2.3 RT H + im P= E m + lg = E m - 0,06(pH im - ph mx )= E m + 0,06 ph F. H + mx

Átírás

1 A MITOKONDRIÁLIS ENERGIATERMELŐ FOLYAMATOK VIZSGÁLATA: AZ ELEKTRON TRANSZPORT, A H + -ELEKTROKÉMIAI POTENCIÁL ÉS AZ ATP- SZINTÉZIS KAPCSOLATÁNAK TANULMÁNYOZÁSA A légzési szubsztrátok oxidációja, az ADP foszforilációja és a mitokondrium iontranszportja az ún. kemiozmotikus mechanizmus szerint az elektrontranszporttal együttjáró H + -ion gradiens kialakulása révén kapcsolt. A légzési lánc redox-lépéseinek szabadenergiaváltozása terhére a légzési lánc komponensei H + -ionokat juttatnak ki a belső membrán mátrix-oldaláról a belső és külső membrán határolta "intermembrán" térrészbe, ezáltal a mátrix (mx) és az intermembrán (im) térrész között koncentráció-gradiens (H + -ionra) és elektromos potenciálkülönbség alakul ki (E m ). E két tag algebrai összegét a proton elektrokémiai potenciáljának nevezzük: 2.3 RT H + im P= E m + lg = E m - 0,06(pH im - ph mx )= E m + 0,06 ph F H + mx Normál körülmények között az elektrontranszport (melynek következménye az oxigénfogyasztás, azaz az oxigén vízzé történő átalakulása) és a vele együttjáró proton transzlokáció a foszforilációval, azaz az ATP szintézissel kapcsolt. A kapcsoltság azt jelenti, hogy nagy intenzitású ATP szintézis esetén gyors oxigénfogyasztást tapasztalunk, míg ha nincs szükség sok ATP-re, így a szintézis lassú, az oxigénfogyasztás is csökken. Szétkapcsolószereknek azokat az anyagokat nevezzük, amelyek kisütik a H + koncentrációgradienst; így felgyorsulhat az elektronáramlás és ennek következtében az oxigénfogyasztás, de nagy energiájú protonok hiányában nincs ATP szintézis, azaz foszforiláció. Tehát, míg normálisan az oxidáció és a foszforiláció egymás függvényei, szétkapcsolószerek hatására nagy intenzitású oxidáció jön létre foszforiláció nélkül. A szétkapcsolószerek általában lipofil molekulák, melyek a mitokondrium belső membránján keresztül H + -ionok átjutását teszik lehetővé (pl. 2,4-dinitro-fenol). A gyakorlaton az oxidatív foszforiláció és az elektrontranszportlánc egyes sajátságait mitokondrium-szuszpenzió oxigénfogyasztásának mérésével vizsgáljuk. SZUBSZTRÁT OXIDÁCIÓ ÉS KAPCSOLATA AZ ATP-SZINTÉZISSEL 1. Respirációs kontroll és a P/O hányados 1

2 Ép mitokondriumok megfelelő kísérleti körülmények között a légzési szubsztrátokat egyidejű ATP-szintézis mellett oxidálják, és az oxigénfelvétel sebessége alkalmas műszerrel, (oxigén szenzitív elektróddal, vagy fluoreszcens festékkel) mérhető. A szubsztrátok oxidációjának sebessége optimális körülmények között (telítési szubsztrátkoncentráció, anorganikus foszfát és oxigén jelenlétében) csak a mitokondrium mennyiségétől és az ADP (a foszforilálható akceptor) jelenlététől függ. ADP jelenlétében ugyanis az ADP ATP átalakulás a protongrádiens csökkentése miatt stimulálja az oxigénfogyasztást. Ezt nevezzük az oxigénfogyasztás "akceptor-kontrolljának" (mivel az ADP a foszfát akceptor). ADP hiányában az oxigénfogyasztás lassú ("nyugalmi" légzés), de ADP hozzáadásakor többszörösére nő ("aktív" légzés). Az ADP elfogyása után az oxigénfogyasztás sebessége visszatér az ADP-hozzáadás előtti lassú értékre. Az ADP jelenlétében és elfogyása után mért sebességek aránya a szubsztrát oxidáció és foszforiláció kapcsoltságára jellemző, és respirációs kontroll-hányadosnak (angol rövidítése RCR) nevezzük: ADP jelenlétében mért oxigénfogyasztás sebessége RCR= 1 ADP nélkül mért oxigénfogyasztás sebessége A P/O hányados: 1 atom (!) oxigénfogyásra jutó anorganikus foszfát ATP-be való beépülése; azaz megmutatja, hogy hány molekula ATP szintetizálódott 1 molekula víz keletkezése közben vagy két e - végighaladása közben a légzési láncon. Értéke attól függően változik, hogy az elektronok FADH 2 -ről vagy NADH-ról kerülnek a légzési lánc komplexeire. Ha a protongradienst megszüntető szétkapcsoló anyagok vannak jelen, vagy a mitokondrium membránja károsodott, mind az RC, mind pedig a P/O hányados lecsökken. A protongrádiens folyamatos "kisülése" a fenti esetekben akkor is stimulálja az oxigénfogyasztást, ha ATP keletkezésére nincs lehetőség. Az ADP-ből történő ATP-szintézist gátló oligomycin a légzést is gátolja, mivel a kialakult protongrádiens nem használódik fel jelenlétében. Hasonlóan az oligomycin hatásához, olyan vegyületek is gátolhatják az oxigénfelvételt, amelyek megakadályozzák az ADP eljutását a mitokondrium belső membrán mátrix felőli oldalára (ahol az ATPszintézishez az ADP kötőhely van). Az atraktilozid és karboxiatraktilozid az ATP:ADP transzlokázt gátolják specifikusan. Mivel a légzési lánc elektrontranszportja érintetlen, a protongrádiens kiépült (csak éppen nem használódik fel), a lassú légzést ilyenkor csak szétkapcsolószerekkel (pl. dinitrofenol) lehet meggyorsítani. 2. A légzési lánc gátlása A légzési láncot alkotó enzimkomplexek mindegyikének ismerjük szelektív gátlószerét. Legismertebbek a CN - és a CO, (gátolja a citokróm-a 3 oxidációját), az antimycin-a (cit. b és 2

3 c 1 közötti elektronátmenetet), a rotenon (NADH-dehidrogenázt = komplex I), a malonát (szukcinát-dehidrogenázt = komplex II). Jelenlétükben a lánc gátolt tagjától az oxigén felé eső komponensek oxidált állapotba kerülnek, az elektrontranszport és a további oxigénfelvétel leáll. Mivel elektrontranszport nincs, protongradiens sem épül ki; a légzés sem ADP-vel, sem szétkapcsolóanyagokkal nem indítható meg. AZ OXIGÉNFOGYASZTÁS SEBESSÉGÉNEK MÉRÉSE POLAROGRÁFIÁS MÓDSZERREL, OXIGÉN-ELEKTRÓDDAL Az oldott oxigén aktuális koncentrációját Clark-típusú polarográfiás oxigénelektróddal mérjük. Ez egy platinából és ezüst-ezüstklorid állandó potenciálú elektródból összeállított kombinált elektród, amelynek negatív pólusa a Pt. A két elektród telített KCl-ba merül, és az elektródkombinációt egy vékony, az oldatot nem, de a benne oldott gázokat áteresztő, polietilén-membrán választja el a reakciótértől. Az elektródra a polarizátor egység (l. 1. ábra) 0,6 V feszültséget ad, ezen az értéken az oldott oxigén redukálódik a platinaelektódon. Az átfolyó áram erőssége adott potenciálon a töltést felvevő anyagnak, a molekuláris oxigénnek az elektródfelszínen való koncentrációjával, ez pedig állandó keveredés mellett az oldott oxigénnek a reakcióelegybeni koncentrációjával arányos. Tehát, ha állandó, 0,6 V polarizáló feszültség mellett regisztráljuk a reakcióedénybe nyúló oxigén elektródon átfolyó áram erősségét (az ún. diffúziós határáramot), az arányos lesz az oldott oxigén pillanatnyi koncentrációjával. (Ez az érték egy potenciometrikus rekorderen feszültséggé alakítva jelenik meg.) Az oxigénfogyasztást időben követhetjük, Az oxigénfogyasztást két módon tudjuk megjeleníteni: 1. Hagyományos módon rekorderrel Ha a rekorder regisztráló papírját állandó sebességgel (pl. 1cm/perc) mozgatjuk, és a feszültségváltozás értékeket írószerkezettel regisztráljuk. 2. Számítógéphez kapcsolva. Mindkét regisztrálás online működik. Az oxigén-elektródhoz kapcsolt erősítőt USB porton keresztül a számítógép bármely USB bemenetéhez csatlakoztatjuk. Az USB bemenet nemcsak az adatforgalmat bonyolítja, de ezen keresztül kap az erősítő áramot, tehát számítógéphez csatlakoztatás nélkül az elektród nem működik!! A reakcióedény tartalmát egyenletesen kevertetnünk kell (motoros keverő által az edényben forgatott műanyaggal bevont kis mágnessel); a reakció indításakor el kell zárni a levegőtől, hogy további oxigén ne oldódjon be; és a reakcióelegy hőmérsékletét a lehetőségekhez képest állandó értéken kell tartani. A mi körülményeink között elegendő, ha a 3

4 kísérletek szobahőmérsékleten folynak. A hőmérsékletre megadott telítési oxigén koncentrációt (ennek felel meg a rekorder kiindulási, 100%-ra általunk, a kísérlet kezdetén beállított állása) a 2. ábrán bemutatott nomogramról olvassuk le. A nulla oxigénkoncentrációra elektródunkat Na-ditionit hozzáadásával kalibráljuk. Közvetlenül a gyakorlat előtt történik (nem kell megtanulni): Patkánymáj mitokondrium preparálása differenciál centrifugálás módszerével Egy éjszakán át éheztetett patkány levágása után távolítsuk el a májlebenyeket, majd öblítsük le néhányszor izoláló pufferben (0,25 M szacharóz, 5 mm TRIS, 0,5 mm EGTA, ph 7,4-re állítva sósavval), jégben aprítsuk darabkákra, mossuk néhányszor jéghideg izoláló pufferrel, hogy a vért eltávolítsuk, majd homogenizáljuk 4-szeres térfogat izoláló pufferrel Potter-Elvehjem-típusú homogenizálóban. Először gömbös, nagyrésû, majd finomabb, hengeres dugattyút használjunk. Az utóbbit csak néhányszor (4-5-ször) mozgatunk fel és le, hogy elkerüljük a mitokondriumok károsodását. A homogenátumot 600xg-vel 12 percig centrifugáljuk (a csapadékban fel-nem-tárt szövetdarabkák, sejtmag, plazmamembrán van, az üledék eldobható), a felülúszót tiszta centrifugacsőbe öntjük át, és xg-vel 20 percig centrifugáljuk. A mitokondriumot tartalmazó csapadékot jégben tarthatjuk néhány órán át, és felhasználás előtt jéggel töltött kémcső segítségével finoman szuszpendáljuk. A biuret reakcióval meghatározzuk a mitokondrium fehérjekoncentrációját (kb mg/ml). A kész preparátumot és a reagenseket is jégben tartjuk. (Az ily módon előállított preparátum már készen áll a gyakorlatokon végzendő kísérletekhez.) Minta Patkánymáj mitokondrium differenciál centrifugálásos eljárással preparálva Reagensek Inkubáló oldat: 80 mm KCl, 20 mm TRIS-HCl, 1 mm EGTA, 10 mm KH 2 PO 4, ph 7,2. Mitokondrium-szuszpenzió: mg/ml végkoncentráció a bekészített kémcsőben, vagy Eppendorf csőben. Reagens Törzsoldat Méréshez használt Végkoncentráció a koncentrációja térfogat küvettában glutamát 0.7 M 20 µl 4.67 mm (ph= 7.2) malát (ph= 7.2) 0.3 M 20 µl 2 mm szukcinát 0.75 M 20 µl 5 mm (ph= 7.2) ADP (ph= 7.2) 50 mm 20 µl 0.33 mm 4

5 DNP 10 mm 20 µl mm Oligomycin (alkoholban oldva) 0.08 mg/ml (M=805 g/mol) 9.9*10-11 M = 9.9*10-8 mm= 9.9* 10-5 um=0.099 pmol malonát 100 mm 20 µl mm (ph= 7.2) KCN 100 mm 20 µl mm Atraktilozid 5 mg/ml (M= 803 g/mol) 20 µl 6.2 * 10-6 M= 6.2 * 10 - mm= 6.2 µm Na-ditionit szubsztancia Eszközök Inkubáló edény (küvetta), oxigénelektród polarizátor-egységgel, számítógéppel és potenciometrikus rekorderrel, mágneses keverőmotor, keverő-mágnes, vízlégszivattyú; µl és 1-5 ml között mérő automata pipetták; hőmérő; desztillált vizes flaska. A kísérlet kivitelezése Fontos: A használt reagensek igen mérgezőek! Minden reagenst minden alkalommal tiszta pipettaheggyel kell pipettázni! Ne szennyezzük át a reagenseket egymással! 1.Az elektród kalibrálása A reakcióedénybe 3,0 ml inkubáló oldatot mérünk, az edényt buborékmentesen lezárjuk, majd tartalmát lassan kevertetjük. A rekordert 1 cm/perc papírsebességre állítjuk, majd a polarizátoron levő forgatógombbal 100%-ra állítjuk. Megvárjuk, amíg ott stabilizálódik. Ez az érték felel meg tehát a teljes oxigénkoncentrációnak a kísérlet hőmérsékletén. A nulla oxigénkoncentrációt pár kristálynyi szilárd Na-ditionitnak a reakcióelegyhez adásával érjük el. (A fedélen levő adagolólyukon át félspatulányi ditionitot szórunk a reakcióelegyhez.) Ekkor az írószerkezet gyorsan a 0% felé mozdul. Amikor értéke stabilizálódott, a rekorder "0" gombjával - 0 %-ra - állítjuk. Ez a helyzet felel meg a későbbiek során a "0" oxigénkoncentrációnak. A mûvelet végén vízlégszivattyúval eltávolítjuk a reakcióelegyet a kamrából, majd a kamrát 3-4-szer desztillált vízzel átmossuk. Minden mérést követően a kamrát alaposan mossuk ki desztillált vízzel! Ügyeljünk a membrán (oldalt van!) épségére! 2. A P/O hányados meghatározása 5

6 A kísérletet szukcináttal és glutamát-malát szubsztrátpárral is el lehet végezni. (Jelöljük a regisztrátumon, hogy milyen reagenst, mikor és mennyit adtunk.) Javasolt sorrend: 3 ml inkubáló oldat + 20 µl szubsztrát (glutamát-malát vagy szukcinát) (lezárjuk buborékmentesen a kamrát a zárófedéllel, és megvárjuk, míg a számítógép vízszintes, az írótoll függőleges vonalat húz, kb. 1 perc); + 50 µl mitokondrium a tömény szuszpenzióból (a fedélen lévő adagolólyukon át, buborékmentesen, és megvárjuk, amíg a közel lineáris oxigénfogyasztás beáll); + 20 µl ADP. Vegyük fel először a kívánt szubsztrát jelenlétében a nyugalmi légzést, majd adjunk hozzá pontosan 20 µl ismert koncentrációjú ADP-t. Várjuk meg az aktív, és a nyugalmi légzési szakaszt. Adjunk ismét 20 µl ADP-t, és hatását mérjük meg. Az ADP/O (=P/O)-hányados az egyes ADP-adásokhoz tartozó oxigénfogyások alapján határozható meg az oxigén telítési koncentrációjának és a reakcióelegyhez adott ADPmennyiségének ismeretében (lásd mellékelt jegyzőkönyv-minta és diagramok). + ditionit: redukálja az oxigént, amivel igazoljuk, hogy nem az oxigén hiánya miatt állt le a légzés. 3. ADP, atraktilozid, DNP és KCN hatása az oxigénfogyasztásra A kísérletet szukcináttal és glutamát-malát szubsztrátpárral is el lehet végezni. (Jelöljük a regisztrátumon, hogy milyen reagenst, mikor és mennyit adtunk.) Javasolt sorrend: Inkubáló oldat: 3 ml + szubsztrát 20 l (lezárjuk buborékmentesen a kamrát a zárófedéllel, és megvárjuk, míg az írótoll függőleges vonalat húz, kb. 1 perc); + 50 µl mitokondrium (a fedélen lévő adagolólyukon át, buborékmentesen, és megvárjuk, amíg a közel lineáris oxigénfogyasztás beáll); + 20 µl ADP (a fedélen levő adagolólyukon át beszívódik) µl atraktilozid: gátolva a mitokondriális ADP-ATP transzportert, csökkenti a légzést; + 20 µl DNP: szétkapcsolószerként újraindítja a csaknem leálló légzést; + 20 µl KCN: gátolja a komplex IV-et, így a légzést; + ditionit: redukálja az oxigént, amivel igazoljuk, hogy nem az oxigén hiánya miatt állt le a légzés. 4. Szukcinát oxidáció gátlása malonáttal Javasolt sorrend: Inkubáló oldat: 3 ml + szukcinát 20 l (lezárjuk buborékmentesen a kamrát a zárófedéllel, és megvárjuk, míg az írótoll függőleges vonalat húz, kb. 1 perc); 6

7 + 50 µl mitokondrium (a fedélen lévő adagolólyukon át, buborékmentesen, és megvárjuk, amíg a közel lineáris oxigénfogyasztás beáll); + 20 µl ADP (a fedélen levő adagolólyukon át beszívódik); + 20 µl malonát: kompetitíven gátolja a szukcinát-dehidrogenázt; µl szukcinát: feleslegben adva a szukcinátot a légzés újraindul; + ditionit: redukálja az oxigént, amivel igazoljuk, hogy nem az oxigén hiánya miatt állt le a légzés. 5. Az oligomycin hatásának tanulmányozása Javasolt sorrend: Inkubáló oldat: 3 ml + glutamát +malát 20 l (lezárjuk buborékmentesen a kamrát a zárófedéllel, és megvárjuk, míg az írótoll függőleges vonalat húz, kb. 1 perc); beáll az egyenesbe az írótoll, kb. 1 perc); + 50 µl mitokondrium (a fedélen lévő adagolólyukon át, buborékmentesen, és megvárjuk, amíg a közel lineáris oxigénfogyasztás beáll); + 20 µl ADP (a fedélen levő adagolólyukon át beszívódik); + 20 µl oligomycin: gátolja az ATP-szintázt, így közvetve csökkenti a mitokondriális légzést; + 20 µl DNP + ditionit: redukálja az oxigént, amivel igazoljuk, hogy nem az oxigén hiánya miatt állt le a légzés. Elvégzendő feladatok, megválaszolandó kérdések Cél: A mitokondrium működésének tanulmányozása az RCR és a P/O hányados értékének meghatározásával. A légzési lánc inhibitorok hatásának vizsgálata, kiegészítve az ATPszintáz gátlásának vizsgálatával. 1. Számítsuk ki a mitokondrium nyugalmi és ADP-stimulált oxigén-fogyasztásának sebességét (mol O 2 /perc/µl) tömény mitokondrium-szuszpenzió és szukcinát, ill. glutamát-malát szubsztrát használata esetén! 2. Számítsuk ki kísérleti adatainkat használva a respirációs kontroll-hányados (RCR) értékét glutamát-malát és szukcinát szubsztrát használata esetén! 3. Számítsuk ki a P/O hányados értékét kísérleti adatainkból! 4. Lehet-e valamilyen klinikai haszna egy nem mérgező szétkapcsolószernek? Milyen fiziológiai folyamat alapul a szétkapcsolás jelenségén? 7

8 5. Hogyan befolyásolja az atraktilát, az oligomycin, a malonát, a DNP és a KCN a mitokondriális oxigénfogyasztást, az ATP-szintézist illetve a mitokondrium mátrixa és az intermembrán tér között kialakuló protongrádienst? Fogalmak, tudnivalók: P/O; akceptor (respirációs) kontrol, Clark-típusú elektród, kalibráció menete, P/O hányados meghatározása (szukcinát, glutamát+ malát), nyugalmi légzés, aktív légzés. Javasolt elméleti anyagrész: mitokondriális ATP szintézis, citrát-kör, légzési lánc működése. 1. ábra: Az oxigén-elektród feszültségforrása és érzékenység-szabályzó egysége. 2. ábra: Levegővel telített víz oxigén-koncentrációjának változása a hőmérséklet függvényében. Az általunk használt reakcióelegyre is ezt a görbét alkalmazzuk. 8

9 O 2 100% 3. ábra: Minta az ADP/O (P/O) hányados mérési adatainak kiértékeléséhez. A regisztrátumon az ADP jelenlétében, ill. távollétében mért sebességek nyomvonalait meghosszabbítjuk, és a metszéspontok távolságának megfelelő oxigénfogyasztás adja meg a reakcióelegyhez adott ADP-re felhasználódott oxigén mennyiségét. Kiértékelés A P/O hányados meghatározása a mitokondriális oxidáció során Reakcióelegy térfogata: Reakcióelegy hőmérséklete: Telítési oxigénkoncentráció (t 0 C-on) Teljes oxigén mennyiség a cellában (X ) Cellában fogyott oxigén mennyisége (Y ) ADP törzsoldat koncentrációja: Használt ADP térfogat: Felhasznált ADP mennyiség Számítás: ADP-re fogyott O 2 :...%, mennyisége:... mol ml 0 C µmol/ml µmol µmol mm ml µmol ADP, mol... ADP/O (P/O) hányados: = = 2* O 2, mol 2*... 9