GUMMI. Xantán gumi

OTKA beszámoló

DOKTORI (PhD) ÉRTEKEZÉS TÉZISEI NYUGAT-MAGYARORSZÁGI EGYETEM MEZŐGAZDASÁG- ÉS ÉLELMISZERTUDOMÁNYI KAR MOSONMAGYARÓVÁR TAKARMÁNYOZÁSTANI TANSZÉK

O k t a t á si Hivatal

Tárgyszavak: alakmemória-polimerek; elektromosan vezető adalékok; nanokompozitok; elektronika; dópolás.

A 2007/2008. tanévi Országos Középiskolai Tanulmányi Verseny második fordulójának feladatlapja. KÉMIÁBÓL I. kategóriában ÚTMUTATÓ

2000/2001. KÉMIA II. forduló II. kategória

Oktatáskutató és Fejlesztő Intézet TÁMOP / XXI. századi közoktatás (fejlesztés, koordináció) II. szakasz KÉMIA 4.

Vállalkozás alapítás és vállalkozóvá válás kutatás zárójelentés

(R)-N,N-diizopropil-3-(2-hidroxi-5-(hidroximetil)fenil)-3- fenilpropilamin rezolválása (R)-N-acetil fenilglicinnel

NÖVÉNYI HATÓANYAGOK KINYERÉSE SZUPERKRITIKUS EXTRAKCIÓVAL

TERMÉKMINŐSÍTÉS ÉS TERMÉKHIGIÉNIA. Az Agrármérnöki MSc szak tananyagfejlesztése TÁMOP /1/A

AQUA AD INIECTABILIA. Injekcióhoz való víz. Letöltetlen, injekcióhoz való víz

A szabad és fehérjében kötött triptofán-enantiomerek meghatározása különböző hidrolízismódszerek alkalmazásával

AQUA PURIFICATA. Tisztított víz. Letöltetlen, tisztított víz

AMMÓNIA TARTALMÚ IPARI SZENNYVÍZ KEZELÉSE

(11) Lajstromszám: E (13) T2 EURÓPAI SZABADALOM SZÖVEGÉNEK FORDÍTÁSA

5.10. GYÓGYSZERANYAGOK SZENNYEZÉSVIZSGÁLATA

KÖZÉPSZINTŰ ÍRÁSBELI VIZSGA

Curie Kémia Emlékverseny 10. évfolyam országos döntő 2011/2012 A feladatok megoldásához csak periódusos rendszer és zsebszámológép használható!

FLUDARABINI PHOSPHAS. Fludarabin-foszfát

Kapszulák Ph.Hg.VIII-Ph.Eur KAPSZULÁK. Capsulae

XII. Reakciók mikrohullámú térben

KONDUKTOMETRIÁS MÉRÉSEK

ZÁRÓJELENTÉS ÉVBEN

Feladatok haladóknak

Az orvosi kamilla (Matricaria recutita L.) nemesítését megalapozó vizsgálatok

Ipari n-hexán-frakcióban, mely 2 % C 6 -izomert tartalmazott néhány tized % pentán mellett, a benzol koncentrációját 0-5 % között, a C 2 H 5 SH-ként

LACTOSUM ANHYDRICUM. Laktóz, vízmentes

NEM STERIL TERMÉKEK MIKROBIOLÓGIAI VIZSGÁLATA: VIZSGÁLAT MEGHATÁROZOTT MIKROORGANIZMUSOKRA

APROTININUM. Aprotinin

HEPARINA MASSAE MOLECULARIS MINORIS. Kis molekulatömegű heparinok

Kémia emelt szintű érettségi írásbeli vizsga ELEMZÉS (BARANYA) ÉS AJÁNLÁS KÉSZÍTETTE: NAGY MÁRIA

AQUA VALDE PURIFICATA. Nagytisztaságú víz

(11) Lajstromszám: E (13) T2 EURÓPAI SZABADALOM SZÖVEGÉNEK FORDÍTÁSA. (54) S-omeprazol magnéziumsó szilárd alakjai és eljárás elõállításukra

b./ Hány gramm szénatomban van ugyanannyi proton, mint 8g oxigénatomban? Hogyan jelöljük ezeket az anyagokat? Egyforma-e minden atom a 8g szénben?

Szerkesztette: Vizkievicz András

Gondolatok a DIN-ISO Üvegzománcbevonatok kopásállóságának vizsgálata - körül

Speciálkollégium. Dr. Fintor Krisztián Magyary Zoltán Posztdoktori Ösztöndíj TÁMOP A/ Nemzeti Kiválóság Program Szeged 2014

A VÍZ OLDOTT SZENNYEZŐANYAG-TARTALMÁNAK ELTÁVOLÍTÁSA IONCSERÉVEL

Lakossági és közigazgatási

Excitátoros aminosav neurotranszmitterek meghatározása biológiai mintákból kapilláris elektroforézissel

GINSENG RADIX. Ginzenggyökér

Nemenzimatikus glikáció vizsgálata új bioanalitikai módszerekkel

AMOXICILLINUM TRIHYDRICUM. Amoxicillin-trihidrát

Klorózis megszüntetése karácsonyfatelepen

Javítókulcs (Kémia emelt szintű feladatsor)

VÍZKEZELÉS Kazántápvíz előkészítés ioncserés sómentesítéssel

A Biomassza hasznosítás kémiai folyamatainak tanulmányozása c. OTKA pályázat zárójelentése (K 72710/KM2, )

PLASMA HUMANUM COAGMENTATUM CONDITUMQUE AD EXSTIGUENDUM VIRUM. Humán plazma, kevert, vírus-inaktiválás céljából kezelt

Az idősek alábecsülik saját számítástechnikai ismereteiket?

IMMUNOGLOBULINUM HUMANUM NORMALE AD USUM INTRAVENOSUM. Humán normál immunglobulin intravénás alkalmazásra

A kémiai egyensúlyi rendszerek

ACIDUM ASCORBICUM. Aszkorbinsav

Szteroid gyógyszeranyagok tisztaságvizsgálata kromatográfiás technikákkal

Síkkromatográfia. Kapacitásaránynak (kapacitási tényezőnek): a mérendő komponens állófázisában (n S ) és mozgófázisában (n M ) lévő anyagmennyiségei.

2. SZÉNSAVSZÁRMAZÉKOK. Szénsav: H 2 CO 3 Vízvesztéssel szén-dioxiddá alakul, a szén-dioxid a szénsav valódi anhidridje.

1. feladat Összesen: 10 pont. 2. feladat Összesen: 6 pont. 3. feladat Összesen: 18 pont

ZÁRÓJELENTÉS. Fény hatására végbemenő folyamatok önszerveződő rendszerekben

2006R1907 HU

Szerves oldószerek vízmentesítése zeolitokkal

Hajtatott paprika fajtakísérlet eredményei a lisztharmat elleni növényvédelmi technológiák és a klímaszabályozás tükrében

( -Mitteilungen, 2008/2)

Kémia OKTV 2005/2006. II. forduló. Az I. kategória feladatlapja

1. Kolorimetriás mérések A sav-bázis indikátorok olyan "festékek", melyek színüket a ph függvényében

A mezőgazdaság szerepe a nemzetgazdaságban, 2012

Talcum Ph.Hg.VIII. Ph.Eur TALCUM. Talkum

A TITRÁLÁSOK GYAKORLATA

1. ábra. Jellegzetes heteropolisav-szerkezetek, a Keggin-, illetve Dawson-anion

Kompenzátoros szintezőműszer horizontsík ferdeségi vizsgálata

6. RADIOAKTIVITÁS ÉS GEOTERMIKA

Klasszikus analitikai módszerek:

Gyógyszerhatóanyagok azonosítása és kioldódási vizsgálata tablettából

Átírás:

A fehérje triptofán enantiomereinek meghatározása Dr. Csapó János A kutatás célja megfelelő analitikai módszer kidolgozása a triptofán-enantiomerek meghatározására, és a módszer alkalmazhatóságának vizsgálata. A munkatervben vállaltuk a lehetséges hidrolízismódszerek vizsgálatát, HPLC elválasztási technika kidolgozását és validálását a triptofán-enantiomerek meghatározása szempontjából. Vállaltuk továbbá, hogy a kidolgozott módszer segítségével vizsgáljuk a triptofán racemizációját különböző körülmények között modelloldatokban, valamint élelmiszer- és takarmány-alapanyagokban (szója, kukorica). Munkatervtől való eltérések: Munkatervünkben vállaltuk, hogy megvizsgáljuk a triptofán racemizációját szójában, ill. kukoricában termikus kezelések hatására. A módszerfejlesztés során azonban nem sikerült olyan hidrolízismódszert találnunk, ami lehetővé tette volna a minták analízisét, azok magas szénhidrát-tartalma miatt. Helyettük magas fehérjetartalmú, állati eredetű alapanyagokban határoztuk meg a triptofán-enantiomerek mennyiségét. A kutatási eredmények az alábbiak: 1. Analitikai módszerfejlesztés Először egy analitikai módszert kellett kidolgozni a Trp-enantiomerek elválasztására, hiszen enélkül a hidrolízismódszereket sem tudtuk volna megvizsgálni. A Trp-enantiomerekből OPA-val és TATG-vel képeztünk származékokat, és az így létrejövő diasztereoizomereket akirális állófázisú oszlopon, fordított fázisú folyadékkromatográfiás rendszerben választottuk el egymástól. A módszerfejlesztésnél kétféle standard oldattal dolgoztunk az egyéb aminosavszármazékok interferenciájának kiszűrése érdekében. Az egyik oldat csak D- és L-Trp-t, a másik az élelmiszerfehérjékben előforduló többi aminosav D- és L-enantiomerjét tartalmazta. Az elválasztás optimálása során változtattuk az állófázis minőségét, a mozgófázis összetételét, ezen belül a szerves fázis arányát és minőségét (metanol, acetonitril, vagy mindkettő). Miután a módszerfejlesztést befejeztük, elvégeztük az analitikai módszer validálását is. 2. Hidrolízismódszerek vizsgálata Az élelmiszer- és takarmányfehérjékben előforduló aminosavak közül talán a triptofán (Trp) mennyiségének pontos meghatározása a legnehezebb. A többi aminosavval szemben, a Trp fehérjeláncból való felszabadításához nem alkalmazható az elterjedten használt 110 ºC-on, 24 óráig, 6 M sósavoldattal végzett hidrolízis, mivel a Trp teljesen elbomlik ilyen körülmények között. A Trp-bomlás csökkentése céljából a "klasszikus" fehérje-hidrolízis módszerét módosítani kell. Ez egyrészt úgy valósítható meg, hogy a szokásos savas közegű elegyhez redukálószereket adunk, a másik megoldás lúgos közegű hidrolízismódszerek alkalmazása. Annak ellenére, hogy a lúgos hidrolízismódszerek jó eredményeket adnak a Trp-tartalom meghatározása esetén, jelen kutatás feltételeit nem elégíti ki, hiszen a lúgos közeg az aminosavak racemizációját felgyorsítja, így az egyes enantiomerek mennyiségi meghatározását lehetetlenné teszi. Ezért a triptofán-enantiomerek meghatározásához savas hidrolízismódszer alkalmazása szükséges.

2.1. Merkapto-etán-szulfonsavas hidrolízis Merkapto-etán-szulfonsav jelenlétében nem alakultak ki az aminosavak OPA-TATG származékai, melynek valószínűsíthető oka az volt, hogy a TATG helyett a MES képzett származékot az OPA-val és a Trp-nal. A MES eltávolítása, illetve szulfhidril-csoportjának átalakítása céljából több módszerrel próbálkoztunk. Először a MES-ból réz-merkaptid csapadékot képeztünk, majd a csapadékot centrifugálással eltávolítottuk, és a felülúszó oldat aliquot részével végeztük el a származékképzést, azonban a Trp-származékok jelét a merkaptidok eltávolítása után nem észleltük. Ezt követően a MES-t perhangyasavval diszulfonsavvá oxidáltuk. Mivel a perhangyasav reagálhat a triptofánnal, és feleslege a származékképző reagensekkel is, az egész folyamatot ugyanolyan körülmények között megvalósítottuk alaninnal (Ala) is, melynek oldallánca (Rcsoportja) nem érzékeny az oxidatív átalakulásokra. A perhangyasav feleslegét nátriummetabiszulfittal kötöttük meg. Ilyen körülmények között sem jelent meg a Trp és az Ala diasztereoizomer származékainak a jele a kromatogramon, tehát sem a Trp, sem az Ala OPA- TATG származéka nem alakult ki detektálható mennyiségben a MES perhangyasavas oxidációja és a perhangyasav-felesleg megkötését követő származékképzés során. A Trp esetében valószínűsíthető az oxidatív átalakulás N-formil-kinureninné. Legvégül a MES-t jódecetsavval karboxi-metil-származékká alakítottuk át, de a Trp-nak csak egy kis hányada alakult át OPA-TATG származékká, és a TATG koncentrációjának növelése sem vezetett eredményre. Vizsgáltuk, hogy megfelelő volt-e az oldatok ph-ja a származékképzéskor (ph=9,5), de nem tapasztaltunk eltérést. Kipróbáltuk a MeS-OH oldat származékképzés előtti semlegesítését, a ph 2-re, 6-ra, illetve 9-re állítását, de egyik esetben sem tapasztaltuk a diasztereoizomer-párok jelintenzitásának növekedését. 2.2. Para-toluol-szulfonsavas hidrolízis A MES hidrolízis nehézségei miatt, bár ez adja a legnagyobb kitermelést a triptofánra a savas módszerek közül (származékképzés nélkül, ioncserés oszlopkromatográfival meghatározva), a továbbiakban a para-toluol-szulfonsavra (PTS) koncentráltunk. Magas fehérjetartalmú juh hemoglobin és savófehérje koncentrátum mintákon végeztük el a hidrolízismódszerek vizsgálatát. A kísérletek során három különböző összetételű hidrolizáló elegyet használtunk. Megvizsgáltuk a Trp visszanyerést 3 M-os PTS oldattal, 3 M-os 0,2% 3-(2-amino-etil)indol (triptamin) tartalmú PTS oldattal, illetve szintén 3 M-os PTS oldattal 3-(3-indolil)-propionsav jelenlétében (a fehérje 3-(3-indolil)-propionsav tömegaránya 1 volt) elvégzett hidrolíziseket követően. A vizsgálatokhoz kb. 15 mg fehérjét tartalmazó mintát mértünk be orvosi ampullába, majd 5 cm 3 -t adtunk hozzá a hidrolizáló reagensből. Az ampullákba két percig nitrogéngázt vezettünk, majd leforrasztottuk, és 110±2 C-on tartottuk 24 órán keresztül. Ezt követően 4 M-os NaOH oldattal semlegesítettük és 25 cm 3 -es mérőlombikba téve desztillált vízzel jelre töltöttük, majd ötszörösére hígítottuk. PTS jelenlétében a származékképzés megfelelő módon végbement (1. ábra / C). Tisztított fehérje (juh hemoglobin) mintát vizsgálva azonban azt kaptuk, hogy csupán PTS jelenlétében a Trp-visszanyerés rendkívül alacsony, mindössze az eredeti Trp-tartalom 44±2%-a. Amennyiben követtük a szakirodalomban leírtakat, és a triptofán indolgyűrűjének védése érdekében triptamint adtunk az oldathoz, a származékképzés valószínűleg a triptamin aminocsoportja miatt nem megy végbe (1. ábra / B). A PTS hidrolízisek közül a legkedvezőbb eredményt azoknál a mintáknál kaptuk, ahol védőreagensként 3-(3-indolil)-propionsavat alkalmaztuk. A triptofánhoz hasonló szerketű vegyület ugyanis nem rendelkezik aminocsoporttal, így a származékképzésnél jelenléte nem okoz problémát. A magas fehérjetartalmú mintákkal (juh hemoglobin, savófehérje koncentrátum) elvégezve a hidrolíziseket, a mintában jelenlevő Trp mennyiségének 88±3%-a megmaradt. A magas visszanyerés mellett az is a módszer mellett szól, hogy a kimutatható

Trp kizárólag L-enantiomer formájában van jelen, ezért a hidrolízis során racemizációval nem kell számolni. L-Trp D-Trp A: D- és L-Trp standard B: D- és L-Trp standard PTS jelenlétében C: D- és L-Trp standard PTS jelenlétében triptamin hozzásadásával C B A A 1. ábra: A triptofán-enantiomerek diasztereomer származékainak elválasztása PTS hidrolízist követően triptamin hozzáadásával és anélkül 3. Trp racemizációjának vizsgálata 3.1. Szabad Trp racemizációja Az 1 mg/cm 3 L-Trp-t tartalmazó oldatok ph-ját (3; 5; 7; 9; 11) 6 M sósav oldattal, illetve 4 M NaOH oldattal állítottuk be. Az oldatokat orvosi ampullába tettük és a leforrasztás előtt 2 percig nitrogéngázzal öblítettük, majd 100 ± 1 C-on 0; 5; 10; 20; 40; 60 percig, illetve 2; 4, 8; 12; 24; és 48 óráig melegítettük. A szabad L-Trp racemizációja nem volt jelentős az alacsonyabb ph-jú oldatokban (ph=3 7). Ennél lúgosabb körülmények alkalmazása esetén a D-Trp mennyisége 12 órás forralás után kezdett el növekedni, de a D L átalakulás mértéke kisebb volt, mint 1%. Az L-Trp mennyisége egy napos hőkezelést követően 2 5%-kal csökkent, de a racemizációhoz képest a többi átalakulási/bomlási folyamat nagyobb szerepet játszott a Trptartalom csökkenésében.

3.2. Fehérjében kötött Trp racemizációjának vizsgálata modelloldatokban 40 mg lysosimot (fehérjetartalom 98%, Trp-tartalom 7,41 g/100 g fehérje) orvosi ampullába mértünk, majd 5 cm 3 különböző ph-jú (3, 7, 9, 11, 13) oldatot adtunk hozzá. Az oldatok phját 6 M sósavoldattal, illetve 4 M NaOH oldattal állítottuk be. Az ampullákat a leforrasztás előtt 2 percig nitrogéngázzal öblítettük, majd 100 ± 1 C-on 0; 1; 4; 8; 16; 24; 32; 40; ill. 48 óráig melegítettük. Ezt követően az oldatokat 10 cm 3 -es mérőlombikokba mértük és annyi para-toluol-szulfonsavat oldottunk fel bennük, hogy a PTS-koncentráció 3 mol/dm 3 legyen. A kapott oldatokból 5 cm 3 -t újból orvosi ampullába mértünk, ami már tartalmazott 20 mg 3- indol-propionsavat, majd elvégeztük a minták hidrolízisét. A hidrolízist hőkezeletlen lysosimmal is elvégeztük, hogy a hidrolízisből adódó racemizációt és egyéb veszteségeket az eredmények értékelésénél figyelembe vehessük. Savas és semleges körülmények között nem tudtuk kimutatni a Trp racemizációját még 48 órás hőkezelést követően sem. Magasabb ph tartományok alkalmazása estén azonban tapasztaltunk némi átalakulást. Kilences ph-jú közegben 8 óra elteltével tudtuk először kimutatni a D-enantiomerek jelenlétét, a racemizáció mértéke (D/(D+L) arány) 48 óra elteltével elérte a 12%-ot. Tizenegyes ph-jú oldatok alkalmazása esetén már egy óra elteltével ki tudtuk mutatni a D-Trp-t, majd az átalakulás a kezelési idővel arányos 48 óra alatt elérte a 24%-ot. Még lúgosabb körülményt alkalmazva (ph=13) azt tapasztaltuk, hogy a racemizáció már egy óra alatt teljesnek mondható. 3.2. Élelmiszer- és takarmány-alapanyagok vizsgálata A szakirodalomban nem találtunk információt arra, hogy savas hidrolízist követően magas szénhidrát-tartalmú mintákból határoztak volna meg triptofánt. Ezért célul tűztük ki ilyen minták (szója, kukorica) vizsgálatát. A kutatási tervnek megfelelően fullfat szóját üzemi körülmények között tósztereztünk, valamint kísérleti extrúderrel száraz termikus kezelésnek vetettük alá. Az így kapott mintákból akartuk meghatározni a triptofán racemizációjának mértékét a termikus kezelések hatására. Elvégeztük a minták hidrolízisét, valamint HPLC analízisét, azonban a hidrolizátumokból csak jelentős veszteséggel (80 90%) tudtuk kimutatni a triptofánt. A tapasztaltak alapján, a szakirodalomban találtakkal összhangban, továbbra sem áll rendelkezésünkre olyan savas hidrolízismódszer, ami lehetővé tenné a triptofán meghatározását nagy szénhidrát-tartalmú mintából. Ennek megfelelően a termikus kezelések hatását a triptofánra sem a szója-, sem pedig a kukoricaminták esetén nem tudtuk vizsgálni. Ezen kísérletek helyett különböző állati eredetű mintákon vizsgáltuk, hogy a különböző technológiai beavatkozások mennyire befolyásolják a triptofán racemizációját. 3.3. Trp racemizációja húsokban sütés hatására Miután a tisztított fehérjék esetén megfelelő eredményeket értünk el, valós mintákon kívántuk a hidrolízismódszer alkalmazhatóságát ellenőrizni. Első lépésben magas fehérje- és alacsony szénhidrát-tartalmú húsmintákat vizsgáltunk, mivel a magas szénhidrát-tartalom előidézheti a Trp bomlását. A húsok sütésével a Trp racemizációját akartuk vizsgálni. A sütés során csökkent a húsok víztartalma, ami a szárazanyag- és nyersfehérje-tartalom növekedését eredményezte. Megfigyeltük azt is, hogy a sütés következtében, ha kis mértékben is, de csökkent a minták Trp-tartalma, ami szintén a Trp külső hatásokkal szembeni érzékenységét igazolja. A vizsgálatok eredményei alapján megállapítottuk, hogy az alkalmazott sütési körülmények között D-Trp nem képződött. Ezért az eredményeket tartalmazó 1. táblázatban csak a minták L-Trp-tartalmát tűntettük fel.

1. táblázat A sült húsokon végzett vizsgálatok eredményei Sütési idő perc Szárazanyagtartalom m/m% Nyersfehérjetartalom m/m% g Trp/100 g fehérje g L-Trp/100 g fehérje Visszanyerés 0 27,2 23,32 1,24 1,11 89,5 1 31,3 28,09 1,25 1,12 89,6 8 71,7 59,01 1,16 1,09 88,4 12 77,0 62,98 1,14 0,98 86,0 A mért L-Trp mennyiségek jó egyezést mutatnak az össz-trp-tartalommal. Ha a két hidrolízismódszerrel elvégzett analízis eredményeit összehasonlítjuk, azt kapjuk, hogy bár némileg kisebb Trp-mennyiséget tudtunk mérni a savas hidrolízist követően, azonban ez csak nagyon kis mértékben tér el a lúgos hidrolízis esetén kapott eredményektől. 3.4. Trp racemizációja vágóhídi hulladékokban lúgos kezelés hatására Az Európai Unió legújabb előírásai szerint kérődzők vágóhídi melléktermékét takarmányozásra csak akkor szabad felhasználni, ha azt relatíve tömény lúggal (kálium- vagy nátrium-hidroxiddal) magas hőmérsékleten (135 155 o C-on), hosszú ideig (2 6 óra) hidrolizálják. Korábbi vizsgálatainkból kitűnt, hogy minden olyan behatás, amely magas hőmérsékleten, lúgos kezeléssel jár, az aminosavak többségénél racemizációt okozhat. Alacsony hőmérsékleten lúggal kezelve a fehérjét, vagy magas hőmérsékleten semleges vagy savas környezetben végezve a hidrolízist is előfordulhat racemizáció, a lúgos kezelés és a magas hőmérséklet kombinációja pedig szinte biztos, hogy racemizációhoz vezet. Fenti hipotézis bizonyítására 400 g első kategóriájú, szarvasmarha vágóhídról származó vágóhídi hulladékot 600 cm 3 vízzel homogenizáltunk, majd hozzáadtunk 44 cm 3 45%-os kálium-hidroxid-oldatot, egy megismételt kísérletben pedig 30 cm 3 45%-os nátrium-hidroxidoldatot. A keveréket 135, 150 és 153 o C-on kettő, három és hat órán keresztül kezeltük, majd lehűlés után meghatároztuk az így kapott anyagok D-aszparaginsav- és D-glutaminsav-, valamint D-triptofán-tartalmát. Megállapítottuk, hogy még a legalacsonyabb hőmérsékleten és a legrövidebb ideig (135 o C, 2 óra) végzett NaOH-os hidrolízisnél az aszparaginsavnak 42,9%-a, a glutaminsavnak pedig 43,6%-a racemizálódott. Ha a hőmérsékletet 135 o C-ról 153 o C-ra emeljük, a racemizáció mértéke pár százalékkal nagyobb, azonban magas hőmérsékleten a 2 és a 6 órás hidrolízisidő alig okozott különbséget a racemizáció mértékében. Ha a hidrolízist nem nátrium-hidroxiddal, hanem kálium-hidroxiddal végezzük, a racemizáció mértéke szinte teljes mértékben egybeesik a nátrium-hidroxidnál mértével. A triptofán esetében megállapítottuk, hogy a kontrollhoz viszonyítva a lúgos kezelés során a hőkezelés idejétől és hőmérsékletétől függetlenül a triptofán mintegy 40%-a elbomlott, a maradék triptofánnak pedig 39 45%-a racemizálódott a hőkezelés során. Nem kaptunk egyértelmű összefüggést az alkalmazott hőmérséklet és a triptofán racemizációja között, az viszont egyértelműen kitűnik, hogy minél hosszabb a hőkezelés ideje, annál nagyobb volt, hacsak elenyésző mértékben is, a D-triptofán részaránya a mintában. Összefoglalva a kísérleteink eredményeit elmondhatjuk, hogy az általunk alkalmazott hőés lúgkombináció során az aszparaginsav és a glutaminsav mintegy 44%-a, a triptofánnak pedig 40 45%-a D-módosulattá alakul át. Amennyiben az így kapott hidrolizált termék egyéb

paraméterei meg is felelnének a korszerű takarmányozás feltételeinek, számolni kell azzal, hogy az aminosavak többsége teljes racemizációt szenved az eljárás során. Az új tudományos eredmények: Új módszert dolgoztunk ki a Trp-enantiomerek szétválasztására és meghatározására OPA/TATG származékképzést követően nagyhatékonyságú kromatográfiával. Az alkalmazott savas fehérje-hidrolízismódszerek közül a 3-(3-indolil)propionsavat tartalmazó 3 M-os p-toluol-szulfonsav oldattal optimális hidrolízis feltételeket dolgoztunk ki a fehérjében kötött Trp-enantiomerek meghatározására alacsony szénhidrát-tartalmú mintákból. Vizsgáltuk a szabad, valamint a fehérjében kötött Trp racemizációját a 3 13 ph tartományban. Szabad formában minimális volt a racemizáció, míg a peptidláncban lévő Trp racemizációja a lúgos tartományban jelentős mértékben megnőtt. A módszerünk megfelelőnek bizonyult magas hőmérsékleten, lúgos körülmények között feltárt, nagy fehérjetartalmú vágóhídi melléktermékek D- és L-Trp-tartalmának meghatározására. Tudományos közlemények: Az elért eredményekből 5 folyóiratcikkben, 6 konferencia kiadványban, 7 absztraktban számoltunk be. A kutatási téma további lehetséges irányai: A kidolgozott módszer alkalmas magas fehérje- és alacsony szénhidrát-tartalmú minták D-Trp tartalmának meghatározására, a technológia során kialakult racemizáció mértékének mérésére. A téma folytatását két úton lenne célszerű tovább végezni: 3-indol-propionsav mellett újabb indolcsoportot tartalmazó vegyületek kipróbálása a Trp savas hidrolízis közbeni elbomlásának visszaszorítására. A módszert mindenképpen tovább kellene fejleszteni alacsony fehérjetartalmú és magas szénhidrát-tartalmú mintákban (mint amilyen az élelmiszereink nagy része) történő Trp racemizációjának mérésére. Az elért eredmények hasznosítása: A módszerünk már jelenleg is alkalmas nagy fehérjetartalmú, magas hőmérsékleten lúggal kezelt vágóhídi melléktermékek D-Trp-tartalmának mérésére, magas hőmérsékleten előállított húsokban, húskészítményekben lejátszódó Trp racemizáció tanulmányozására. E termékek mérésére a módszert már szinte rutinszerűen alkalmazzuk a Kaposvári Egyetem Kémiai- Biokémiai Tanszékén. A módszer alkalmas Trp-tartalmú gyógyszerekben és élelmiszerkiegészítőkben lejátszódó racemizáció mértékének mérésére. Ajánlható élelmiszerés takarmányvizsgáló laboratóriumoknak, akik vizsgálataik közé beállíthatják a D-Trp tesztelését. A kutatáshoz felhasznált egyéb támogatások nem voltak.