Sejtmag forgolódás és pozícionálás bökögető mikrotubulusokkal. Ph.D. értekezés tézisei. Szikora Szilárd

Hasonló dokumentumok
A citoszkeleton Eukarióta sejtváz

2011. október 11. Szabad János

Sejtciklus. Sejtciklus. Centriólum ciklus (centroszóma ciklus) A sejtosztódás mechanizmusa. Mikrotubulusok és motor fehérjék szerepe a mitózisban

Balázs Anna. Az importin-béta 1 szerepe a kromatin 2 szerveződésében. Abstract

Búza tartalékfehérjék mozgásának követése a transzgénikus rizs endospermium sejtjeiben

A CITOSZKELETÁLIS RENDSZER Bugyi Beáta PTE ÁOK, Biofizikai Intézet. 9. A sejtmozgás mechanizmusai

A Molekuláris Biológiai, Genetikai és Sejtbiológiai. Tudományos Bizottság 2011-es tevékenysége

Sejtmozgás és adhézió Molekuláris biológia kurzus 8. hét. Kun Lídia Genetikai, Sejt és Immunbiológiai Intézet

PROGRAMFÜZET. "GENETIKAI MŰHELYEK MAGYARORSZÁGON" XIII. Minikonferencia SZEPTEMBER 12.

Citoszkeleton. Sejtek rugalmassága. Polimer mechanika: Hooke-rugalmasság. A citoszkeleton filamentumai. Fogászati anyagtan fizikai alapjai 12.

Egy Polycomb Response Element (PRE) in situ vizsgálata Drosophila melanogaster-ben génkonverzió segítségével. Kozma Gabriella

TDK lehetőségek az MTA TTK Enzimológiai Intézetben

Biofizika I

Tartalom. A citoszkeleton meghatározása. Citoszkeleton. Mozgás a biológiában A CITOSZKELETÁLIS RENDSZER 12/9/2016

ÖSZTÖNDÍJ BIOLÓGUSHALLGATÓKNAK ÖSZTÖNDÍJ PÁLYÁZATI FELHÍVÁS

Diabéteszes redox változások hatása a stresszfehérjékre

A Drosophila melanogaster poszt-meiotikus spermatogenezisében szerepet játszó gének vizsgálata. Ph.D. értekezés tézisei.

Molekuláris biológiai eljárások alkalmazása a GMO analitikában és az élelmiszerbiztonság területén

A bírálatban felvetett kérdéseket a következőképpen válaszolom meg.

A motorfehérjék definíciója. A biológiai motorok 12/9/2016. Motorfehérjék. Molekuláris gépek. A biológiai mozgás

Miben különbözünk az egértől? Szabályozás a molekuláris biológiában

KONFERENCIA TÁMOGATÓI CSOMAGOK ÉS KIÁLLÍTÁSI ÉRTESÍTŐ. Siófok, március

Biológia. Biológia 9/29/2010

A C1 orf 124/Spartan szerepe a DNS-hiba tolerancia útvonalban

Szegedi Biológiai Kutatóközpont Tudományos Diákkör. Dr. Kiss Antal. kiss.antal(at)brc.mta.hu.

A CITOSZKELETÁLIS RENDSZER (Nyitrai Miklós, )

ÖNÉLETRAJZ. Gyermekei: Lőrinc (1993), Ádám (1997) és Árpád (1997) Középiskola: JATE Ságvári Endre Gyakorló Gimnáziuma,

Irányítási struktúrák összehasonlító vizsgálata. Tóth László Richárd. Pannon Egyetem Vegyészmérnöki és Anyagtudományok Doktori Iskola

In vivo szövetanalízis. Különös tekintettel a biolumineszcens és fluoreszcens képalkotási eljárásokra

9. előadás: Sejtosztódás és sejtciklus

A doktori értekezés tézisei. A növényi NRP fehérjék lehetséges szerepe a hiszton defoszforiláció szabályozásában, és a hőstressz válaszban.

A plazma membrán mikrodomének szabályzó szerepe a sejtek növekedési és stressz érzékelési folyamataiban. Csoboz Bálint

A CITOSZKELETÁLIS RENDSZER FUTÓ KINGA

Biomolekulák nanomechanikája A biomolekuláris rugalmasság alapjai

A citoszkeletális rendszer

Szakmai önéletrajz. Tanulmányok: Tudományos minısítés:

Dr. Máthéné Dr. Szigeti Zsuzsanna és munkatársai

A biológiai mozgás molekuláris mechanizmusai

A zsírszövet mellett az agyvelő lipidekben leggazdagabb szervünk. Pontosabban az agy igen gazdag hosszú szénláncú politelítetlen zsírsavakban

Maléth József. Az endoplazmás retikulum - plazma membrán mikrodomének szerepe az intracelluláris Ca 2+ szignalizáció szabályzásában

BIOMECHANIKA 3 Erőhatások eredete és következményei biológiai rendszerekben

Vérkeringés. A szív munkája

KERINGŐ EXTRACELLULÁRIS VEZIKULÁK ÁLTAL INDUKÁLT GÉNEXPRESSZIÓS MINTÁZAT VIZSGÁLATA TROPHOBLAST SEJTVONALBAN

Preeclampsia-asszociált extracelluláris vezikulák

Az áramlási citométer és sejtszorter felépítése és működése, diagnosztikai alkalmazásai

Papp Henriett Ph.D hallgató. Tanulmányok: Biológus MSc

Biológiai módszerek alkalmazása környezeti hatások okozta terhelések kimutatására

A határsejtvándorlás szabályozásában résztvevœ gének azonosítása és jellemzése ecetmuslicában

Tubulin, mikrotubuláris rendszer és mikrotubulus asszociált fehérjék

A sejtváz. Mikrotubulusok (25 nm átmérő) Mikrofilamentumok (7 nm átmérő) Intermedier filamentumok (8-12 nm átmérő)

Biofizika I

Tubulin, mikrotubuláris rendszer és mikrotubulus asszociált fehérjék

Darvas Zsuzsa László Valéria. Sejtbiológia. Negyedik, átdolgozott kiadás

12. évfolyam esti, levelező

A sejtek lehetséges sorsa. A sejtek differenciálódása. Sejthalál. A differenciált sejtek tulajdonságai

KONFERENCIA TÁMOGATÓI CSOMAGOK ÉS KIÁLLÍTÁSI ÉRTESÍTŐ

XV. DOWN SZIMPÓZIUM Korszakváltás a klinikai genetikában

Citoszkeleton Sejtmozgás

Szakmai önéletrajz. Nyelvvizsga: Angol orvosi szaknyelv középfok (Bizonyítvány száma: D A 794/1997), orosz alapfok.

A vérképző rendszerben ionizáló sugárzás által okozott mutációk kialakulásának numerikus modellezése

A DOHÁNYZÁS OKOZTA DNS KÁROSODÁSOK ÉS JAVÍTÁSUK VIZSGÁLATA EMBERI CUMULUS ÉS GRANULOSA SEJTEKBEN. Sinkó Ildikó PH.D.

Tüdő adenocarcinomásbetegek agyi áttéteiben jelenlévő immunsejtek, valamint a PD-L1 és PD-1 fehérjék túlélésre gyakorolt hatása

Kis dózis, nagy dilemma

Minden ismert élőlény sejt(ek)ből épül fel A sejt a legegyszerűbb életre képes szerveződés. A sejt felépítése korrelál annak funkciójával

Vezető: Prof. Dr. Rechnitzer János egyetemi tanár. Brányi Árpád. okleveles közgazdász. Együttműködés a dunántúli borászati ágazatban


Az AT 1A -angiotenzinreceptor G-fehérjétől független jelátvitelének vizsgálata C9 sejtekben. Doktori tézisek. Dr. Szidonya László

Vezikuláris transzport

Doktori értekezés tézisei

Ph.D. értekezés tézisek. Venkei Zsolt. Szakvezető: Szabad János SZEGED 2006.

MAGASÉPÍTÉSI PROJEKT KOCÁZATAINAK VIZSGÁLATA SZAKMAI INTERJÚK TÜKRÉBEN 1 CSERPES IMRE 2

KÉRDŐÍV AZ EGYETEMI DOCENSI PÁLYÁZATOK ELBÍRÁLÁSÁNAK SZEMPONTJAIHOZ

klorid ioncsatorna az ABC (ATP Binding Casette) fehérjecsaládba tartozik, amelyek általánosságban részt vesznek a gyógyszerek olyan alapvetı

Biomolekuláris nanotechnológia. Vonderviszt Ferenc PE MÜKKI Bio-Nanorendszerek Laboratórium

Transzporterek vizsgálata lipidmembránokban Sarkadi Balázs MTA-SE Molekuláris Biofizikai Kutatócsoport, MTA-TTK Budapest

Mozgékony molekulák vizsgálata modern mikroszkópiával

Szegedi Tudományegyetem Sófi József Alapítvány ÖSZTÖNDÍJ BIOLÓGUS HALLGATÓKNAK

Rövid ismertető. Modern mikroszkópiai módszerek. A mikroszkóp. A mikroszkóp. Az optikai mikroszkópia áttekintése

Konferenciatámogatói csomagok és kiállítási felhívás

Magyarország, 4031, Debrecen szeptemberétől jelenleg is Ph.D. tanulmányok folytatása

SZAPORODÁSBIOLÓGIAI KUTATÁSOK A NÖVÉNYNEMESÍTÉS SZOLGÁLATÁBAN

Választás 2018 Budapest A REPUBLIKON INTÉZET ELEMZÉSE

BIOKÉMIA. Simonné Prof. Dr. Sarkadi Livia egyetemi tanár.

47. MEMBRÁN-TRANSZPORT KONFERENCIA PROGRAM, május Sümeg, Hotel Kapitány

TRANSZPORTFOLYAMATOK A SEJTEKBEN

SZAKMAI ÖNÉLETRAJZ Farkas Judit

sejt működés jovo.notebook March 13, 2018

Tudjunk Egymásról Bugyi Beáta 22/11/2012

MIKROSZKÓPIKUS GOMBÁK MIKOTOXIN-BONTÓ KÉPESSÉGÉNEK. Péteri Adrienn Zsanett DOKTORI ÉRTEKEZÉS TÉZISEI

Elektronmikroszkópos képek gyűjteménye az ÁOK-s hallgatók részére

DOKTORI ÉRTEKEZÉS TÉZISEI AZ OPPORTUNISTA HUMÁNPATOGÉN CANDIDA PARAPSILOSIS ÉLESZTŐGOMBA ELLENI TERMÉSZETES ÉS ADAPTÍV IMMUNVÁLASZ VIZSGÁLATA

Sejtbiológiai Tanszék

Jellemzői: általában akaratunktól függően működik, gyors, nagy erőkifejtésre képes, fáradékony.

VÉKONYLEMEZEK ELLENÁLLÁS-PONTKÖTÉSEINEK MINŐSÉGCENTRIKUS OPTIMALIZÁLÁSA

Miskolci Egyetem GÉPÉSZMÉRNÖKI ÉS INFORMATIKAI KAR. Osztályozási fák, durva halmazok és alkalmazásaik. PhD értekezés

OTKA ZÁRÓJELENTÉS Józsa Krisztián Kritériumorientált képességfejlesztés

Biofizika szeminárium. Diffúzió, ozmózis

Motorfehérjék november 30.; Nyitrai

Receptorok és szignalizációs mechanizmusok

Dodé Réka (ELTE BTK Nyelvtudomány Doktori IskolaAlkalmazott Alknyelvdok 2017 nyelvészet program) február 3. 1 / 17

Átírás:

Sejtmag forgolódás és pozícionálás bökögető mikrotubulusokkal Ph.D. értekezés tézisei Szikora Szilárd Biokémia, Biofizika és Sejtbiológia doktori program Szegedi Tudományegyetem Általános Orvostudományi Kar Orvosi Biológiai Intézet Szakvezető: Prof. Dr. Szabad János Szeged, 2012.

BEVEZETÉS Közismert, hogy a magasabbrendű élőlények legtöbb sejtjében egyetlen sejtmag van, benne a kromoszómák, azokban pedig a DNS, amely a sejtek funkcióit irányítja. A sejtmag többnyire egy meghatározott pozícióban van a sejten belül (Morris, 2000). Hogyan kerül oda? Mi, és hogyan mozgatja a sejtmagot? Mi annak a jelentősége, hogy a sejtmag jól meghatározott helyen van? Mi történik, ha a sejtmag nem kerül a helyére? Munkánk során ezekre a kérdésekre kerestük a választ. Miközben a citoplazma áramlás mechanizmusát tanulmányoztuk élő muslica petekezdeményekben (Gáspár and Szabad, 2009), arra lettünk figyelmesek, hogy a follikuláris sejtek magjai forgolódnak (1. ábra). A sejtmagok különös viselkedése azért tűnhetett fel, mert a sejtmaghártyába illeszkedő sejtmagpórus-komplexek zölden voltak kivilágítva, mocorgásuk feltűnő volt a felgyorsított sorozatfelvételeken (1. ábra).

1. ábra. Sejtmag forgolódás a muslica petekezdeményének follikuláris sejtjeiben. Follikuláris sejtek magjainak Importin-β-GFP mintázata 7. stádiumú petekezdeményekben. Az összevont képeken (utolsó oszlop) egyetlen pont mozgásának útvonalát jelöltük. A zöld az útvonal kezdetét, a piros az út végét jelöli. A GFP mintázat, egy adott sejtmag esetében perceken keresztül változatlan. A skála hossza: 2 μm. Miközben forgolódnak a sejtmagok, a sejt egyik végéből (apikális) a másik vég (bazális) közelébe jutnak, majd miután megérkeztek rendeltetési helyükre, megszűnik a mozgásuk (2. ábra). Úgy tűnt, mintha a sejtmagok forgolódása egy olyan mechanizmus megnyilvánulása lenne, amely a sejtmagokat a sejt megfelelő pontjába juttatja (a sejtmag pozícionálódásról bővebben lásd: Dupin and Etienne-Manneville, 2011). Alighanem azért, hogy a sejt funkcióit a legkedvezőbb helyről irányítsák.

2. ábra. Egy Drosophila petecső öt petekezdeménnyel, fejlődésük különböző stádiumában (St). A follikuláris sejtek egyetlen rétegben fedik a petesejtet, valamint a testvér dajkasejteket. A betét-képek 6-9. stádiumú petekezdemények follikuláris sejtjeit ábrázolják. Amíg a 6. stádiumban a sejtmagok az apikális membrán közelében vannak, addig a kilencedik stádiumra a bazális membrán közelébe kerülnek. A sejtmembránt Spider- GFP, a DNS-t Hoechst 33342 jelöli az élő petekezdemények optikai metszetein.

CÉLKITŰZÉSEK Munkám céljai, pontokba szedve, a következők voltak: 1. Annak megállapítása, hogy a sejmagpóruskomplexek elmozdulása csak a sejtmaghártya, vagy a teljes sejtmag elmozdulását reprezentálja. 2. A sejtmagok szokatlan mozgásának jellemzése, különös tekintettel az irány és a sebesség változásaira. 3. A sejtmagok mozgatásában résztvevő molekuláris faktorok azonosítása: a sejtváz mely elemei, és miként vesznek részt a sejtmag mozgásában? 4. Milyen szerepet játszanak a molekuláris motorok a sejtmag mozgatásában? 5. A petekezdemények fejlődésének mely szakaszára jellemző a follikuláris sejtek magjainak forgolódása? 6. Mi a jelentősége a sejtmagok forgolódásának, milyen fiziológiai folyamathoz köthető a megfigyelt jelenség? 7. Miért és hogyan áll meg a sejtmagok mozgása?

ANYAGOK ÉS MÓDSZEREK Kísérletes munkám pillére a muslica (Drosophila melanogaster) volt, nagyszerűen kidolgozott genetikájával, sejt- és fejlődésbiológiájával. Az alkalmazott molekuláris biológia technikák is a megszokottak voltak. A sejtbiológiai munkánk nélkülözhetetlen eszköze volt a konfokális mikroszkóp. Eredményeim a genetika, a molekuláris-, a sejt és a fejlődésbiológia eszköztárának felhasználásával születtek. EREDMÉNYEK Munkám legfontosabb eredményei, pontokba szedve, a következők (Szikora et al., 2012). 1. A különféle fluoreszcensen jelölt sejtalkotók optikai metszeteiből készült filmek alapján kimutattuk, hogy a sejtmagpórus-komplexek elmozdulása a sejtmagok egészének elmozdulását követik. 2. A sejtmagok mozgása a szomszédos follikuláris sejtekben egymástól független.

3. A sejtmagforgolódás a petefejlődés második stádiumától a kilencedikig tart. 3. ábra. A sejtmagforgolódás jellemzése. (A) A mozgást leíró görbe (kimográf) egyetlen Importin-β-GFP foltot követ öt percen keresztül. A nyilak a mozgás irányváltásait jelölik. (B) Három példa a kerületi sebesség változásának bemutatására hetedik stádiumú petekezdeményekben. 4. A sejtmagok forgolódása szakaszos elfordulások sorozatából tevődik össze. Hirtelen irány és sebességváltások jellemzik. Semmilyen forgási tengelynek nincs nyoma (3. ábra). 5. A hatodik stádiumot követően a follikuláris sejtek megnyúlnak, bennük a sejtmagvak a bazális membrán irányába mozdulnak el (4. ábra). 6. Az aktin sejtváz elroncsolása a sejtmagvak forgolódását felgyorsítja. Ugyanakkor a sejtmagok

némelyike szokatlanul közel kerül a bazális membránhoz (4. ábra). 7. A sejtmagok forgolódása a dinamikus mikrotubulusoktól függ, azonban nem függ a mikrotubulus asszociált motorfehérjéktől. Nyomnyi kolhicin, valamint taxol kezelés hatására abbamarad a sejtmagforgolódás, a sejtmagvak pozícionálódása szabálytalanná válik (4. ábra). 4. ábra. A cytochalasin D, a kolhicin és a taxol hatása a sejtmag apikális-bazális tengely mentén történő pozícionálódására, a hatodiktól a kilencedik stádiumig. Minden pont egy sejtmagnak felel meg. A sejtmembránt Spider-GFP, a DNS-t Hoechst 33342 jelöli az élő petekezdemények optikai metszetein. A skála hossza: 5 μm.

8. A follikuláris sejtekben a mikrotubulusok az apikálisbazális tengely mentén szerveződnek. Negatív végük a sejtmembrán, pozitív (növekvő) végük a sejt belseje felé néz. 9. A növekvő mikrotubulusok beleütköznek a sejtmagba. Polimerizációjuk olyan nyomóerőt fejt ki, aminek a hatására a sejtmag egy kicsit elfordul (5. ábra). 5. ábra. A sejtmagforgolódást a mikrotubulusok polimerizálódásának ereje hajtja. Az egymást követő optikai metszetek 17 másodpercen keresztül követik, ahogyan egy kortikális pontból eredő mikrotubulus a sejtmagba ütközik. A mikrotubulus meggörbülése az erőkifejtés egyértelmű jele. A mikrotubulus görbülését a sejtmag apró elfordulása követi. A B és F képek összevonásával láthatóvá válik a sejtmag elmozdulása és a mikrotubulus meggörbülése. A skála hossza: 2 μm.

10. A mikrotubulusok az 5-40 pikonewton (pn) erőt a sejtmagpórus-komplexeken át fejtik ki a sejtmagokra. KÖVETKEZTETÉSEK A sejtmag forgolódás egy eddig ismeretlen sejtmag pozícionálódási mechanizmus megnyilvánulása. A muslica petekezdemények follikuláris sejtjeiben a mikrotubulusok az apikális-bazális tengely mentén szerveződnek és nem a centroszóma a fő mikrotubulus organizáló központ, hasonlóan más epitéliális sejtekhez. A follikuláris sejtekben a dinamikus (növekvő és széteső) mikrotubulusok a sejtmagnak ütköznek. A növekvő mikrotubulusok nyomóerőt fejtenek ki az útjukba kerülő akadályra (Dogterom et al., 2005), ez esetben a sejtmagra. A sejtmagba ütköző mikrotubulusok a viszkózus citoplazmában elforgatják a sejtmagot. A véletlenszerű ütközések következtében a sejtmag forgolódása is véletlenszerű. A follikuláris sejtek polarizáltak, bennük az apikális és bazális membrán irányából növekvő mikrotubulusok száma eltér. Az eltérés következtében a bazális membrán felől több mikrotubulus ütközik a

sejtmagba, aminek eredményeként a sejtmag elsodródik az apikális membrán irányába, a hengerszerű follikuláris sejtekben. Végeredményben a sejtmag aszimmetrikusan pozícionálódik a polarizált follikuláris sejtekben. A sejtmagot a végleges pozíciójában az aktin filamentumok rögzítik a bazális membrán közelében, a sejtmaghártyába ékelődő híd-fehérjék (SUN és KASH fehérjék) közvetítésével (Yu et al., 2006). AZ EREDMÉNYEK ÖSSZEFOGLALÁSA Ph.D. értekezésem eredményei a következő pontokban foglalhatók össze. 1. Megismertünk, és jellemeztünk egy korábban nem értett sejtmagmozgást, a sejtmagvak forgolódását. 2. Kimutattuk, hogy a sejtmagforgolódás, a dinamikus mikrotubulusoktól függő folyamat. 3. A növekvő mikrotubulusok képesek nyomóerőt kifejteni az 5-40 pn tartományban. 4. A follikuláris sejtekben a mikrotubulusok az apikális-bazális tengely mentén szerveződnek.

5. A sejtmagot az apikális-bazális irányból érkező toló mikrotubulusok pozícionálják a follikuláris sejten belül. A sejtmagvak forgolódása és sodródása a sejtmagvaknak a sejten belüli pozícionálásának eleddig ismeretlen mechanizmusára derített fényt. 6. A sejtmagot az aktin filamentumok rögzítik a bazális membrán közelében. IRODALOM Gaspar, I. and Szabad, J. (2009). In vivo analysis of MTbased vesicle transport by confocal reflection microscopy. Cell Motil. Cytoskeleton 66, 68-79. Dogterom, M., Kerssemakers, J. W., Romet-Lemonne, G. and Janson, M. E. (2005). Force generation by dynamic microtubules. Curr. Opin. Cell Biol. 17, 67-74. Dupin, I. and Etienne-Manneville, S. (2011). Nuclear positioning: Mechanisms and functions. Int. J. Biochem. Cell Biol. 43, 1698-1707. Morris, N. R. (2000). Nuclear migration. from fungi to the mammalian brain. J. Cell Biol. 148, 1097-1101. Yu, J., Starr, D. A., Wu, X., Parkhurst, S. M., Zhuang, Y., Xu, T., Xu, R. and Han, M. (2006). The KASH domain

protein MSP-300 plays an essential role in nuclear anchoring during drosophila oogenesis. Dev. Biol. 289, 336-345. AZ ÉRTEKEZÉS PILLÉREKÉNT SZOLGÁLÓ KÖZLEMÉNYEK Tudományos dolgozat Szilard Szikora, Imre Gaspar and Janos Szabad, Poking microtubules bring about nuclear wriggling to position nuclei Journal of Cell Science 114355; Advance Online Publication October 17, 2012. IF: 6.110 Tudományos népszerűsítő dolgozat Szikora Szilárd, Gáspár Imre és Szabad János, Hogyan kerülnek helyükre a sejtmagok? Természet Világa 141, 303-306, 2010. A doktori munkámhoz kapcsolódó dolgozatok: Villányi, Z., Papp, B., Szikora, S., Boros, I. and Szabad, J., The DRE motif is a key component in the expression regulation of the importin-b encoding Ketel gene in Drosophila. Mechanisms of Development 125, 822 831, 2008. IF: 3.160 Zoltán Villányi, Imre Gáspár, Szilárd Szikora, László G. Puskás and János Szabad, Importin-β and peroxiredoxin- 6005 are involved in mitochondrial biogenesis.

Mechanisms of Development 128, 191-199, 2011. IF: 3.160 Tudományos konferenciákon elhangzott előadások (Az előadást az első szerző tartotta.) Szikora Szilárd, Gáspár Imre és Szabad János, Forgolódó sejtmagvak?! Genetikai Műhelyek Magyarországon VII. Minikonferencia Szeged, 2008. szeptember 9. Szikora Szilárd, Gáspár Imre és Szabad János, Forgolódó sejtmagvak. VIII. Magyar Genetikai Kongresszus, XV. Sejt- és Fejlődésbiológiai Napok Nyíregyháza, 2009. április 17-19. Szilard Szikora, Imre Gáspár and János Szabad, Wiggling nuclei reveal a novel nuclear positioning mechanism. International PhD Conference Szeged, 2010 May 17-18 János Szabad, Szilard Szikora and Imre Gáspár, Nuclear Positioning. Systems Biology of Development. EMBO Workshop. Ascona, Switzerland, August 16 20, 2010. Szikora Szilárd, Gáspár Imre és Szabad János, Egy új sejtmag pozícionálódási mechanizmus. Genetikai Műhelyek Magyarországon IX. Minikonferencia, Szeged, 2010. szeptember 3. Szikora Szilárd, Gáspár Imre és Szabad János, Sejtmag pozícionálás böködő mikrotubulusokkal. IX. Magyar Genetikai Kongresszus és XVI. Sejt- és Fejlődésbiológiai Napok, Siófok, 2011. március 25-27. Poszterek Szilárd Szikora, Imre Gáspar and János Szabad, Wiggling nuclei reveal novel nuclear positioning mechanism. EMBO Conference Series (1st) on Microtubules: structure, regulation and functions, Heidelberg, Germany, June 2-5, 2010.

Szilárd Szikora, Imre Gáspar and János Szabad, Wiggling nuclei reveal novel nuclear positioning mechanism. 42. Membrán-Transzport Konferencia, Sümeg, 2012. május 15-18. KÖSZÖNETNYÍLVÁNÍTÁS Köszönetemet fejezem ki témavezetőmnek, Szabad Jánosnak, szakmai útmutatásáért, segítőkész munkájáért. Természetesen azok az eredmények, amelyek a Ph.D. dolgozatom alapját adják, csoportmunka gyümölcsei. Különösen hálás vagyok Gáspár Imrének a mindennapos beszélgetésekért, a közösen folytatott kísérletekért. Továbbá köszönet illeti a Szabad műhely munkatársait, Villányi Zoltánt, Venkei Zsoltot, Kerényi Farkast és Szalontai Tamást, akikkel kellemes éveket töltöttünk együtt, akiktől sokat tanultam. A Sejtmag forgolódás projekt a következő forrásokra támaszkodott: OTKA pályázat (OTKA NI-69180), valamint a Szegedi Tudományegyetem Ph.D. programja.