ÁRPA KROMOSZÓMÁK AZONOSÍTÁSA ÚJ BÚZA X ÁRPA HIBRIDEK UTÓDVONALAIBAN IN SITU HIBRIDIZÁCIÓ ÉS SSR- MARKEREK SEGÍTSÉGÉVEL

Hasonló dokumentumok
DI-, TETRA- ÉS HEXAPLOID TRITICUM FAJOK GENOMJAINAK ELEMZÉSE ÉS AZOK ÖSSZEHASONLÍTÁSA FLUORESZCENS IN SITU HIBRIDIZÁCIÓVAL

NÖVÉNYGENETIKA. Az Agrármérnöki MSc szak tananyagfejlesztése TÁMOP /1/A

A BÚZA CITOGENETIKAI ALAPANYAGOK FENNTARTÁSA SORÁN LÉTREJÖTT KROMOSZÓMA-ÁTRENDEZŐDÉSEK KIMUTATÁSA IN SITU HIBRIDIZÁCIÓVAL

2011. január április 10. IPK Gatersleben (Németország) május 17. Kruppa Klaudia

Egy búza-thinopyrum ponticum részleges amfiploid molekuláris citogenetikai vizsgálata

Study of yield components of wheat-barley addition lines in pot experiment

SZENT ISTVÁN EGYETEM KRUPPA KLAUDIA KATALIN. Gödöllő. Doktori (PhD) értekezés tézisei UTÓDAIBAN MOLEKULÁRIS CITOGENETIKAI MÓDSZEREKKEL

1. Őszi búza/őszi árpa (Mv9 kr1/igri) addíciós vonalak előállítása és azonosításuk fluoreszcens in situ hibridizációval (FISH) és SSR markerekkel

A FISH technika alkalmazása az előnemesítésben

PUBLICATIONS (MÁRTA MOLNÁR-LÁNG)

NÖVÉNYGENETIKA. Az Agrármérnöki MSc szak tananyagfejlesztése TÁMOP /1/A

In situ hibridizáció különböző módszereinek adaptálása és továbbfejlesztése búza genetikai alapanyagok elemzésére

A termesztett búza diploid őseinek molekuláris citogenetikai elemzése: pachytén- és fiber-fish.

SZENT ISTVÁN EGYETEM

Szent István Egyetem. Búza Aegilops introgressziós vonalak előállítása, geno- és fenotípusos jellemzésük

AZ ÁRPA SZÁRAZSÁGTŰRÉSÉNEK VIZSGÁLATA: QTL- ÉS ASSZOCIÁCIÓS ANALÍZIS, MARKER ALAPÚ SZELEKCIÓ, TILLING

Scientific publications with Acknowledgements to Agrisafe. Scientific publications in English:

Őszi búza Triticum timopheevii hibrid utódainak jellemzése

AZ ALACSONY HŐMÉRSÉKLET HATÁSÁRA BEKÖVETKEZŐ REDOX ÉS GÉNEXPRESSZIÓS VÁLTOZÁSOK GABONAFÉLÉKBEN

Conserved ortholog set (COS) markerek térképezése Aegilops kromoszómákon

SZENT ISTVÁN EGYETEM

Triticum aestivum Aegilops biuncialis kromoszóma átépülések indukálása és molekuláris citogenetikai jellemzése

A KUKORICA STRESSZREZISZTENCIA KUTATÁSOK EREDMÉNYEIBŐL

Génbanki Triticum monococcum tételek molekuláris citogenetikai elemzése és kiaknázása a búzanemesítés számára

Kedvez agronómiai tulajdonságok átvitele rokon fajokból a termesztett búzába és az utódok molekuláris citogenetikai elemzése

Agrárkönyvtári Hírvilág, XX. évfolyam 3. szám Ajánló bibliográfia. Árpa

Triticum aestivum Aegilops biuncialis kromoszóma átépülések indukálása és molekuláris citogenetikai jellemzése

A Természet csendes logikája Érti azt, mit Te csupán sejtesz Úgy, mint egy álmot, az igaz valót. Henry Baker. Szüleimnek

Manuscript Title: Identification of a thermostable fungal lytic polysaccharide monooxygenase and

A GABONAFÉLÉK EGYEDFEJLŐDÉSÉT ÉS KALÁSZOLÁSÁT MEGHATÁROZÓ GENETIKAI KOMPONENSEK TANULMÁNYOZÁSA

Tarackbúzafajok betegség-ellenállóságának beépítése a termesztett búzába Transfer of disease resistance from wheatgrass species into hexaploid wheat

Faj- és nemzetségkeresztezések története a gabonafélék között Magyarországon

AGROTECHNIKAI TÉNYEZŐK HATÁSA A KULTÚRNÖVÉNYEKRE ÉS A GYOMOSODÁSRA

TARTALOMJEGYZÉK 1. BEVEZETÉS...4

SZAPORODÁSBIOLÓGIAI KUTATÁSOK A NÖVÉNYNEMESÍTÉS SZOLGÁLATÁBAN

Búza-árpa introgressziós vonalak citológiai és agronómiai elemzése

Hibridspecifikus tápanyag-és vízhasznosítás kukoricánál csernozjom talajon

Nagy Emese: Polimorfizmus és rokonsági körök vizsgálata kukoricában (Zea mays) Témavezetők: Cs. L. Marton G Gyulai

Supporting Information

ZAJÁCZ EDIT publikációs lista

BAGOLY ALMANACH PANNON EGYETEM, GEORGIKON KAR

Szelekciós lehetőségek a búza minőség-orientált nemesítésében fehérjekémiai és DNS markerekkel

Szakmai záró jelentés az OTKA PD83444 sz. pályázathoz

In Situ Hibridizáció a pathologiai diagnosztikában és ami mögötte van.

A sertések lágyék- és heresérv tünetegyüttesének genetikai háttere

Rezisztens keményítők minősítése és termékekben (kenyér, száraztészta) való alkalmazhatóságának vizsgálata

List of scientific and non-scientific publications acknowledging funding from the AGRISAFE project 1 May April 2010

SZENT ISTVÁN EGYETEM KRUPPA KLAUDIA KATALIN. Gödöllő

Baranyáné Dr. Ganzler Katalin Osztályvezető

Szent István Egyetem Gödöllő BÚZA GENETIKAI ALAPANYAGOK ELŐÁLLÍTÁSA, AGRONÓMIAI ÉS CITOGENETIKAI ELEMZÉSE. Doktori értekezés tézisei.

Bemutatkozás Dr. Lehoczky István december 4..

Szent István Egyetem. Triticum timopheevii eredetű új genetikai anyagok. előállítása és jellemzése. Doktori (PhD) értekezés tézisei.

SZÉL SÁNDOR - PUBLIKÁCIÓK

Orvosi Genomtudomány 2014 Medical Genomics Április 8 Május 22 8th April 22nd May

Őszi búza Triticum timopheevii hibrid utódainak jellemzése

Tremmelné Tar Melinda

SOLiD Technology. library preparation & Sequencing Chemistry (sequencing by ligation!) Imaging and analysis. Application specific sample preparation

ÁLLATTENYÉSZTÉSI TUDOMÁNYOK DOKTORI ISKOLA Doktori Iskola vezető: Dr. Bánszki Tamás, MTA doktora. Témavezetők: mezőgazdaság-tudomány kandidátusa

4 vana, vanb, vanc1, vanc2

DOKTORI (Ph.D.) ÉRTEKEZÉS ARANYI NIKOLETT RÉKA PANNON EGYETEM GEORGIKON KAR

NYÁR GENOTÍPUSOK AZONOSÍTÁSA DNS UJJLENYOMATUK ALAPJÁN

A cell-based screening system for RNA Polymerase I inhibitors

Mlo gén alapú lisztharmat rezisztencia: régi harc új megvilágításban Mlo gene based powdery mildew resistance: an old battle in a new light

A TAKARMÁNYOK FEHÉRJE TARTALMÁNAK ÉS AMINOSAV ÖSSZETÉTELÉNEK HATÁSA A TOJÓHIBRIDEK TELJESÍTMÉNYÉRE

A Föld ökológiai lábnyomának és biokapacitásának összehasonlítása és jelenlegi helyzete. Kivonat

Phenotype. Genotype. It is like any other experiment! What is a bioinformatics experiment? Remember the Goal. Infectious Disease Paradigm

Pannon Egyetem Vegyészmérnöki- és Anyagtudományok Doktori Iskola

Mangalica: The VM-MOE Treaty. Olmos és Tóth Kft. Monte Nevado

Hasznos és kártevő rovarok monitorozása innovatív szenzorokkal (LIFE13 ENV/HU/001092)

VÍZGŐZKONCENTRÁCIÓ-MÉRÉS DIÓDALÉZERES FOTOAKUSZTIKUS MÓDSZERREL

Szent István Egyetem. Búza Aegilops introgressziós vonalak előállítása, geno- és fenotípusos jellemzésük. Farkas András. Gödöllő

Supplementary materials to: Whole-mount single molecule FISH method for zebrafish embryo

Biomassza alapú bioalkohol előállítási technológia fejlesztése metagenomikai eljárással

Bakteriális identifikáció 16S rrns gén szekvencia alapján

Génbanki Triticum monococcum tételek molekuláris citogenetikai elemzése és kiaknázása a búzanemesítés számára

Termékenységi mutatók alakulása kötött és kötetlen tartástechnológia alkalmazása esetén 1 (5)

COOPERATION IN THE CEREAL SECTOR OF THE SOUTH PLAINS REGIONS STRÉN, BERTALAN. Keywords: cooperation, competitiveness, cereal sector, region, market.

Összefoglalás. Summary. Bevezetés

MOLEKULÁRIS MODELL A FAGYÁLLÓSÁG ÉS A VERNALIZÁCIÓS IGÉNY KÖLCSÖNHATÁSÁNAK ÉRTELMEZÉSÉRE

Supplementary Figure 1

DEBRECENI EGYETEM EGYETEMI ÉS NEMZETI KÖNYVTÁR

AZ ERDÕ NÖVEKEDÉSÉNEK VIZSGÁLATA TÉRINFORMATIKAI ÉS FOTOGRAMMETRIAI MÓDSZEREKKEL KARSZTOS MINTATERÜLETEN

fogyasztói ATTITŰDÖk Az ALmApIACon CONSUmER ATTITUDE TO APPLE

Irányítási struktúrák összehasonlító vizsgálata. Tóth László Richárd. Pannon Egyetem Vegyészmérnöki és Anyagtudományok Doktori Iskola

PANNON EGYETEM GEORGIKON KAR, KESZTHELY. Növénytermesztési és Kertészeti Tudományok Doktori Iskola. Iskolavezető: Dr. Kocsis László egyetemi tanár

(11) Lajstromszám: E (13) T2 EURÓPAI SZABADALOM SZÖVEGÉNEK FORDÍTÁSA

TÁPLÁLKOZÁSI AKADÉMIA

Animal welfare, etológia és tartástechnológia

Pacemaker készülékek szoftverének verifikációja. Hesz Gábor

A kreatív iparág és az új média összefonódása

KARSAI ILDIKÓ PUBLIKÁCIÓS LISTÁJA I. Tudományos folyóiratokban megjelent lektorált közlemények. (összesen 49 db)

Materials and methods

Egyetemi doktori (PhD) értekezés tézisei FONTOSABB AGROTECHNIKAI TÉNYEZŐK HATÁSÁNAK VIZSGÁLATA AZ ŐSZI BÚZA TERMESZTÉSBEN

Seven gene deletions in seven days: Fast generation of Escherichia coli strains tolerant to acetate and osmotic stress Supplementary Figure S1.

Tartalom. Plenáris előadások. Veisz Ottó: Klímaváltozás nemesítés termésbiztonság 14. Szekció előadások. Szekció I. (Molekuláris genetikai kutatások)

MAGASÉPÍTÉSI PROJEKT KOCÁZATAINAK VIZSGÁLATA SZAKMAI INTERJÚK TÜKRÉBEN 1 CSERPES IMRE 2

Mapping Sequencing Reads to a Reference Genome

Bird species status and trends reporting format for the period (Annex 2)

KÉPI INFORMÁCIÓK KEZELHETŐSÉGE. Forczek Erzsébet SZTE ÁOK Orvosi Informatikai Intézet. Összefoglaló

PUBLIKÁCIÓS LISTA Dr. Galiba Gábor ( )

Átírás:

Hagyomány és haladás a növénynemesítésben ÁRPA KROMOSZÓMÁK AZONOSÍTÁSA ÚJ BÚZA X ÁRPA HIBRIDEK UTÓDVONALAIBAN IN SITU HIBRIDIZÁCIÓ ÉS SSR- MARKEREK SEGÍTSÉGÉVEL KRUPPA KLAUDIA, CSEH ANDRÁS ÉS LÁNGNÉ MOLNÁR MÁRTA MTA Mezőgazdasági Kutatóintézete, Martonvásár Az Asakaze komugi búzafajta és Manasz árpafajta keresztezéséből létrehozott hibridből származó diszómás addíciós vonalakban azonosítottuk az árpa kromoszómákat fluoreszcens in situ hibridizációval (FISH) és molekuláris markerekkel. A búza genomban az árpa kromoszómák jelenlétét genomi in situ hibridizációval (GISH) mutattuk ki, melyhez teljes árpa genomi DNS-t jelöltünk. A 2H, 4H, 6H és 7H diszómás addíciós vonalakban az árpa kromoszómákat négy repetitív DNS próba kombinálásával (HvT01- GAA, Afa family-hvt01-pta71) kidolgozott FISH mintázat alapján azonosítottuk. A citológiai meghatározást mikroszatellit markerekkel is megerősítettük, melynek során tizennégy simple sequence repeat (SSR)-markert teszteltük. Az in situ hibridizáció és a molekuláris markerek kombinálása lehetővé tette a különböző vonalak egyértelmű azonosítását. Kulcsszavak: búza-árpa addíciós vonalak, genomi in situ hibridizáció, fluoreszcens in situ hibridizáció, SSR markerek IDENTIFICATION OF BARLEY CHROMOSOMES IN DERIVATIVES OF NEW WHEAT/BARLEY HYBRIDS USING IN SITU HYBRIDIZATION AND SSR MARKERS K. KRUPPA, A. CSEH, M. MOLNÁR-LÁNG Agricultural Research Institute of the Hungarian Academy of Sciences, Martonvásár The aim of this study was to identify the barley chromosomes in new wheat-barley disomic addition lines produced in Martonvásár and developed from hybrids between facultative wheat ( Asakaze komugi ) and a Ukrainian six-rowed winter barley cultivar ( Manas ). The barley chromosomes were detected by genomic in situ hybridization (GISH) using labelled genomic barley DNA. The disomic addition lines 2H, 4H, 6H and 7H were identified by FISH using different combinations of repetitive DNA probes: HvT01-GAA and HvT01-pTa71-Afa family. Fourteen SSR markers were used to confirm the results of the cytological identification. The combination of in situ hybridization and the use of molecular markers made it possible to identify the different lines unequivocally. Key words: wheat-barley addition lines, genomic in situ hybridization, fluorescent in situ hybridization, SSR markers 277

KRUPPA K. és mtsai Bevezetés A búza x árpa hibridek létrehozása lehetőséget nyújt arra, hogy a két faj kedvező tulajdonságait az utódokban egyesítsük. Az első búza árpa hibridet Dániában Kruse (1973) hozta létre. Néhány évvel később a genetikai modellnek számító tavaszi búza ( Chinese Spring ) és tavaszi árpa ( Betzes ) keresztezéséből előállított addíciós sorozatról számoltak be Ausztráliában (Islam et al. 1978). A két genom közti nagymértékű inkompatibilitás miatt nagyon nehéz feladat a termesztett árpafajtákkal az új búza árpa hibridek létrehozása, amely viszont lehetővé tenné az agronómiai szempontból fontos gének átvitelét. Martonvásáron eddig négy árpafajtával sikeresen állítottunk elő búza árpa hibrideket, melyek közül a Betzes és az Igri árpafajtákkal létrehozott hibridek utódaiban az árpa kromoszómák kimutatásáról már korábban beszámoltunk (Szakács and Molnár-Láng, 2007). Gyakorlati szempontból nagyon jelentős eredmény a Manasz ukrán hatsoros őszi árpafajta bevonása a hibridek előállításába, miután az a magyarországi éghajlati viszonyokhoz jobban adaptálódott, mint az Igri és a Betzes német árpafajták. Anyag és módszer A japán Asakaze komugi fakultatív búzafajta (Triticum aestivum L.; 2n=6x=42; AABBDD) és az ukrán Manasz hatsoros termesztett őszi árpafajta (Hordeum vulgare L.; 2n=2x=14; HH) keresztezéséből előállított hibridből (Molnár-Láng et al., 2000) származó búza/árpa diszómás addíciós vonalakat (Molnár-Láng et al., 2005) elemeztük FISH-sel és molekuláris markerekkel. Az in situ hibridizációhoz a kromoszómapreparátumokat a gyökércsúcsból a Jiang et al. (1994) által leírt módszer alapján készítettük. A FISH során alkalmazott repetitív DNS próbák (Afa- family, Nagaki et al. 1995; GAA, Pedersen és Langridge 1997; HvT01, Schubert et al. 1998; pta71, Gerlach és Bedbrook 1979) előállítását Sepsi et al. (2008) módszere szerint végeztük. A próba jelöléshez digoxigenin-11-dutp-t (Roche) és biotin-16-dutp-t (Roche) használtunk. A hibridizációs jeleket anti-digoxigenin-rhodamine (Roche) és streptavidin-fitc (Roche) felhasználásával tettük láthatóvá. A FISH preparátumok előkezelési és mosási lépéseit Molnár- Láng et al. (2000) szerint hajtottuk végre, majd az in situ hibridizációt Molnár et al. (2009) leírása alapján végeztük. A FISH jeleinek lemosása után a GISH-t ugyanazon a tárgylemezen alkalmaztuk. Próbaként fluorogreennel (Fluorescein-11-dUTP, Amersham Biosciences Europe GmbH, Germany) jelölt árpa genomi DNS-t használtunk, míg blokkolóként jelöletlen búza genomi DNS-t alkalmaztunk 1:35 arányban. A hibridizáció lépései megegyeztek a FISH során alkalmazottakkal. Az SSR-markerrel történő vizsgálatokhoz genomi DNS-t izoláltunk az addíciós vonalakból valamint a szülői partnerekből ChargeSwitch gdna Plant Kit (Invitrogen, USA) alkalmazásával. Az alkalmazott Bmac0134, Bmag0125, Ebmac0415, Bmag0009, Bmac0040, HvLTPPB, Bmag0021, Bmac0156, HvID, Bmag0120 (Ramsay et al., 2000), HvM36, HvM40, HvM67, HvM4 (Liu et al., 1996) markerek analízise Cseh et al. (2009) módszere alapján történt. 278

Árpa kromoszómák azonosítása FISH-sel és SSR-markerekkel Eredmények és következtetések Búza/árpa addíciós vonalakban az árpa kromoszómák kimutatása GISHsel történt. A jelölt árpa DNS az árpa kromoszómákhoz hibridizált, így az árpakromoszómák fluoreszcensen jelölődtek, a búza kromoszómák jelöletlenek maradtak. (1. ábra.) A kromoszómák azonosítását a FISH során alkalmazott jelölt repetitív DNS szekvenciák mintázata alapján végeztük. A HvT01 próba a búza 4B kromoszómájának kivételével csak az árpa kromoszómák teloméráihoz hibridizál de a 2H és az 5H kromoszómán csak a rövid karon ad jelet. A GAA próba a centromérához közeli régiókban mutat kromoszóma- specifikus mintázatot. A GAA és HvT01 próbák kombinációjával a 2H kromoszóma jelenlétét igazoltuk. A GAA próbával a 2H kromoszóma mindkét karján két intersticiális sáv jelenik meg, míg a HvT01 próba a rövid kar disztális részéhez hibridizál. A Bmag0125 és az Ebmac0415 SSR marker segítségével sikerült a hosszú kar jelenlétét igazolni, de a rövid kar általunk vizsgált (Bmac0134, HvM36) markerei nem bizonyultak alkalmasnak a Manasz 2HS kromoszómakar vizsgálatára. A GAA próba hibridizációja során az árpa kromoszómák közül a 4H kromoszóma jelölődik a legintenzívebben. A centroméra közeli régiókban erős hibridizációs jelet mutat mindkét kromoszóma karon. HvT01 próbával kombinálva mutattuk ki a 4H diszómás addíciós vonalakat. A 4H kromoszóma rövid karjára térképezett HvM40- és a hosszú karon lokalizált HvM67 markerek megbízhatóan mutatták az árpa kromoszóma jelenlétét. A pta71 próba elsősorban a szatellittel rendelkező kromoszómák NORrégiójához valamint az 1H és 7H árpa kromoszómákhoz hibridizál. A pta71 és HvT01 egyidejű használatával egyes vonalakban egy pár 6H kromoszómát azonosítottunk (1.ábra), majd Bmac0040 (6HL) valamint Bmag0009 (6HS) SSR-markerekkel megerősítettük a kromoszóma jelenlétét (2. ábra.). A 7H kromoszómák kimutatásához Afa-family-HvT01-pTa71 próbák kombinációját alkalmaztuk a multicolour FISH során. Afa mintázata a centromer régióban más árpa kromoszómákétól jól elkülöníthető volt, a pta71 a rövid karon halvány jelet adott, a HvT01 próba minkét karon telomérás jelet adott. Az öt alkalmazott mikroszatellit marker (HvM4, Bmag0021, Bmac0156, HvID, Bmag0120) közül a Bmag0120 és a Bmac0156 markerrel végzett vizsgálat során nem teljesen azonos méretű termék keletkezett a Manasz szülőpartnerben, mint az addíciós vonalakban, melynek okát egyelőre nem ismerjük. A HvID marker a hosszú kar-, a Bmag0021 a rövid kar jelenlétét egyértelműen bizonyította. A vizsgált SSR markerek alkalmazásával gyorsan és pontosan kimutathatóak a Manasz kromoszómák az addíciós vonalainkban. A vonalak diszómás jellegének kimutatásához továbbra is nélkülözhetetlen az in situ hibridizáció. FISH-sel, négy különböző repetitív próba felhasználásával és SSR markerek segítségével egyértelműen azonosíthatók a kromoszómák. 279

KRUPPA K. és mtsai a b HvT01 pta71 HvT01 1. ábra. a, Árpa kromoszómák kimutatása GISH-sel. A két jelölődött (világos) kromoszóma az árpa kromoszómapár (nyilak). b, A 6H árpakromoszóma FISH mintázata HvT01 és pta71 repetitív próbákkal. 2. ábra. 6H árpakromoszóma hosszú- és rövid karjának kimutatása Asakaze komugi Manasz hibrid utódjainak addíciós vonalaiban (1-4) Bmac0040 és Bmag009 SSR markerekkel. Köszönetnyilvánítás Kutatásainkat a Generation Challenge Program SP3 G4007.23, az OTKA K75381 és az AGRISAFE 203288 sz. EU-FP7-REGPOT 2007-1 pályázatok támogatták. Irodalom Cseh, A., Kruppa, K., Molnár, I. (2009): Incorporation of a winter barley chromosome segment into cultivated wheat and its characterization with GISH, FISH and SSR- markers. Cereal Res. Commun. 37. accepted Gerlach, W.L., Bedbrook, J.R. (1979): Cloning and characterization of ribosomal RNA genes from wheat and barley. Nucleic Acids Res. 7: 1869 1885. Islam, A. K. R. M., Shepherd, K. W., Sparrow, D. H. B. (1978): Production and characterization of wheat:barley addition lines. Proceedings of the 5th International Wheat Genetics Symposium. Indian Society of Genetics and Plant Breeding. New Delhi, India. pp. 356-371. 280

Árpa kromoszómák azonosítása FISH-sel és SSR-markerekkel Jiang, J., Friebe, B., Gill, B. S. (1994): Chromosome painting of Amigo wheat. Theor. Appl. Genet. 89. 811-813 Kruse, A. (1973): Hordeum x Triticum hybrids. Hereditas 73, 157-161 Liu, Z. W., Biyashev, R. M., Saghai Maroof, M. A. (1996): Development of simple sequence repeat DNA markers and their integration into a barley linkage map. Theor. Appl. Genet. 93. 869-876. Molnár, I., Benavente, E., Molnár-Láng, M. (2009): Detection of intergenomic chromosome rearrangements in irradiated Triticum aestivum Aegilops biuncialis amphiploids by multicolour genomic in situ hybridization. Genome 52, 156-165. Molnár-Láng, M., Linc, G., Logojan, A., Sutka, J. (2000): production and meiotic pairing behaviourof new hybrids of winter wheat (Triticum aestivum) x winter barley (Hordeum vulgare). Genome 43, 1045-1054. Molnár-Láng, M., Novotny, C., Linc, G., Nagy, D. E. (2005): Changes in the meiotic pairing behaviour of a winter wheat- winter barley hybrid maintained for a long term in tissue culture, and tracing the barley chromatin in the progeny using GISH and SSR markers. Plant Breeding 124, 247-251 Nagaki, K., Tsujimoto, H., Isono, K., Sasakuma, T. (1995): Molecular characterization of a tandem repeat, Afa family, and its distribution among Triticeae. Genome 38: 479 486. Pedersen, C., and Langridge, P. (1997): Identification of the entire chromosome complement of bread wheat by two-colour FISH. Genome 40: 589-593. Ramsay L, Macaulay M, degli Ivanissevich S, MacLean K, Cardle L, Fuller J, Edwards KJ, Tuvesson S, Morgante M, Massari A, Maestri E, Marmiroli N, Sjakste T, Ganal M, Powell W, Waugh R. (2000): A simple sequence repeat-based linkage map of barley. Genetics 156. 1997-2005. Schubert, I., Shi, F., Fuchs, J., and Endo, T.R. (1998): An efficient screening for terminal deletions and translocations of barley chromosomes added to common wheat. Plant Journal 14: 489-495. Sepsi, A., Molnár, I., Szalay, D., and Molnár-Láng, M. (2008): Characterization of a leaf-rust resistant wheat-thinopyrum ponticum partial amphiploid BE-1 using sequential multicolor GISH and FISH. Theor. Appl. Genet. 116. 825-834. Szakács, É., Molnár-Láng, M. (2007): Development and molecular cytogenetic identification of new winter wheat winter barley ( Martonvásári 9 kr1 Igri ) disomic addition lines. Genome 50, 43-50. 281