RÉSZLETEZŐ OKIRAT (1) a NAH /2018 nyilvántartási számú akkreditált státuszhoz

RÉSZLETEZŐ OKIRAT (1) a NAH-1-1148/2018 nyilvántartási számú akkreditált státuszhoz 1) Az akkreditált szervezet neve és címe: Nemzeti Élelmiszerlánc-biztonsági Hivatal Állategészségügyi Diagnosztikai Igazgatóság Telephelyek címe és laboratóriumai: 1143 Budapest, Tábornok u. 2. alatt található telephelyen Bakteriológiai Laboratórium Emlős-, Vad- és Baromfibetegségek Laboratóriuma Immunológiai Laboratórium Klinikai Kémiai és Kiegészítő vizsgálatok Laboratóriuma Molekuláris Biológiai Laboratórium, Parazitológiai Hal- és Méhbetegségek Laboratóriuma Baromfi és Sertés Virológiai Laboratórium Kérődzők és Ló Virológiai Laboratórium TSE és Veszettség Laboratórium 4031 Debrecen, Bornemissza u. 3-7. alatt található telephelyen Debreceni Immunológiai, Virológiai és TSE Laboratórium Debreceni Kórbonctani és Bakteriológiai Laboratórium 7400 Kaposvár, Cseri út 18. alatt található telephelyen Kaposvári Állat-egészségügyi Diagnosztikai Laboratórium 2) Akkreditálási szabvány: MSZ EN ISO/IEC 17025:2005 3) Az akkreditált státusz érvényessége: Az akkreditált státusz kezdetének napja: 2018. május 24. Az akkreditált státusz lejáratának napja: 2023. május 24. 4) Az akkreditált terület: Budapest, 2018. május 24. 1/20 NAH-1-1148/2018

I. Az akkreditált területhez tartozó laboratóriumi vizsgálatok 1143 Budapest, Tábornok u. 2. alatt található telephelyen A vizsgált termék/anyag Baktérium tenyészet Baktérium tenyészet Vetélt magzat, magzatburok, méhváladék, szervminták, tej, vér, ízületi folyadék, sperma, egyéb testváladékok Szarvasmarha genitális traktus mosófolyadék Bél minta, friss hús Szervminták és váladékok Kanca méh- és hüvelytampon, mén nemi szervi tampon, sperma Bélsár, szervek, állatállományok környezeti mintái, béléspapír és napos-baromfi hulla Házi kérődzőkből származó agyvelő Antibiotikum érzékenység vizsgálata korongdiffúziós módszer Antibiotikum érzékenység vizsgálata leveshígításos módszer Brucellák Campylobacter fetus subsp. venerealis ESBL-, AmpC- és karbapenemáztermelő E.coli, Mycobacterium bovis/caprae Taylorella equigenitalis Salmonellák Prion protein kimutatás immunhisztokémiai módszer Aujeszky-betegség kórokozójával szembeni gb ellenanyagok Aujeszky-betegség kórokozójával szembeni ge ellenanyagok CLSI VET01-A4 2013, Chapter 7. CLSI VET01-A4 2013, Chapter 11. Animals, 2017. Chapter 1.4.1.B.1.1-3. Animals, 2017. Chapter 2.4.4.B.1. EURL-AR: Isolation of ESBL-, AmpC and carbapenemaseproducing E.coli from caecal samples and fresh meat, laboratory protocol, 2017. Animals, 2015. Chapter 2.4.6.1. Animals, 2012. Chapter 2.5.2.1. MSZ EN ISO 6579-1:2017 O Rourke, K., I., D., P., Knowles,: Diagnosis of scrapie by monoclonal antibody based immunohistochemistry assay. X. International Symposium of Veterinary Laboratory Diagnosticians and OIE Seminar on Biotechnology, Parma, Italy, 4-7. July 2001., 29-30. o. Animals 2012. Chapter 2.1.2.B.2.2. Animals 2012. Chapter 2.1.2.B.2.2. Budapest, 2018. május 24. 2/20 NAH-1-1148/2018

, tej, vérplazma Baromfitífusz kórokozójával tárgylemezagglutinációs Brucella abortus ellenanyagok agglutinációs Brucella abortus ellenanyagok Brucella abortus ellenanyagok komplementkötési Brucella ellenanyagok Brucella melitensis ellenanyagok Brucella melitensis ellenanyagok komplementkötési Brucella ovis ellenanyagok Brucella ovis ellenanyagok komplementkötési Chlamydiosis kórokozójával komplementkötési Klasszikus sertéspestis kórokozójával szembeni ellenanyagok Leptospirosis kórokozójával mikroagglutinációs Animals 2012. Chapter 2.3.11.B.2.2. 2.1.4.B.2.7. and Vaccines for Terrestrial Animals 2016. Chapter 2.1.4.B.2.5., OIE Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals 2016. Chapter 2.1.4.B.2.9. 2.1.4.B.2.4. 2.1.4.B.2.5. 2.1.4.B.2.5. 2.1.4.B.2.4. and Vaccines for Terrestrial Animals 2015. Chapter 2.7.8.B.2.3. Animals 2015. Chapter 2.7.8.B.2.2. Animals 2012. Chapter 2.3.1.B.2.1. Animals 2014. Chapter 2.8.3.B.2.3. Animals 2014. Chapter 2.1.12.B.2.1. Budapest, 2018. május 24. 3/20 NAH-1-1148/2018

, vérplazma, tojássárgája, vérplazma, tojássárgája, tej Tej, tej Ló fertőző kevésvérűségét okozó vírussal agargél immunodiffúziós Ló fertőző kevésvérűségét okozó vírussal Mycoplasma gallisepticum ellenanyagok Mycoplasma gallisepticum ellenanyagok tárgylemez-agglutinációs Mycoplasma hyopneumoniae ellenanyagok Mycoplasma meleagridis ellenanyagok Mycoplasma synoviae ellenanyagok Mycoplasma synoviae ellenanyagok tárgylemez-agglutinációs Paratuberculosis kórokozójával Szarvasmarha enzootiás leukózisát okozó vírussal Szarvasmarha enzootiás leukózisát okozó vírussal Szarvasmarha fertőző rhinotracheitisét okozó vírussal szembeni gb ellenanyagok Animals 2013. Chapter 2.5.6.B.2.1. Animals 2013. Chapter 2.5.6.B.2.2. Animals 2008. Chapter 2.3.5.B.3.3. Animals 2008. Chapter 2.3.5.B.3.1. Ingezim MHYO Compac teszt felhasználói útmutató, Ingenasa (2017) ProFLOK Mm-Ab teszt felhasználói útmutató, Synbiotics (2017) Animals 2008. Chapter 2.3.5.B.3.3. Animals 2008. Chapter 2.3.5.B.3.1. Animals 2014. Chapter 2.1.15.B.2.1. Animals 2012. Chapter 2.4.10.B.2.1. Animals 2012. Chapter 2.4.10.B.2.1.2. Animals 2017. Chapter 2.4.12.B.2.2. Budapest, 2018. május 24. 4/20 NAH-1-1148/2018

, vérplazma Szarvasmarha fertőző rhinotracheitisét okozó vírussal szembeni ge ellenanyagok Takonykór kórokozójával komplementkötési Tenyészbénaság kórokozójával komplementkötési Tularaemia kórokozójával agglutinációs Takarmány Aflatoxin B 1 HPLC-FLD alsó mérési határ: 0,2 µg/kg Takarmány Takarmány Takarmány Takarmány Takarmány ± 20% R Deoxynivalenol HPLC-DAD alsó mérési határ: 0,1 mg/kg ± 20% R Ochratoxin HPLC-FLD alsó mérési határ: 1,0 µg/kg ± 20% R T-2 toxin GC-MS alsó mérési határ: 0,05 mg/kg ± 20% R Zearalenon (F-2 toxin) HPLC-FLD alsó mérési határ: 0,02 mg/kg ± 20% R Emészthető nyersfehérje sósavas pepszines emésztés, Kjeldahl módszer, számítás alsó mérési határ: 3% (m/m) c < 20% ± 0,8% A; 20% < c < 50% ± 1% A Animals 2017. Chapter 2.4.12.B.2.2. Animals 2015. Chapter 2.5.11.B.3.1. Animals 2013. Chapter 2.5.3.B.2.1. 2.1.22.B.2.1. AflaStar (Romer Labs) alkalmazási javaslat (2017) DONStar (Romer Labs) alkalmazási javaslat (2017) OchraStar (Romer Labs) alkalmazási javaslat (2017) Contents of Fusarium toxins in Finnish and imported grains and feeds. 1991. Food Additives and Contaminants, 8. 171-182. ZearaStar (Romer Labs) alkalmazási javaslat (2017) MSZ 6830-5:1987 Budapest, 2018. május 24. 5/20 NAH-1-1148/2018

Takarmány Takarmány Takarmány Takarmány Takarmány Itatóvíz (felszíni vízből, talajvízből, védett rétegvízből, kevert vízből nyert) Itatóvíz (felszíni vízből, talajvízből, védett rétegvízből, kevert vízből nyert) Itatóvíz (felszíni vízből, talajvízből, védett rétegvízből, kevert vízből nyert) Itatóvíz (felszíni vízből, talajvízből, védett rétegvízből, kevert vízből nyert) Nedvesség szárítás, tömegmérés alsó mérési határ: 0,5% (m/m) ± 0,2% A Nyersfehérje Kjeldahl módszer, számítás alsó mérési határ: 3% (m/m) ± 0,5% R + 0,23% A Nyershamu izzítás, tömegmérés alsó mérési határ: 1% (m/m) c < 3% ± 0,3% A; 3% < c < 5% ± 10% R; 5% < c < 20% ± 0,5% A Nyersrost tömegmérés alsó mérési határ: 1% (m/m) c < 5% ± 0,3% A; c > 5% ± 10% R Nyerszsír extrakció, tömegmérés alsó mérési határ: 1% (m/m) ± 0,3% A Ammónium ion spektrofotometria alsó mérési határ: 0,08 mg/l ± 10% R Kémiai oxigénigény permanganometria alsó mérési határ: 2,5 mg/l O 2 ± 10% R Nitrát spektrofotometria alsó mérési határ: 0,80 mg/l ± 10% R Nitrit spektrofotometria alsó mérési határ: 0,07 mg/l ± 10% R MSZ ISO 6496:2001 MSZ EN ISO 5983-2:2009 152/2009/EK III. melléklet M MSZ EN ISO 6865:2001 10. fejezet 152/2009/EK III. melléklet H MSZ ISO 7150-1:1992 MSZ 12750-21:1971 2. fejezet MSZ 12750-18:1974 MSZ EN 26777:1998 Budapest, 2018. május 24. 6/20 NAH-1-1148/2018

Itatóvíz (felszíni vízből, talajvízből, védett rétegvízből, kevert vízből nyert) Baktérium tenyészet Madár szövetminták, légcső és kloaka tampon, bélsár, toll, vírustenyészet Kérődző szövetminták, bőr, tampon, vér, vírustenyészet Baktérium tenyészet Baktérium tenyészet Influenza A vírus pozitív madár szövet és tamponminták, bélsár, toll, vírustenyészetek Madár és sertés szövet és tamponminták, bélsár, toll, vírustenyészet ph potenciometria ± 0,05 Bacillus anthracis real-time PCR módszerrel Baromfipestis vírusának real-time RT-PCR módszerrel Bőrcsomósodáskór, juh- és kecskehimlő vírusainak és elkülönítése realtime PCR módszerrel Brucellák azonosítása New Bruce-ladder multiplex PCR módszerrel Burkholderia mallei PCR módszerrel H5, H7 és N1 madárinfluenza vírusok azonosítása real-time RT- PCR módszerrel Influenza A vírus madarakból és sertésekből realtime RT-PCR módszerrel MSZ 1484-22:2009 Easterday et al. (2005) Use of single nucleotide polymorphisms in the plcr gene for specific identification of Bacillus anthracis. J Clin Microbiol. 43(4):1995-7. AAvV-1 screening real time PCR - Animal Health and Veterinary Laboratories Agency, Standard Operating Procedure, 2017October Lamien CE et. al. (2010) Real time PCR method for simultaneous detection, quantitation and differentiation of capripoxviruses. J. Virol. Methods 171(1): 134-40. López-Goni et al. (2011) New Bruce-ladder multiplex PCR assay for the biovar typing of Brucella suis and the discrimination of Brucella suis and Brucella canis Veterinary Microbiology 154: 152-155. Ulrich et al. (2006) Development of a polimerase chain reaction assay for the specific identification of Burkholderia mallei and differentiation from Burkholderia pseudomallei and other closely related Burkholderiaceae Diagn. Mycorbiology and Infectious Disease 55, 37-45. VLA protokoll- Diagnostic Manual establishing diagnostic procedures, sampling methods and criteria for evaluation of the laboratory tests for the confirmation of Avian Influenza SANCO/10212/2006 Nagy A. et al. (2010) Development and evaluation of a one-step real-time RT-PCR assay for universal detection of influenza A viruses from avian and mammal species Archives of Virology 155, 665 673. Budapest, 2018. május 24. 7/20 NAH-1-1148/2018

Méh, méhlárva Hal szövetminták, lárvák, vírustenyészet Baktérium tenyészet Emlős és madár szövetminták, vérsavó, vírustenyészet Nyúl szövetminták, vér, vírustenyészet Szarvasmarha, juh, kecske, vadonélő kérődzők, ló, kutya, sertés szövetminták, magzat, vírustenyészetek, EDTA-val alvadásban gátolt vér Parazita lárva Szarvasmarha-méh-, hüvely- és tasakváladék Hal izom- és belső szervminták Ragadozó hallójárat tamponminta, ill. emlős és madár bőrkaparék Kis kaptárbogár (Aethina thumida) real-time PCR módszerrel Koi Herpes vírusának real-time PCR-módszerrel Mycobacterium tuberculosis komplex elkülönítése reverz hibridizációs módszerrel Nyugat-Nílusi láz vírusának real-time RT-PCR módszerrel Nyulak vérzéses betegsége vírusának PCR módszerrel Schmallenberg vírus real-time RT-PCR módszerrel Trichinella spiralis, pseudospiralis és britovi PCR módszerrel Tritrichomonas foetus PCR módszerrel Anisakidák mesterséges emésztéses vizsgálat Demodex- és rühatkák (Sarcoptes-, Psoroptes-, Chorioptes-, Notoedres-, Knemidocoptes-, Otodectesfajok), ill. azok petéinek kálium-hidroxidos feltárás és mikroszkópos vizsgálat Identification of the small hive beetle Aethina tumida, using real time PCR ANSES, European Reference Laboratory for Honey Bee Health, ANA-I1.MOA.3700. Gilad O. et al. (2004) Concentrations of a Koi herpesvirus (KHV) in tissues of experimentally infected Cyprinus carpio koi as assessed by real-time TaqMan PCR Dis. Aquat. Organ. 60(3):179-87. GenoType MTBC VER1.x felhasználói útmutató, Hain Lifesciences (2015) OIE Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals, 2013. Chapter 2.1.24.B.1.2. OIE Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals, 2016. Chapter 2.6.2.B.1.2. OIE Schmallenberg virus technical fact sheet, 2017 June OIE Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals, 2017. Chapter 2.1.20.B.1.3. OIE Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals. 2012. Chapter 2.4.16.B.1.2. Artificial digestion of fish fillets for the isolation of Anisakidae larval stages (Standard Operating Procedure; European Union Reference Laboratory for Parasites, pp. 1-5.) OIE Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals. 2016. Chapter 2.9.7.B.1. Budapest, 2018. május 24. 8/20 NAH-1-1148/2018

Emlős-, madár-, hüllő- és kétéltűgyomor-bélcsatorna Emlős és madár izomminta illetve nem hőkezelt hústermék 24 óránál nem régebben vett szarvasmarha-méh-, hüvely- és tasakváladék Gyomor-bélcsatornában tartózkodó férgek dekantálás Izomtrichinellák mesterséges emésztéses vizsgálat Tritrichomonas foetus- tenyésztés és mikroszkópos vizsgálat OIE Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals, 2016. Chapter 2.1.6.B.1.3.2. A Bizottság (EU) 2015/1375 végrehajtási rendelete (2015. augusztus 10.) OIE Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals. 2016. Chapter 2.4.16.B.1.1.2.1. Fiasítás (mézelő méh lárvája) Fiasítás (mézelő méh lárvája) Sertés vagy vaddisznó vérsavó Sertés vagy vaddisznó szérum, vérplazma, EDTA-s vér, szervek, szövet- és tamponminták, ondó, nyál Paenibacillus larvae makroszkópos és mikroszkópos módszer Paenibacillus larvae Afrikai sertéspestis vírusával Afrikai sertéspestis vírusának Virotype ASFV real time PCR módszer Animals, 2016. Chapter 2.2.2. A.1.; B.1.3.4.vi Animals, 2016. Chapter 2.2.2. B.1.3. Ingenasa felhasználói útmutató az Ingezim PPA Compac teszthez. Virotype ASFV RT-PCR Kit Handbook for detection of DNA from African swine fever virus (ASFV) Sertés vagy vaddisznó vérsavó Baromfi vérsavó Madárszervek, orrváladék, bélsár, kloáka- és légcsőtampon Sertés vérsavó Aujeszky betegség vírusával vírusneutralizációs Baromfipestis vírussal szembeni ellenanyagok hemagglutináció-gátlási Baromfipestis vírusának vírusizolálás Klasszikus sertéspestis vírusával FAVN (Fluorescent antibody virus neutralisation) Animals, 2012. Chapter 2.1.2.B.2.1. Animals, 2012. Chapter 2.3.14.B.2.1.2. Animals, 2012. Chapter 2.3.14.B.1. Animals, 2014. Chapter 2.8.3.B.2.2. Budapest, 2018. május 24. 9/20 NAH-1-1148/2018

Tonzilla, lép, nyirokcsomók, vese, teljes vér, leukocita frakció Sertésből és vaddisznóból származó vérsavó, vérplazma, EDTA-val alvadásban gátolt vér, szerv és szövetminta Baromfi vérsavó Madárszervek, orrváladék, bélsár, kloáka- és légcsőtampon Mezeinyúl vérsavó Sertés szervek és szövetminták, ondó, EDTA-val alvadásban gátolt vér, szérum, nyál, légcsőtampon, bronchoalveolaris lavage révén vett minta Sertés vérsavó Sertés vérsavó Sertés vérsavó Sertésből származó hólyagfal, hólyagtartalom, bélsár Hasított körmű állatokból származó hólyagfal, hólyagtartalom, vér, tej és szervminták Klasszikus sertéspestis vírusának vírusizolálás Klasszikus sertéspestis vírusának Virotype CSFV real time PCR módszer Madárinfluenza vírussal szembeni ellenanyagok hemagglutináció-gátlási Madárinfluenza vírusának vírusizolálás Mezei nyulak EBHS vírussal PRRS vírus Virotype PRRSV real-time PCR módszer PRRS vírussal szembeni ellenanyagok IFMA (Immunofluorescent Monolayer Assay) PRRS vírussal szembeni ellenanyagok SVD vírussal szembeni ellenanyagok SVD vírussal szembeni ellenanyagok vírusneutralizációs SVD vírus vírusizolálás Ragadós száj és körömfájás (RSZKF) vírusának vírusizolálás Animals, 2014. Chapter 2.8.3.B.1.1. Virotype CSFV RT-PCR Kit Handbook for detection of RNA from classical swine fever virus (CSFV) Animals, 2015. Chapter 2.3.4.B.2.3.2. Animals, 2015. Chapter 2.3.4.B.1.1. EBHS Serological Diagnosis, PRRD010120, Instituto Zooprofilaktico Sperimentale, Brescia, Olaszország (2016) Virotype PRRSV RT-PCR Kit Handbook for detection of RNA from porcine reproductive and respiratory syndrome virus (2013) Animals, 2015. Chapter 2.8.6.B.2.2. Ingenasa felhasználói útmutató Ingezim PRRS Universal teszthez ID Screen SVD Competition for detection of antibodies against swine vesicular disease virus, IDVET, Montpellier, France (2014) Animals, 2013. Chapter 2.8.8.B.2.1. Animals, 2013. Chapter 2.8.8.B.1.2. Animals, 2017. Chapter 2.1.8.1.1. Budapest, 2018. május 24. 10/20 NAH-1-1148/2018

Hasított körmű állatokból származó hólyagfal, hólyagtartalom, vér, tej és szervminták Ragadós száj- és körömfájás (RSZKF) vírusantigén (O, A, C, SAT1, SAT2, SAT3, Asia) Animals, 2017. Chapter 2.1.8.1.2. Hasított körmű állatokból származó vérsavó Ragadós száj- és körömfájás (RSZKF) vírusával szembeni ellenanyagok vírusneutralizációs Animals, 2017. Chapter 2.1.8.2.1. Szarvasmarha, juh és kecske vérsavó és tejminta Alvadásában gátolt teljes vér, szervdörzsölék Alvadásában gátolt vér, orr-, szájés kötőhártya tampon, nyirokcsomó, lép, tüdő, bélnyálkahártya, vérből szeparált leukociták, szervdörzsölék, ondó, teljes vér, szervminta (bél, tüdő, fülporc), tej, ondó Halból származó szervminta, 4 cm-nél kisebb halak, tej és ikra Kéknyelv betegség (Bluetongue) vírusával Kéknyelv betegség (Bluetongue) vírusának real-time RT-PCR-módszer Kiskérődzők pestise (PPR) vírusának real-time PCR-módszerrel Szarvasmarha vírusos hasmenése (BVD) vírusának Szarvasmarha vírusos hasmenése (BVD) vírussal szembeni ellenanyagok vírusneutralizációs A szarvasmarha vírusos hasmenése (BVD) vírus real-time PCRmódszerrel Ponty tavaszi viraemiája (SVC) vírusának vírusizolálás Animals, 2014. Chapter 2.1.3. B.2.3.1. Hofmann, M., Griot, C., Chaignat, V., Perler, L., Thuer, B., 2008a.: Blauzungenkrankheit erreicht die Schweiz. Schweiz. Arch. Tierheilk. 150., 49-56. Batten C.A., Banyard A.C., King D.P., Henstock M.R., Edwards L., Sanders A., Buczkowski H., Oura C. A. L. & Barrett T. (2011.): A real-time PCR assay for the specific detection of peste des petits ruminants virus. J. Virol. Methods, 171. (2), 401 404. Bovine Viral Diarrhoea Virus (BVDV) Antigen Test Kit/Serum Plus használati útmutató, IDEXX (2013.) Animals, 2015. Chapter 2.4.7.2.1. Hoffmann B., Depner K., Schirrmeier H., Beer M.: A universal heterologous internal control system for duplex realtime RT-PCR assays used in a detection system for pestiviruses J. Virol. Methods, 136, 200 209. (2006) and Vaccines for Aquatic Animals, 2017. Chapter 2.3.9.4.3.1.2.1. Budapest, 2018. május 24. 11/20 NAH-1-1148/2018

Alvadásában gátolt vér, lép, tüdő, nyirokcsomó Afrikai lópestis (AHS) vírus real-time PCRmódszerrel Agüero M., Gómez-Tejedor C., Angeles Cubillo M., Rubio C., Romero E., Jiménez-Clavero A. (2008.): Realtime fluorogenic reverse transcription polymerase chain reaction assay for detection of African horse sickness virus. J. Vet. Diagn. Invest., 20, 325 328. Homogenizált juh agyminta, EDTA-vál alvadásban gátolt juh vér Homogenizált juh, szarvasmarha, kecske, őz és szarvas agyvelő minták Homogenizált juh, szarvasmarha, kecske, őz és szarvas agyvelő minták Agyvelő Agyvelő Agyvelő Húsevő állatok vérsavói Nyúltvelő, élő állat cornea sejtek, nyál és nyálmirigy szövet Juh prion gén genotípusának meghatározása PCR és gél elektoforézis - DNS szekvencia analízis Kóros prion megerősítő Western-blot teszt Kóros prion és típusának meghatározása megkülönböztető Western-blot teszt Kóros prion (BSE) -vizsgálat Kóros prion (TSE) Veszettség vírusának immun-fluoreszcenciás Veszettség vírusával szembeni ellenanyagok, FAVN (Fluorescent antibody virus neutralisation) Veszettség betegség (rabies) vírusával Lyssa vírusának vírusizolálás Gamma, L.T. et al. 2006. Prion protein genetic polymorphism and breeding strategies in portugese breeds of sheep; Livestock Science 99, 175-184. Bio-Rad; Ref: 355-1169, (RevE- 05/2009) Bio-Rad, ref: 355-1177, (RevB- 02/2008) BetaPrion BSE gyorsteszt használati utasítás, ROBOSCREEN (2011) TeSeE SAP gyorsteszt használati utasítás, BIO-RAD (2011) Animals, 2013. Chapter 2.1.17. Animals, 2013. Chapter 2.1.17. BioPro használati utasítás, O.K. Servis BioPro, s.r.o. (2010) Animals, 2013. Chapter 2.1.17.1.3.2. Szemfogat tartalmazó állkapocs csont részlet Tetraciklin biomarker fogból és csontból immunfluoreszcenciás mikroszkópos vizsgálat Tetracycline detectin in teeth. ANSES EURL for Rabies, Nancy 2012, Robardet E, Cliquet F. Budapest, 2018. május 24. 12/20 NAH-1-1148/2018

Agyvelő, agydörzsölék Lyssa vírus genotípusainak real-time PCR Wakeley et al. (2005) Development of a Real-Time, TaqMan Reverse Transcription-PCR Assay for Detection and Differentiation of Lyssavirus Genotypes 1, 5, and 6.- Journal of Clinical Microbiology, 43: 2786 2792. 4031 Debrecen, Bornemissza u. 3-7. alatt található telephelyen A vizsgált termék/anyag és tej (Szarvasmarha) Baktérium tenyészet Vetélt magzat, magzatburok, méhváladék, szervminták, tej, vér, ízületi folyadék, sperma, egyéb testváladékok Bél minta, friss hús Bélsár, szervek, állatállományok környezeti mintái, béléspapír és napos-baromfi hulla, tej Szarvasmarha vírusos hasmenése (BVD) vírussal szembeni ellenanyagok Antibiotikum érzékenység vizsgálata korongdiffúziós módszer Brucellák ESBL-, AmpC- és karbapenemáztermelő E.coli, Salmonellák Aujeszky-betegség kórokozójával szembeni gb ellenanyagok Brucella abortus ellenanyagok agglutinációs Brucella abortus ellenanyagok Anti-BVDV Ab készlet felhasználói útmutató, IDEXX (2013) CLSI VET01-A4 2013, Chapter 7. Animals, 2017. Chapter 1.4.1.B.1.1-3. EURL-AR: Isolation of ESBL-, AmpC and carbapenemaseproducing E.coli from caecal samples and fresh meat, laboratory protocol, 2017. MSZ EN ISO 6579-1:2017 Animals 2012. Chapter 2.1.2.B.2.2. 2.1.4.B.2.7. 2.1.4.B.2.5., OIE Manual of Diagnostic Terrestrial 2.1.4.B.2.9. Budapest, 2018. május 24. 13/20 NAH-1-1148/2018

Brucella abortus ellenanyagok komplementkötési 2.1.4.B.2.4., vérplazma, vérplazma, tojássárgája, vérplazma, tojássárgája Brucella ellenanyagok Brucella melitensis ellenanyagok Brucella melitensis ellenanyagok komplementkötési Klasszikus sertéspestis kórokozójával szembeni ellenanyagok Leptospirosis kórokozójával mikroagglutinációs Ló fertőző kevésvérűségét okozó vírussal agargél immunodiffúziós Mycoplasma gallisepticum ellenanyagok Mycoplasma gallisepticum ellenanyagok tárgylemez-agglutinációs Mycoplasma meleagridis ellenanyagok Mycoplasma synoviae ellenanyagok Mycoplasma synoviae ellenanyagok tárgylemez-agglutinációs 2.1.4.B.2.5. 2.1.4.B.2.5. Terrestrial Animals 2016. Chapter 2.1.4.B.2.4. Animals 2014. Chapter 2.8.3.B.2.3. Animals 2014. Chapter 2.1.12.B.2.1. Animals 2013. Chapter 2.5.6.B.2.1. Animals 2008. Chapter 2.3.5.B.3.3. Animals 2008. Chapter2.3.5.B.3.1. ProFLOK Mm-Ab teszt felhasználói útmutató, Synbiotics (2017) Animals 2008. Chapter 2.3.5.B.3.3. Animals 2008. Chapter 2.3.5.B.3.1. Budapest, 2018. május 24. 14/20 NAH-1-1148/2018

, tej, tej, vérplazma Fiasítás (mézelő méh lárvája) Fiasítás (mézelő méh lárvája) Sertés vagy vaddisznó vérsavó Sertés vagy vaddisznó szérum, vérplazma, EDTA-s vér, szervek, szövet- és tamponminták, ondó, nyál Paratuberculosis kórokozójával Szarvasmarha enzootiás leukózisát okozó vírussal Szarvasmarha fertőző rhinotracheitisét okozó vírussal szembeni gb ellenanyagok Szarvasmarha fertőző rhinotracheitisét okozó vírussal szembeni ge ellenanyagok Takonykór kórokozójával komplementkötési Tenyészbénaság kórokozójával komplementkötési Paenibacillus larvae makroszkópos és mikroszkópos módszer Paenibacillus larvae Afrikai sertéspestis vírusával Afrikai sertéspestis vírusának Virotype ASFV real time PCR módszer Animals 2014. Chapter 2.1.15.B.2.1. Animals 2012. Chapter 2.4.10.B.2.1. Animals 2017. Chapter 2.4.12.B.2.2. Animals 2017. Chapter 2.4.12.B.2.2. Animals 2015. Chapter 2.5.11.B.3.1. Animals 2013. Chapter 2.5.3.B.2.1. Animals, 2016. Chapter 2.2.2. A.1.; B.1.3.4.vi Animals, 2016. Chapter 2.2.2. B.1.3. Ingenasa felhasználói útmutató az Ingezim PPA Compac teszthez. Virotype ASFV RT-PCR Kit Handbook for detection of DNA from African swine fever virus (ASFV) Baromfi vérsavó Baromfipestis vírussal szembeni ellenanyagok hemagglutináció-gátlási Animals, 2012. Chapter 2.3.14.B.2.1.2. Budapest, 2018. május 24. 15/20 NAH-1-1148/2018

Sertés szervek és szövetminták, ondó, EDTA-val alvadásban gátolt vér, szérum, nyál, légcsőtampon, bronchoalveolaris lavage révén vett minta PRRS vírus Virotype PRRSV real-time PCR módszer Virotype PRRSV RT-PCR Kit Handbook for detection of RNA from porcine reproductive and respiratory syndrome virus (2013) Sertés vérsavó PRRS vírussal szembeni ellenanyagok Ingenasa felhasználói útmutató Ingezim PRRS Universal teszthez Szarvasmarha, juh és kecske vérsavó és tejminta Agyvelő Agyvelő Agyvelő Szemfogat tartalmazó állkapocs csont részlet Kéknyelv betegség (Bluetongue) vírusával Kóros prion (BSE) -vizsgálat Kóros prion (TSE) Veszettség vírusának immun-fluoreszcenciás Tetraciklin biomarker fogból és csontból immunfluoreszcenciás mikroszkópos vizsgálat Animals, 2014. Chapter 2.1.3. B.2.3.1. BetaPrion BSE gyorsteszt használati utasítás, ROBOSCREEN (2011) TeSeE SAP gyorsteszt használati utasítás, BIO-RAD (2011) Animals, 2013. Chapter 2.1.17. Tetracycline detectin in teeth. ANSES EURL for Rabies, Nancy 2012, Robardet E, Cliquet F. 7400 Kaposvár, Cseri út 18. alatt található telephelyen A vizsgált termék/anyag Baktérium tenyészet Vetélt magzat, magzatburok, méhváladék, szervminták, tej, vér, ízületi folyadék, sperma, egyéb testváladékok Bél minta, friss hús Antibiotikum érzékenység vizsgálata korongdiffúziós módszer Brucellák ESBL-, AmpC- és karbapenemáz-termelő E.coli, baktérium tenyésztés CLSI VET01-A4 2013, Chapter 7. Terrestrial Animals, 2017. Chapter 1.4.1.B.1.1-3. EURL-AR: Isolation of ESBL-, AmpC and carbapenemaseproducing E.coli from caecal samples and fresh meat, laboratory protocol, 2017. Budapest, 2018. május 24. 16/20 NAH-1-1148/2018

Kanca méh- és hüvelytampon, mén nemi szervi tampon, sperma Bélsár, szervek, állatállományok környezeti mintái, béléspapír és naposbaromfi hulla Taylorella equigenitalis Salmonellák Terrestrial Animals, 2012. Chapter 2.5.2.1. MSZ EN ISO 6579-1:2017, tej Aujeszky-betegség kórokozójával szembeni gb ellenanyagok Brucella abortus ellenanyagok agglutinációs Brucella abortus ellenanyagok Brucella abortus ellenanyagok komplementkötési Terrestrial Animals 2012. Chapter 2.1.2.B.2.2. Terrestrial Animals 2016. Chapter 2.1.4.B.2.7. Terrestrial Animals 2016. Chapter 2.1.4.B.2.5., OIE Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial 2.1.4.B.2.9. Terrestrial Animals 2016. Chapter 2.1.4.B.2.4. Brucella ellenanyagok Brucella melitensis ellenanyagok Brucella melitensis ellenanyagok komplementkötési Terrestrial Animals 2016. Chapter 2.1.4.B.2.5. Terrestrial Animals 2016. Chapter 2.1.4.B.2.5. Terrestrial Animals 2016. Chapter 2.1.4.B.2.4. Budapest, 2018. május 24. 17/20 NAH-1-1148/2018

, vérplazma, tej Tej, tej, vérplazma Brucella ovis ellenanyagok Klasszikus sertéspestis kórokozójával szembeni ellenanyagok Leptospirosis kórokozójával mikroagglutinációs Ló fertőző kevésvérűségét okozó vírussal szembeni ellenanyagok agargél immunodiffúziós Paratuberculosis kórokozójával Szarvasmarha enzootiás leukózisát okozó vírussal Szarvasmarha enzootiás leukózisát okozó vírussal Szarvasmarha fertőző rhinotracheitisét okozó vírussal szembeni gb ellenanyagok Szarvasmarha fertőző rhinotracheitisét okozó vírussal szembeni ge ellenanyagok Takonykór kórokozójával komplementkötési Tenyészbénaság kórokozójával komplementkötési Terrestrial Animals 2015. Chapter 2.7.8.B.2.3. Animals 2014. Chapter 2.8.3.B.2.3. Terrestrial Animals 2014. Chapter 2.1.12.B.2.1. Terrestrial Animals 2013. Chapter 2.5.6.B.2.1. Animals 2014. Chapter 2.1.15.B.2.1. Terrestrial Animals 2012. Chapter 2.4.10.B.2.1. Terrestrial Animals 2012. Chapter 2.4.10.B.2.1.2. Terrestrial Animals 2017. Chapter 2.4.12.B.2.2. Terrestrial Animals 2017. Chapter 2.4.12.B.2.2. Terrestrial Animals 2015. Chapter 2.5.11.B.3.1. Terrestrial Animals 2013. Chapter 2.5.3.B.2.1. Budapest, 2018. május 24. 18/20 NAH-1-1148/2018

Fiasítás (mézelő méh lárvája) Baromfi vérsavó Sertés vérsavó Szarvasmarha, juh és kecske vérsavó és tejminta Agyvelő Szemfogat tartalmazó állkapocs csont részlet és tej (Szarvasmarha) Paenibacillus larvae makroszkópos és mikroszkópos módszer Baromfipestis vírussal hemagglutináció-gátlási PRRS vírussal szembeni ellenanyagok Kéknyelv betegség (Bluetongue) vírusával Veszettség vírusának immun-fluoreszcenciás Tetraciklin biomarker fogból és csontból immunfluoreszcenciás mikroszkópos vizsgálat Szarvasmarha vírusos hasmenése (BVD) vírussal Terrestrial Animals, 2016. Chapter 2.2.2. A.1.; B.1.3.4.vi Terrestrial Animals, 2012. Chapter 2.3.14.B.2.1.2. Ingenasa felhasználói útmutató Ingezim PRRS Universal teszthez Terrestrial Animals, 2014. Chapter 2.1.3. B.2.3.1. Terrestrial Animals, 2013. Chapter 2.1.17. Tetracycline detectin in teeth. ANSES EURL for Rabies, Nancy 2012, Robardet E, Cliquet F. Anti-BVDV Ab készlet felhasználói útmutató, IDEXX (2013) III. Az akkreditálandó területhez tartozó mintavételi, minta-előkészítési eljárások 1143 Budapest, Tábornok u. 2. alatt található telephelyen Termék/anyag Az eljárás jellege Az eljárás Szervminta Szervminta Fénymikroszkópos metszetek készítése fagyasztásos módszer Fénymikroszkópos metszetek készítése paraffinbeágyazásos módszer Dr. Krutsay Miklós: Patológiai technika. Medicina Kiadó Rt. Budapest, 1999., 95-99. o. Dr. Krutsay Miklós: Patológiai technika. Medicina Kiadó Rt. Budapest, 1999., 100-116. o. Budapest, 2018. május 24. 19/20 NAH-1-1148/2018

Termék/anyag Az eljárás jellege Az eljárás Szervminta Egér IgG Fénymikroszkópos metszetek festése haemalaun-eozin festés Monoklonális konjugátum előkészítése immunkémiai vizsgálatokhoz Sejttenyésztés és ellenanyagjelölés Dr. Krutsay Miklós: Patológiai technika. Medicina Kiadó Rt. Budapest, 1999., 148-150. o. J. Eryl Liddell and A. Cryer: A practical guide to monoclonal antibodies, John Wiley and Sons Ltd. Chichester, England (1991) 188. o. A szabványok hatályos vagy visszavont státuszáról a Magyar Szabványügyi Testület honlapja (www.mszt.hu) vagy a szabvány kiadójának (pl. ISO, IEC stb.) honlapja tájékoztat. Az aktuális akkreditált státuszra vonatkozó adatok a Nemzeti Akkreditáló Hatóság honlapján érhetők el (http://www.nah.gov.hu/kategoriak) - VÉGE - Bodroghelyi Csaba Nemzeti Akkreditáló Hatóság főigazgató-helyettes Budapest, 2018. május 24. 20/20 NAH-1-1148/2018